Скачать PDF

МР 1.2.0044-11. 1.2. Гигиена, токсикология, санитария. Порядок выявления и идентификации агрегатов фуллеренов С60 в срезах тканей животных и растений методами аналитической электронной микроскопии. Методические рекомендации

№ МР 1.2.0044-11Действующий акт

Актуально на 01.11.2026.

Как цитировать: "МР 1.2.0044-11. 1.2. Гигиена, токсикология, санитария. Порядок выявления и идентификации агрегатов фуллеренов С60 в срезах тканей животных и растений методами аналитической электронной микроскопии. Методические рекомендации". МР 1.2.0044-11. https://bukva.ai/docs/poryadok-mr-1-2-0044-11

(утв. Роспотребнадзором 11.11.2011)

Примечание

Документ введен в действие с 11 ноября 2011 года.

Утверждаю
Руководитель Федеральной
службы по надзору в сфере
защиты прав потребителей
и благополучия человека,
Главный государственный
санитарный врач
Российской Федерации
Г. Г. Онищенко
11 ноября 2011 года

1.2 ГИГИЕНА, ТОКСИКОЛОГИЯ, САНИТАРИЯ

ПОРЯДОК ВЫЯВЛЕНИЯ И ИДЕНТИФИКАЦИИ АГРЕГАТОВ ФУЛЛЕРЕНОВ С60 В СРЕЗАХ ТКАНЕЙ ЖИВОТНЫХ И РАСТЕНИЙ МЕТОДАМИ АНАЛИТИЧЕСКОЙ ЭЛЕКТРОННОЙ МИКРОСКОПИИ

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

МР 1.2.0044-11

Дата введения:

с момента утверждения

1. Разработаны Государственным учебно-научным учреждением «Биологический факультет Московского государственного университета имени М.В. Ломоносова»; Учреждением Российской Академии наук «Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова» РАН; Учреждением Российской академии медицинских наук «Научно-исследовательский институт питания РАМН»; Федеральным государственным унитарным предприятием «Всероссийский научно-исследовательский институт метрологической службы»; Учреждением Российской Академии наук «Центр „Биоинженерия“ РАН.»

2. Разработаны в рамках Федеральной целевой программы «Развитие инфраструктуры наноиндустрии в Российской Федерации на 2008 — 2011 годы».

3. Утверждены Руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Г.Г. Онищенко 11 ноября 2011 г.

4. Введены в действие 11 ноября 2011 г.

5. Введены впервые.

I. Область применения

1.1. Настоящие Методические рекомендации определяют порядок выявления и идентификации агрегатов фуллерена С60 в срезах тканей животных и растений методами аналитической электронной микроскопии.

1.2 Настоящие Методические рекомендации могут использоваться:

  • при анализе разрабатываемых новых и уже используемых наноматериалов, содержащих фуллерен С60, с целью оценки их безопасности;
  • в целях принятия решений по оценке рисков, связанных с процессами производства и оборота наноматериалов на основе фуллерена С60;
  • при проведении экспертизы пищевых продуктов, продукции сельского хозяйства, фармацевтической промышленности, биотехнологического производства;
  • при проведении мероприятий по осуществлению надзора (контроля) в процессе производства, переработки и утилизации фуллерена С60.

1.3. Методические рекомендации разработаны с целью обеспечения единства процедур подготовки образцов, проведения измерений и представления результатов в ходе выявления и идентификации агрегатов фуллерена С60 в срезах тканей животных и растений методами аналитической электронной микроскопии.

1.4. Методические рекомендации предназначены для специалистов органов и организаций Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, а также могут быть использованы научно-исследовательскими организациями гигиенического профиля, медицинскими учебными заведениями и иными организациями и учреждениями, проводящими исследования по оценке безопасности наноматериалов и продукции наноиндустрии.

II. Введение

Согласно экспертной оценке ряда аналитических компаний рынок нанотехнологий и продукции наноиндустрии в Российской Федерации в настоящее время находится на начальном этапе становления. Активно ведутся научные разработки, апробируются возможности коммерциализации результатов, однако присутствие нанотехнологий в промышленном секторе по-прежнему ограничено единичными примерами.

В частности, такая картина характерна для фуллеренов, стабильные объемы производства которых в России в последние несколько лет держатся на уровне 25 — 30 кг в год (фуллереновой сажи — до 1,5 т в год). В то же время неуклонное нарастание числа патентов на потенциальное применение фуллеренов в технологических процессах, а также увеличение промышленного спроса на этот вид наноматериалов в мире позволяют прогнозировать быстрый рост объемов производства фуллеренов и содержащей их потребительской продукции.

В структуре потребления фуллерены и технологии с их применением наиболее востребованы в энергетическом секторе (в качестве основы для батарей и топливных элементов, в качестве присадки для топлива и другое), но в последнее время наблюдается увеличение доли потребления фуллеренов в таких отраслях, как медицина и фармацевтика, электроника, трибология и металлургия.

Исходя из очевидных тенденций, в ближайшие годы закономерно ожидать быстрое прогрессирование рынка фуллеренов и в России. Изменение масштабов производства и потребления фуллеренов, создающее условия для их накопления в объектах окружающей среды, и расширение спектра нанотехнологической продукции на их основе приведут к массовому контакту человека с фуллеренами.

Таким образом, существует обоснованная потребность в разработке системы мониторинга наноматериалов этого типа в биотических компонентах экосистем, продукции животноводства, растениеводства и пищевой продукции. Одной из задач настоящих Методических рекомендаций является формирование единого методического подхода к выявлению и идентификации агрегатов фуллерена С60 в срезах тканей животных и растений, оптимизированного для выполнения в лабораториях аккредитованных организаций и обеспечивающего получение достоверных результатов с заданными метрологическими характеристиками.

III. Нормативные ссылки

3.1. Федеральный закон от 30 марта 1999 года № 52-ФЗ «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения».

3.2. Федеральный закон от 2 января 2000 года № 29-ФЗ «О качестве и безопасности пищевых продуктов».

3.3. Федеральный закон от 26 июня 2008 года № 102-ФЗ «Об обеспечении единства измерений».

3.4. Федеральный закон от 27 декабря 2002 года № 184-ФЗ «О техническом регулировании».

3.5. Федеральный закон от 10 января 2002 года № 7-ФЗ «Об охране окружающей среды».

3.6. Постановление Правительства Российской Федерации от 30 июня 2004 года № 322 «Об утверждении Положения о Федеральной службе в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека».

3.7. Постановление Правительства Российской Федерации от 21 декабря 2000 года № 987 «О государственном надзоре и контроле в области обеспечения качества и безопасности пищевых продуктов».

3.8. Постановление Правительства Российской Федерации от 21 декабря 2000 года № 988 «О государственной регистрации новых пищевых продуктов, материалов и изделий».

3.9. Постановление Правительства Российской Федерации от 2 февраля 2006 года № 60 «Об утверждении Положения о проведении социально-гигиенического мониторинга».

3.10. Постановление Правительства Российской Федерации от 15 сентября 2005 года № 569 «О Положении об осуществлении государственного санитарно-эпидемиологического надзора в Российской Федерации».

3.11. Приказ Министерства здравоохранения СССР от 12 августа 1977 года № 755 «О мерах по дальнейшему совершенствованию организационных форм работы с использованием экспериментальных животных».

3.12. Приказ Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации от 23 августа 2010 г. № 708н «Об утверждении Правил лабораторной практики».

3.13. Постановление Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 23 июля 2007 года № 54 «О надзоре за продукцией, полученной с использованием нанотехнологий и содержащей наноматериалы».

3.14. Постановление Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 31 октября 2007 года № 79 «Об утверждении Концепции токсикологических исследований, методологии оценки риска, методов идентификации и количественного определения наноматериалов».

3.15. СанПиН 2.6.1.2523-09 «Нормы радиационной безопасности (НРБ -99/2009)».

3.16. ГН 1.2.2633-10 «Гигиенические нормативы содержания приоритетных наноматериалов в объектах окружающей среды».

3.17. СП 2.2.2.1327-03 «Гигиенические требования к организации технологических процессов, производственному оборудованию и рабочему инструменту».

3.18. МУ 1.2.2520-09 «Токсиколого-гигиеническая оценка безопасности наноматериалов».

3.19. МУ 1.2.2636-10 «Проведение санитарно-эпидемиологической экспертизы продукции, полученной с использованием нанотехнологий и наноматериалов».

3.20. МУ 1.2.2741-10 «Порядок отбора проб для выявления и идентификации наноматериалов в лабораторных животных».

3.21. МУ 1.2.2742-10 «Порядок отбора проб для выявления и идентификации наноматериалов в растениях».

3.22. МУ 1.2.2745-10 «Порядок отбора проб для характеристики действия наноматериалов на лабораторных животных».

3.23. МУ 1.2.2873-11 «Порядок выявления и идентификации наноматериалов в водных беспозвоночных».

3.24. МУ 1.2.2874-11 «Порядок выявления и идентификации наноматериалов в лабораторных животных».

3.25. МУ 1.2.2875-11 «Порядок выявления и идентификации наноматериалов в водоемах».

3.26. МУ 1.2.2876-11 «Порядок выявления и идентификации наноматериалов в растениях».

3.27. МУ 1.2.2877-11 «Порядок выявления и идентификации наноматериалов в рыбах».

3.28. МУ 1.2.2634-10 «Микробиологическая и молекулярно-генетическая оценка воздействия наноматериалов на представителей микробиоценоза».

3.29. МУ 1.2.2635-10 «Медико-биологическая оценка безопасности наноматериалов».

3.30. МР 1.2.2522-09 «Выявление наноматериалов, представляющих потенциальную опасность для здоровья человека».

3.31. МР 1.2.2566-09 «Оценка безопасности наноматериалов in vitro и в модельных системах in vivo».

3.32. МР 1.2.2639-10 «Использование методов количественного определения наноматериалов на предприятиях наноиндустрии».

3.33. МР 1.2.2640-10 «Методы отбора проб, выявления и определения содержания наночастиц и наноматериалов в составе сельскохозяйственной, пищевой продукции и упаковочных материалов».

3.34. МР 1.2.2641-10 «Определение приоритетных видов наноматериалов в объектах окружающей среды, живых организмах и пищевых продуктах».

3.35. МР 1.2.0022-11 «Порядок отбора проб для контроля за наноматериалами».

3.36. МР 1.2.0023-11 «Контроль наноматериалов в пищевой продукции».

3.37. ГОСТ 2603-79 «Реактивы. Ацетон. Технические условия».

3.38. ГОСТ 4328-77 «Реактивы. Натрия гидроокись. Технические условия».

3.39. ГОСТ 6709-72 «Вода дистиллированная. Технические условия».

3.40 ГОСТ 1942-86 «1,2-Дихлорэтан технический. Технические условия».

3.41. ГОСТ 4198-75 «Реактивы. Калий фосфорнокислый однозамещенный. Технические условия».

3.42. ГОСТ 3118-77 «Реактивы. Кислота соляная. Технические условия».

3.43. ГОСТ 4172-76 «Реактивы. Натрий фосфорнокислый двузамещенный 12-водный. Технические условия».

3.44. ГОСТ 5833-75 «Реактивы. Сахароза. Технические условия».

3.45. ГОСТ Р 51652-2000 «Спирт этиловый ректификованный из пищевого сырья. Технические условия».

3.46. ГОСТ 24104-2001 «Весы лабораторные. Общие технические требования».

3.47. ГОСТ 27987-88 «Анализаторы жидкости потенциометрические ГСП. Общие технические условия».

3.48. ГОСТ 25336-82 «Посуда и оборудование лабораторные стеклянные. Типы, основные параметры и размеры».

3.49. ГОСТ 1770-74 «Посуда мерная лабораторная стеклянная. Цилиндры, мензурки, колбы, пробирки. Общие технические условия».

3.50. ГОСТ 29227-91 «Посуда лабораторная стеклянная. Пипетки градуированные. Часть 1. Общие требования».

3.51. ГОСТ 21240-89 «Скальпели и ножи медицинские. Общие технические требования и методы испытаний».

3.52. ГОСТ 21241-89 «Пинцеты медицинские. Общие технические требования и методы испытаний».

3.53. ГОСТ 26678-85 «Холодильники и морозильники бытовые электрические компрессионные параметрического ряда. Общие технические условия».

3.54. ГОСТ 3-88 «Перчатки хирургические резиновые. Технические условия».

3.55. ГОСТ 2493-75 «Реактивы. Калий фосфорнокислый двузамещенный 3-водный. Технические условия».

3.56. ГОСТ 4568-95 «Калий хлористый. Технические условия».

3.57. ГОСТ 4233-77 «Реактивы. Натрий хлористый. Технические условия».

3.58. ГОСТ 1625-89 «Формалин технический. Технические условия».

3.59. ГОСТ 4517-87 «Реактивы. Методы приготовления вспомогательных реактивов и растворов, применяемых при анализе».

3.60. ГОСТ 20015-88 «Хлороформ. Технические условия».

3.61. ГОСТ 21239-93 «Инструменты хирургические. Ножницы. Общие требования и методы испытаний».

3.62. ГОСТ 7.32-2001 «Отчет о научно-исследовательской работе. Структура и правила оформления».

3.63. ГОСТ Р ИСО/МЭК 17025-2006 «Общие требования к компетентности испытательных и калибровочных лабораторий».

IV. Общие положения

4.1. Целью выявления и идентификации агрегатов фуллеренов С60 в срезах тканей животных и растений методами аналитической электронной микроскопии является:

  • установление возможности проникновения фуллеренов С60 в организмы животных и растения;
  • выявление мишеней воздействия фуллеренов С60;
  • установление наличия эффектов кумуляции фуллеренов С60 в организмах животных и растениях;
  • выявление механизмов действия фуллеренов С60;
  • исследования по токсиколого-гигиенической и медико-биологической оценке фуллеренов С60 и продукции, их содержащей;
  • санитарно-гигиеническое нормирование содержания фуллеренов С60 в продовольственном сырье и пищевых продуктах растительного и животного происхождения;
  • экспертиза продукции наноиндустрии, полученной или содержащей фуллерены С60, производимой на территории Российской Федерации или ввозимой на территорию Российской Федерации;
  • государственный надзор (контроль) за использованием фуллеренов С60 и продукции, их содержащей, в процессе разработки, производства, хранения, транспортирования, реализации и утилизации;
  • оценка экспозиции человека фуллеренами С60 через пищевые продукты животного и растительного происхождения;
  • оценка риска для здоровья населения при поступлении фуллеренов С60 в составе продукции растительного и животного происхождения;
  • проверка оценки соответствия продукции наноиндустрии установленным требованиям;
  • разработка мероприятий по охране окружающей среды от воздействия фуллеренов С60.

4.2. Отбор проб осуществляется в соответствии с МУ 1.2.2741-10 «Порядок отбора проб для выявления и идентификации наноматериалов в лабораторных животных», МУ 1.2.2742-10 «Порядок отбора проб для выявления и идентификации наноматериалов в растениях», МУ 1.2.2745-10 «Порядок отбора проб для характеристики действия наноматериалов на лабораторных животных», МР 1.2.2640-10 «Методы отбора проб, выявления и определения содержания наночастиц и наноматериалов в составе сельскохозяйственной, пищевой продукции и упаковочных материалах», МР 1.2.0022-11 «Порядок отбора проб для контроля за наноматериалами», МУ 1.2.2740-10 «Порядок отбора проб для выявления, идентификации и характеристики действия наноматериалов в водных беспозвоночных», МУ 1.2.2744-10 «Порядок отбора проб для выявления, идентификации и характеристики действия наноматериалов в рыбах», МУ 1.2.2873-11 «Порядок выявления и идентификации наноматериалов в водных беспозвоночных».

4.3. Технические характеристики электронных микроскопов и вспомогательного лабораторного оборудования, применяемого при выявлении и идентификации агрегатов фуллеренов С60 в срезах тканей животных и растений, представлены в МР 1.2.2639-10 «Использование методов количественного определения наноматериалов на предприятиях наноиндустрии и в контролирующих организациях» и МР 1.2.2641-10 «Определение приоритетных видов наноматериалов в объектах окружающей среды, живых организмах и пищевых продуктах».

4.4. Организация (лаборатория) должна быть аккредитована на проведение работ в области оценки безопасности наноматериалов.

В лаборатории должны соблюдаться правила надлежащей лабораторной практики в соответствии с Приказом Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации от 23 августа 2010 года № 708н «Об утверждении Правил лабораторной практики».

4.5. В организации (лаборатории), проводящей исследования по выявлению и идентификации агрегатов фуллеренов С60 в срезах тканей животных и растений, должна быть разработана программа по обеспечению качества проводимых исследований. Все производственные операции проводятся в соответствии со Стандартными операционными процедурами (СОП), осуществляемыми в целях обеспечения качества, достоверности и воспроизводимости результатов исследования.

4.6. Организации (лаборатории), проводящие исследования по выявлению и идентификации агрегатов фуллеренов С60 в срезах тканей животных и растений методами аналитической электронной микроскопии, должны быть укомплектованы необходимым оборудованием и средствами измерений, прошедшими поверку (калибровку) в установленном порядке. Эксплуатация оборудования и средств измерений проводится в соответствии с техническим паспортом и инструкцией по применению. Результаты проведения поверки (калибровки) и текущего ремонта оборудования фиксируются в специальном журнале, доступном в любое время сотрудникам, эксплуатирующим оборудование или обеспечивающим его обслуживание. Применяются средства измерений, имеющие сертификат и зарегистрированные в Государственном реестре средств измерений.

4.7. Организации (лаборатории), проводящие исследования по выявлению и идентификации агрегатов фуллеренов С60 в срезах тканей животных и растений методами аналитической электронной микроскопии, должны иметь оборудованные помещения для работы с биологическим материалом (препарирование, пробоподготовка, анализ). Материал, поступивший в лабораторию, должен быть обработан в комнате пробоподготовки. Для обработки материала должны быть установлены ламинарные шкафы, обеспечивающие вертикальный поток воздуха, а также возможность работы без ламинарного потока и длительную экспозицию облучения внутренних поверхностей ультрафиолетовым светом.

4.8. Организации (лаборатории), проводящие исследования по выявлению и идентификации агрегатов фуллеренов С60 в срезах тканей животных и растений методами аналитической электронной микроскопии, должны иметь оборудование, обеспечивающее безопасность работы с наноматериалами неорганического и биогенного происхождения: ламинарные вытяжные шкафы, перчаточные боксы, снабженные системой вентиляции (НЕРА-фильтры), препятствующие поступлению аэрозоля наноматериалов в воздух производственных помещений и в окружающую среду.

4.9. Организации (лаборатории), проводящие исследования по выявлению и идентификации агрегатов фуллеренов С60 в срезах тканей животных и растений методами аналитической электронной микроскопии, должны иметь помещения для содержания и работы с лабораторными животными (виварий, клиники лабораторных животных), требования к которым изложены в МУ 1.2.2874-11 «Порядок выявления и идентификации наноматериалов в лабораторных животных».

4.10. Документом, подтверждающим результаты проведенных исследований наноматериалов, является отчет о проведенном исследовании. Отчет содержит следующие сведения: название исследования; адрес организации; даты начала и завершения исследований; цель и задачи исследования; характеристика тестируемого наноматериала; перечень исследованных образцов и применяемых стандартов; для животных — вид, линия, пол и возраст используемых животных, состав применяемых рационов, условия содержания животных, метод введения фуллеренов С60, применяемые дозы, длительность и кратность введения; схема проведения исследования; для растений — вид, линия используемых растений, условия выращивания или сбора, методы введения фуллеренов С60, применяемые дозы, длительность введения; схема проведения исследования; перечень использованных средств измерений и вспомогательного оборудования и режимы их работы; методы статистической обработки результатов; результаты исследования, представленные в виде обобщающих таблиц, рисунков с соответствующей статистической обработкой и комментариев к ним; заключение; выводы; список использованных источников.

Оформление отчета о результатах исследования должно соответствовать требованиям ГОСТ 7.32-2001 «Отчет о научно-исследовательской работе. Структура и правила оформления».

Отчет о результатах проведенного исследования составляется ответственным исполнителем, утверждается руководителем организации и скрепляется печатью организации.

4.11. Организация (лаборатория), проводящая исследования по выявлению и идентификации агрегатов фуллеренов С60 в срезах тканей животных и растений методами аналитической электронной микроскопии, должна обеспечить конфиденциальность результатов исследований в рамках принятых ею обязательств и в соответствии с законодательством Российской Федерации.

4.12. Сотрудники, принимающие участие в проведении исследований по выявлению и идентификации агрегатов фуллеренов С60 в срезах тканей животных и растений методами аналитической электронной микроскопии, обязаны соблюдать конфиденциальность в отношении любых данных, полученных в ходе исследования, в соответствии с законодательством Российской Федерации.

V. Методики подготовки проб для выявления и идентификации агрегатов фуллерена С60 в срезах тканей растений

5.1. Реактивы, материалы и оборудование

5.1.1 Реактивы:
-  <a id="p100126"></a>дигидрофосфат  калия  водный  (KH PO  х H O),   квалификация   х.ч.
                                    2  4    2

по ГОСТ 4198-75; - гидрофосфат натрия 12-водный (Na HPO х 12H O), квалификация х.ч. 2 4 2 по ГОСТ 4172-76;

  • гидроксид натрия (NaOH), квалификация х.ч. по ГОСТ 4328-77;
  • сахароза, квалификация х.ч. по ГОСТ 5833-75;
  • кислота соляная (HCl), квалификация х.ч. по ГОСТ 3118-77;
  • дистиллированная вода по ГОСТ 6709-79;
    • глутаровый альдегид (25%-ный водный раствор) по ТУ 6-02-1273-89, Grade I, специальной очистки для использования в электронной микроскопии;
  • спирт этиловый ректифицированный, 96%-ный по ГОСТ 51652-2000 первого сорта или высшей очистки;
  • ацетон, квалификация ч.д.а. по ГОСТ 2603-79;
    • эпоксидная смола ((Epoxy Embedding Medium, Эпон(R) 812) фирмы «Sigma-Aldrich» (США) или аналогичная);
    • додецил янтарный ангидрид фирмы «Sigma-Aldrich» (США) или аналогичный;
    • метилэндиковый ангидрид МЭА-610 фирмы «Sigma-Aldrich» (США) или аналогичный;
    • тридиметиламинофенол (катализатор DMP-30) фирмы «Sigma-Aldrich» (США) или аналогичный;
    • формвар (Formvar(R) solution) для микроскопии фирмы «Sigma-Aldrich» (США) или аналогичный (в случае самостоятельного приготовления формвара);
    • дихлорэтан по ГОСТ 1942-86 (для приготовления раствора формвара).
5.1.2 Материалы:
  • материалы, необходимые для отбора проб растений, в соответствии с МУ 1.2.2876-11;
  • пинцет медицинский по ГОСТ 21241-89;
  • ножницы медицинские по ГОСТ 21239-93;
  • скальпель по ГОСТ 21240-89;
  • перчатки хирургические резиновые по ГОСТ 3-88;
  • бритва фирмы «TedPella, Inc.» (США), кат. № 121-1 или аналогичная;
  • контейнеры стеклянные для фиксации материала вместимостью 50 куб. см;
  • пенициллиновые флаконы стеклянные с завинчивающейся крышкой вместимостью 10 куб. см;
  • чашки Петри стеклянные (диаметром 12 куб. см) по ГОСТ 25336-82;
  • пробирки стеклянные вместимостью 20 куб. см по ГОСТ 25336-82 с резиновой пробкой;
  • штативы для пробирок;
  • медицинский шприц объемом 50 — 100 куб. см (для удаления воздуха из растений);
  • цилиндр мерный вместимостью 100 куб. см с наименьшей ценой деления 1 куб. см по ГОСТ 1770-74;
  • колба мерная стеклянная с притертой крышкой вместимостью 250 куб. см по ГОСТ 1770-74, ГОСТ 23932-90;
  • колбы (стеклянные без крышки) вместимостью 100; 250 и 1000 куб. см;
  • пипетки стеклянные или пластиковые градуированные вместимостью 5 куб. см по ГОСТ 29227-91;
  • наконечники для автоматических дозаторов полистирольные нестерильные вместимостью 200 и 1000 куб. мм;
  • система для фильтрации растворов стеклянная вместимостью 1,0 куб. дм с вакуумным насосом;
  • мембраны эфирно-целлюлозные толщиной 150 мкм, диаметром 47 мм с размером пор 0,22 мкм;
  • пинцет для электронно-микроскопических работ 110 мм, тип 5, кончик 0,05 х 0,01 мм (или 115 мм, тип 7, кончик 0,10 х 0,06 мм), ненамагничивающийся TedPella;
  • полипропиленовые пробирки для микропроб однократного применения типа «Эппендорф» вместимостью 1,5 и 2,0 куб. см по ТУ 64-2-30-80;
  • полиэтиленовые капсулы с плоским или коническим дном для заливки образцов, диаметр от 6 мм, выдерживающие нагрев до 75 °C, или полипропиленовые аналогичные капсулы, выдерживающие нагрев до 100 °C, производства BEEM(R) Embedding Capsule или аналогичные;
  • контейнеры тефлоновые с размером лунки от 0,5 х 0,5 см до 1,0 х 1,0 см для заливки образцов в эпоксидную смолу;
  • электронно-микроскопические бленды (медные), отверстие круглое 1, 3 мм или овальное 1 х 2 мм, или сетки медные круглые с размером отверстий 200 — 450 мкм;
  • специальное стекло для изготовления стеклянных ножей шириной 25 мм, длиной 400 или 200 мм, толщина 6 или 10 мм фирмы TedPella, Agar Scientific или аналогичное (если используются стеклянные ножи);
  • пластиковые одноразовые ванночки для сбора срезов фирмы TedPella или аналогичные;
  • палочки для чистки алмазного ножа из сердцевины пробкового дерева фирмы TedPella, Agar Scientific или аналогичные (если используется алмазный нож);
  • стеклянная палочка длиной до 220 см и диаметром 3 — 5 мм;
  • химически чистое отшлифованное стекло для получения формваровой пленки;
  • специальный стеклянный стакан для приготовления и хранения раствора формвара;
  • наклейки для маркировки;
  • фильтровальная бумага.
5.1.3 Оборудование:
  • вытяжной шкаф, оборудованный фильтром для улавливания наночастиц;
  • холодильник бытовой электрический по ГОСТ 26678-85;
  • центрифуга со скоростью вращения ротора до 12000 об./мин. и охлаждением для пробирок вместимостью 1,5 куб. см (5415 R «Eppendorf», ФРГ, или аналогичная);
  • весы лабораторные общего назначения 2-го класса точности с погрешностью взвешивания не более 0,001 г по ГОСТ 24104-2001;
  • pH-метр по ГОСТ 27987-88 или аналогичный, диапазон измерения pH, ед. рН от 0,0 до 14, дискретность измерения 0,01;
  • ультрамикротом, обеспечивающий возможность получения ультратонких срезов биологических образцов толщиной 30 — 100 нм, скорость резания 0,1 — 50 мм/с, термоподача 40 — 60 нм;
  • прибор для изготовления стеклянных ножей для ультрамикротомов LKB 7800 или аналогичный;
  • алмазные ножи для ультрамикротома;
  • магнитная мешалка с регулируемой частотой вращения магнитного якоря в диапазоне 100 — 1200 об./мин., рассчитанная на объем до 1,0 куб. дм;
  • электромешалка со спиральной насадкой низкоскоростная (до 250 об./мин.), рассчитанная на объем до 0,5 куб. дм;
  • суховоздушный термостат с диапазоном регулируемых температур от 25 до 80 °C и точностью +/- 0,4 °C;
  • дистиллятор, объем от 4 куб. дм, производительность от 1 куб. дм/ч;
  • автоматические дозаторы с переменным объемом дозирования 100 — 1000, 20 — 200 и 2 — 20 куб. мм;
  • держатели для прямоугольных и круглых блоков, совместимые с используемым ультрамикротомом, фирма TedPella, Agar Scientific, или аналогичные;
  • лобзик ручной механический для обработки залитых в эпоксидную смолу образцов;
  • бинокулярная лупа, оснащенная настольным штативом, с линейным полем зрения от 2 до 10 см и диапазоном увеличений 0,6х, 1х, 2х, 4х, 8х.

5.2. Приготовление рабочих растворов и смесей

Рабочие растворы готовят в соответствии с общепринятыми правилами лабораторной практики. pH растворов контролируют при помощи pH-метра. Приготовленные растворы фильтруют через мембранные фильтры с диаметром пор 0,22 мкм. После каждого использования рабочие инструменты подвергают тщательной обработке в ультразвуковой ванне во избежание перекрестной контаминации образцов наночастицами.

5.2.1 Приготовление двукратного раствора Соренсена (0,2 моль/куб. дм)
0,06  моль/куб.  дм  KH PO ,  0,14 моль/куб.  дм  Na HPO ,  pH 7,2 - 7,4, с
                       2  4                         2   4

добавлением 30 г/куб. дм сахарозы.

    Для   приготовления  вспомогательных  1,0  моль/куб.  дм  растворов  на
лабораторных весах  готовят навески 136 г KH PO , 358,2 г Na HPO  х 12H O и
                                            2  4            2   4      2
вносят  каждое  вещество  в  отдельную  мерную  колбу объемом 1000 куб. см,
содержащую   500   кв.   см  дистиллированной  воды.  Соли  растворяют  при
перемешивании  и  объемы  растворов  доводят дистиллированной водой до 1000
куб.  см.  Вспомогательные  растворы  фильтруют и хранят при температуре не

более 4 °C в течение 6 месяцев.

    Для  приготовления  двукратного  0,2  моль/куб. дм раствора Соренсена с
добавлением  30  г/куб.  дм  сахарозы на лабораторных весах готовят навеску
30,0  г  сахарозы и помещают в мерную колбу объемом 1000 куб. см. В колбу с
веществом  вносят  300  куб.  см  дистиллированной  воды,  60  куб.  см 1,0
моль/куб.  дм  раствора  KH PO ,  140  куб.  см  1,0 моль/куб. дм  раствора
                           2  4
Na HPO  и растворяют при перемешивании. Объем раствора доводят до 1000 куб.
  2   4

см дистиллированной водой, фильтруют и хранят при температуре не более 4 °C в течение 1 месяца.

5.2.2 Приготовление однократного раствора Соренсена (0,1 моль/куб. дм)
0,03  моль/куб.  дм  KH PO ,  0,07  моль/куб.  дм  Na HPO ,   pH 7,2 - 7,4,
                       2  4                          2   4

15 г/куб. дм сахарозы.

Для приготовления 100 куб. см однократного раствора Соренсена (0,1 моль/куб. дм) с добавлением 15 г/куб. дм сахарозы к 50 куб. см двукратного раствора Соренсена с добавлением 30 г/куб. дм сахарозы (приготовление описано в пункте 5.2.1) добавляют 50 куб. см дистиллированной воды.

5.2.3. Приготовление фиксирующего раствора (0,1 моль/куб. дм, раствор Соренсена, pH 7,2 — 7,4, 2,5% глутарового альдегида)

Для приготовления 100 куб. см фиксирующего раствора в мерную колбу вносят 50 куб. см двухкратного раствора Соренсена с добавлением 30 г/куб. дм сахарозы (по п. 5.2.1), 10 куб. см коммерческого препарата глутарового альдегида (25%-ный водный раствор). С помощью pH-метра доводят pH буфера до 7,3 добавлением 1М HCl и далее доводят объем раствора до 100 куб. см дистиллированной водой.

Фиксирующий раствор готовят непосредственно перед использованием из расчета 4 куб. см на 1 образец.

5.2.4. Приготовление 1 моль/куб. дм раствора NaOH pH 14, а также 10%-ных, 20%-ных, 30%-ных, 40%-ных, 50%-ных, 60%-ных, 70%-ных, 80%-ных водных растворов этанола проводят, как описано в МР 1.2.2641-10 «Определение приоритетных видов наноматериалов в объектах окружающей среды, пищевых продуктах и живых организмах» (пункт 5.1.3.3). Растворы этанола готовят из расчета 2 куб. см на образец и хранят в плотно закрытых емкостях при температуре 4 °C в течение 1 месяца.

5.2.5 Приготовление смеси эпоксидных смол

Смесь эпоксидных смол готовят непосредственно перед использованием:

  • готовят смесь А (смешивают эпон 812 и додецилянтарный ангидрид в соотношении 5:8 по объему, из расчета 3 куб. см на 1 образец);
  • готовят смесь Б (смешивают эпон 812 и метилэндиковый ангидрид в соотношении 8:7 по объему, из расчета 3 куб. см на 1 образец);
  • объединяют смеси А и Б в соотношении 13:15 по объему в стеклянном стакане и перемешивают в течение 20 — 60 мин. с помощью электромешалки со спиральной насадкой при скорости вращения 100 — 120 об./мин., добавляют 1% (по весу) катализатора полимеризации тридиметиламинофенол. Следует отметить, что оптимизация твердости полимерного блока может потребовать экспериментального подбора точных пропорций смолы и катализатора.
5.2.6 Приготовление смесей ацетона и эпоксидной смолы

Ацетон и эпоксидную смолу без добавления катализатора, приготовленную по 5.2.5, смешивают в объемных соотношениях 3:1, 1:1, 1:3. Каждую смесь готовят непосредственно перед использованием из расчета 2 куб. см на 1 образец.

5.3. Подготовка проб к анализу методами электронной микроскопии

Все работы с использованием органических растворителей (ацетон и его смеси с эпоксидными смолами) ведут в вытяжном шкафу, применяя только стеклянную посуду.

5.3.1. Из образцов ткани растений, фиксированных раствором глутарового альдегида, скальпелем или лезвием вырезают более мелкие участки длиной от 3 до 5 мм, не менее двух из каждой зоны. Полученный набор фрагментов подвергают обработке без применения контрастирующих агентов. При подготовке проб применяют полную процедуру, описанную в п. п. 5.3.2 — 5.3.8.

5.3.2. Чтобы минимизировать проникновение в ткани растений пузырьков воздуха, препятствующих эффективному проникновению фиксатора и снижающих качество получаемых образцов, при помощи медицинского шприца вручную откачивают воздух из вырезанных участков. Для этого образцы тканей помещают в медицинский шприц, наполовину заполняют шприц фиксирующим раствором, отверстие шприца зажимают пальцем и, оттягивая поршень вверх, откачивают воздух из образцов. Эту процедуру повторяют несколько раз, и ее цель заключается в устранении пузырей воздуха из тканей растений. Воздушные пузыри препятствуют равномерной пропитке ткани фиксирующим раствором и вызывают формирование полостей, из-за чего ультратонкие срезы крошатся при изготовлении.

После этой процедуры образцы каждого вида от одной объединенной пробы снова помещают в отдельный пенициллиновый флакон или контейнер с фиксирующим раствором. Флаконы маркируют с указанием вида растения, органа (из которого взяты образцы), даты и места сбора. Срок хранения образцов в фиксирующем растворе при температуре 4 °C — не более 12 месяцев. Нельзя допускать замораживания образцов при хранении.

5.3.3. Образцы промывают в буферном растворе Соренсена (pH 7,2 — 7,4) 2 — 4 раза до получения прозрачного смыва.

5.3.4. Проводят обезвоживание образцов в серии растворов этанола возрастающих концентраций. Для этого пробы обрабатывают 2 куб. см каждого из спиртовых растворов в следующем порядке:

  • 10%-ным этанолом в течение 30 мин. при 4 °C (процедуру повторяют 3 — 4 раза, до получения визуально прозрачного водно-спиртового смыва);
  • 20%-ным этанолом в течение 30 мин. при 4 °C;
  • 30%-ным этанолом в течение 30 мин. при 4 °C;
  • 40%-ным этанолом в течение 30 мин. при 4 °C;
  • 50%-ным этанолом в течение 30 мин. при 4 °C
  • 60%-ным этанолом в течение 30 мин. при 4 °C;
  • 80%-ным этанолом в течение 30 мин. при комнатной температуре;
  • 96%-ным этанолом в течение 30 мин. при комнатной температуре.
5.3.5 Образцы инкубируют в 100%-ном ацетоне два раза по 60 мин.

5.3.6. Образцы пропитывают смесями ацетона с эпоксидными смолами (приготовленными по п. 5.2.5) в последовательности, которая обеспечивает возрастание концентрации эпоксидных смол:

  • из 3 частей ацетона и 1 части смеси эпоксидных смол (п. 5.2.6) - в течение 24 ч;
  • из 2 частей ацетона и 2 частей смеси эпоксидных смол — в течение 24 ч;
  • из 1 части ацетона и 3 частей смеси эпоксидных смол — в течение 24 ч.

5.3.7. Подготовленные образцы стеклянной палочкой переносят в заливочные контейнеры, заполненные 100%-ной эпоксидной смолой с добавлением катализатора. Для полимеризации смолы контейнеры с образцами инкубируют в термостате при 37 °C в течение 24 ч, затем при 45 °C в течение 24 ч и при 60 °C в течение 24 ч.

5.3.8. Из образцов, заключенных в смолу, при помощи лобзика выпиливают блоки размером 2 х 2 х 5 мм. Из эпоксидного блока, закрепленного в держателе, лезвием бритвы формируют усеченную пирамиду, с меньшего основания которой с помощью ультрамикротома, оснащенного стеклянным или алмазным ножом, получают срезы толщиной 40 — 80 нм. Для повышения статистической значимости результатов анализа нарезку пробы организуют в виде 4 — 6 серий, отстоящих друг от друга не менее чем на 100 мкм, по 10 срезов в каждой серии. Случайно выбранные срезы (по 1 — 2 из каждой серии) вылавливают на бленды, покрытые формваровой пленкой, и высушивают не менее 1 часа. Необходимо удостовериться, что на отобранных срезах присутствует ткань.

5.4. Процедура подготовки образцов сравнения порошка С60

При проведении лабораторных исследований для приготовления образца сравнения используют порошок фуллерена С60 высокой степени чистоты (не менее 99,5%) отечественных или зарубежных производителей. Чистоту образца С60 дополнительно проверяют методом ВЭЖХ согласно МР 1.2.2641-10. При проведении мониторинга содержания С60 в объектах окружающей среды или при выявлении последствий техногенной аварии в качестве образца сравнения можно использовать образец фуллерена С60, производимого на предприятии, в окрестностях которого проводят мероприятия по выявлению С60. Следует учитывать, что при заливке в эпоксидную смолу молекулы фуллерена, как правило, спонтанно агрегируют с образованием наноразмерных агрегатов.

5.4.1. Взвешивают 25 мг сухого порошка фуллерена С60 с погрешностью +/- 1 мг и помещают на поверхность жидкой смеси эпоксидных смол (приготовленной согласно п. 5.2.5), налитой в полипропиленовую микропробирку (объем 1,8 — 2 куб. см) в объеме 1 куб. см.

5.4.2. Образец центрифугируют 3 мин. при ускорении 6000 g, полимеризуют и получают ультратонкие срезы методами, описанными в п. п. 5.3.7 - 5.3.8.

5.4.3. Произвольно выбранные срезы (2 — 4) переносят на бленды (или сетки), покрытые формваровой пленкой, и высушивают не менее 1 ч.

5.4.4. Эпоксидные блоки, содержащие агрегаты фуллерена С60, хранятся при температуре 20 °C в течение неограниченного времени.

5.4.5. Бленды (сетки) с ультратонкими срезами порошка фуллерена С60, заключенного в эпоксидную смолу, хранят при температуре 20 °C в специальных контейнерах до 1 года.

VI. Методика подготовки проб для выявления и идентификации агрегатов фуллерена С60 в срезах тканей животных

6.1. Реактивы, материалы и оборудование

6.1.1 Реактивы:
  • хлороформ по ГОСТ 20015-88, ч.д.а.;
    • диэтиловый эфир (эфир для наркоза стабилизированный, ч.д.а.) по ТУ 2600-001-43852015-05;
  • дистиллированная вода по ГОСТ 6709-79;
    • глутаровый альдегид по ТУ 6-02-1273-89 (25%-ный водный раствор), Grade I, специальной очистки для использования в электронной микроскопии;
    • нейтральный формалин, ч.д.а., по ГОСТ 1625-75 или приготовленный в соответствии с ГОСТ 4517-87, подраздел 2.158;
  • дигидрофосфат калия водный (KH PO х H O) (х.ч. по ГОСТ 4198-75); 2 4 2
  • гидрофосфат калия 3-водный (K HPO х 3H O) (х.ч. по ГОСТ 2493-75); 2 4 2
  • хлорид натрия NaCl (х.ч. по ГОСТ 4233-77);
  • кислота соляная HCl (х.ч. по ГОСТ 3118-77);
    • тетраоксид осмия (OsO ), ACS фирмы «Sigma-Aldrich» (США) или 4 аналогичный;
  • спирт этиловый ректифицированный 96%-ный по ГОСТ 51652-2000 первого сорта или высшей очистки;
  • ацетон, квалификация ч.д.а., по ГОСТ 2603-79;
    • эпоксидная смола (Epoxy Embedding Medium, Эпон(R) 812) фирмы «Sigma-Aldrich» (США) или аналогичная;
    • додецил янтарный ангидрид фирмы «Sigma-Aldrich» (США) или аналогичный;
    • метилэндиковый ангидрид МЭА-610 фирмы «Sigma-Aldrich» (США) или аналогичный;
    • тридиметиламинофенол (катализатор DMP-30) фирмы «Sigma-Aldrich» (США) или аналогичный;
    • формвар (Formvar(R) solution) для микроскопии фирмы «Sigma-Aldrich» (США) или аналогичный (в случае самостоятельного приготовления формвара);
    • дихлорэтан по ГОСТ 1942-86 (для приготовления раствора формвара).
6.1.2 Материалы:
  • перчатки хирургические резиновые по ГОСТ 3-88;
  • булавки или препаровальные иглы для фиксации животных на препаровальном столике;
  • препаровальный столик (из пробки или пенопласта);
  • пинцет медицинский по ГОСТ 21241-89;
  • ножницы медицинские по ГОСТ 21239-93;
  • ножницы глазные по ГОСТ 21239-89;
  • скальпель по ГОСТ 21240-89;
  • бритвенное лезвие фирмы «TedPella, Inc.» (США), кат. № 121-1 или аналогичная;
  • пенициллиновые флаконы стеклянные или полиэтиленовые с завинчивающейся крышкой вместимостью 10 куб. см (для фиксации);
  • пробирки стеклянные (с пробкой) или полиэтиленовые с завинчивающейся крышкой вместимостью 20 куб. см (для фиксации суспензионных образцов);
  • пенициллиновые флаконы стеклянные вместимостью 10 куб. см (для проводки);
  • чашки Петри стеклянные (диаметром 12 куб. см) по ГОСТ 25336-82;
  • штативы для пробирок;
  • цилиндр мерный вместимостью 100 куб. см с наименьшей ценой деления 1 куб. см по ГОСТ 1770-74;
  • колбы (стеклянные без крышки) вместимостью 100; 250 куб. см по ГОСТ 1770-74, ГОСТ 23932-90;
  • колба мерная стеклянная с притертой крышкой вместимостью 250 куб. см по ГОСТ 1770-74, ГОСТ 23932-90;
  • пипетки стеклянные или пластиковые градуированные вместимостью 5 куб. см по ГОСТ 29227-91;
  • наконечники для автоматических дозаторов полистирольные нестерильные вместимостью 200 и 1000 куб. мм;
  • система для фильтрации растворов стеклянная вместимостью 1,0 куб. дм с вакуумным насосом;
  • мембраны эфирно-целлюлозные толщиной 150 мкм, диаметром 47 мм с размером пор 0,22 мкм;
  • пинцет для электронно-микроскопических работ 110 мм, тип 5, кончик 0,05 х 0,01 мм (или 115 мм, тип 7, кончик 0,10 х 0,06 мм), ненамагничивающийся TedPella;
  • полипропиленовые пробирки для микропроб однократного применения типа «Эппендорф» вместимостью 1,5 и 2,0 куб. см по ТУ 64-2-30-80;
  • полиэтиленовые капсулы с плоским или коническим дном для заливки образцов, диаметр от 6 мм, выдерживающие нагрев до 75 °C, или полипропиленовые аналогичные капсулы, выдерживающие нагрев до 100 °C, производства BEEM(R) Embedding Capsule или аналогичные;
  • контейнеры тефлоновые с размером лунки от 0,5 х 0,5 см до 1,0 х 1,0 см для заливки образцов в эпоксидную смолу;
  • электронно-микроскопические бленды (медные), отверстие круглое 1, 3 мм или овальное 1 х 2 мм, или сетки медные круглые с размером отверстий 200 — 450 мкм;
  • специальное стекло для изготовления стеклянных ножей шириной 25 мм, длиной 400 или 200 мм, толщина 6 или 10 мм фирмы TedPella, Agar Scientific или аналогичное (если используются стеклянные ножи);
  • пластиковые одноразовые ванночки для сбора срезов фирмы TedPella или аналогичные;
  • палочки для чистки алмазного ножа из сердцевины пробкового дерева фирмы TedPella, Agar Scientific или аналогичные (если используется алмазный нож);
  • стеклянная палочка длиной до 220 см и диаметром 3 — 5 мм;
  • химически чистое отшлифованное стекло для получения формваровой пленки;
  • специальный стеклянный стакан для приготовления и хранения раствора формвара;
  • наклейки для маркировки;
  • фильтровальная бумага.
6.1.3 Оборудование:
  • вытяжной шкаф, оборудованный фильтром для улавливания наночастиц;
  • холодильник бытовой электрический по ГОСТ 26678-85;
  • центрифуга со скоростью вращения ротора до 12000 об./мин. и охлаждением для микропробирок вместимостью 1,5 куб. см (5415 R «Eppendorf», ФРГ, или аналогичная);
  • центрифуга мультифункциональная со скоростью вращения ротора до 5000 об./мин. (с бакет-ротором) и 14000 об./мин. (с угловым ротором), охлаждением для пробирок вместимостью 20 куб. см (5804 R «Eppendorf», ФРГ, или аналогичная) (для суспензионных образцов);
  • весы лабораторные общего назначения 2-го класса точности с погрешностью взвешивания не более 0,001 г по ГОСТ 24104-2001;
  • pH-метр по ГОСТ 27987-88 или аналогичный, диапазон измерения pH, ед. pH от 0,0 до 14, дискретность измерения 0,01;
  • ультрамикротом, обеспечивающий возможность получения ультратонких срезов биологических образцов толщиной 30 — 100 нм, скорость резания 0,1 — 50 мм/с, термоподача 40 — 60 нм;
  • прибор для изготовления стеклянных ножей для ультрамикротомов LKB 7800 или аналогичный;
  • алмазные ножи для ультрамикротома;
  • магнитная мешалка с регулируемой частотой вращения магнитного якоря в диапазоне 100 — 1200 об./мин., рассчитанная на объем до 1,0 куб. дм;
  • электромешалка со спиральной насадкой низкоскоростная (до 250 об./мин.), рассчитанная на объем до 0,5 куб. дм;
  • суховоздушный термостат с диапазоном регулируемых температур от 25 до 80 °C и точностью +/- 0,4 °C;
  • дистиллятор, объем от 4 куб. дм, производительность от 1 куб. дм/ч;
  • автоматические дозаторы с переменным объемом дозирования 100 — 1000 куб. мм, 20 — 200 куб. мм и 2 — 20 куб. мм;
  • держатели для прямоугольных и круглых блоков, совместимые с используемым ультрамикротомом, фирма TedPella, Agar Scientific, или аналогичные;
  • лобзик ручной механический для обработки залитых в эпоксидную смолу образцов;
  • бинокулярная лупа, оснащенная настольным штативом, с линейным полем зрения от 2 до 10 см и диапазоном увеличений 0,6х, 1х, 2х, 4х, 8х;
  • встряхиватель вибрационный типа «Вортекс» со скоростью вращения до 3000 об./мин. (V3 «Elmi Ltd», Латвия, или аналогичный);
  • ламинарный бокс биологической безопасности, класс IIА.

6.2. Приготовление рабочих растворов и смесей

Рабочие растворы готовят в соответствии с общепринятыми правилами лабораторной практики. pH растворов контролируют при помощи pH-метра. Приготовленные растворы фильтруют через мембранные фильтры с диаметром пор 0,22 мкм. После каждого использования рабочие инструменты подвергают тщательной обработке в ультразвуковой ванне во избежание перекрестной контаминации образцов наночастицами.

6.2.1 Растворы, необходимые для подготовки образцов:
-  <a id="p100317"></a>двукратный фосфатно-солевой  буферный раствор (0,2 моль/куб. дм), pH

7,2  -  7,4  (0,04  моль/куб.  дм  KH PO ,  0,16  моль/куб.  дм  K HPO ), с
                                     2  4                         2   4

добавлением 1,76% (масса/объем) NaCl; - однократный фосфатно-солевой буферный раствор (0,1 моль/куб. дм), pH

7,2  -  7,4   (0,02   моль/куб. дм   KH PO ,   0,08 моль/куб. дм   K HPO ),
                                       2  4                         2   4

с добавлением 0,88% (масса/объем) NaCl; - фиксирующий раствор (2,5% глутарового альдегида в 0,1 моль/куб. дм фосфатно-солевом буферном растворе, pH 7,2 — 7,4, с добавлением 2%-ного нейтрального формалина), из расчета 4 куб. см на 1 образец; - водные растворы этанола с концентрацией 50, 60, 70 и 80%, из расчета 2 куб. см на 1 образец; - 2%-ный водный раствор OsO ; 4 - 1%-ный раствор OsO в 0,1 моль/куб. дм фосфатно-солевом буферном 4 растворе, pH 7,2 — 7,44, из расчета 2 куб. см на 1 образец.

    Процедуры  приготовления перечисленных растворов детально изложены в МР
1.2.2641-10  "Определение  приоритетных  видов  наноматериалов  в  объектах

окружающей среды, пищевых продуктах и живых организмах» (пункт 5.1.3.3).

Растворы фильтруют  и хранят в  плотно закрытых  емкостях  при  температуре
4 °C  в течение 1 месяца, за исключением фиксирующего  раствора  и  1%-ного
раствора   OsO   в  0,1 моль/куб. дм  фосфатно-солевом  буферном  растворе,
          4

которые готовят непосредственно перед использованием.

6.2.2 Приготовление смеси эпоксидных смол.

Смесь эпоксидных смол готовят непосредственно перед использованием согласно процедуре, изложенной в пункте 5.2.5.

6.2.3 Приготовление смесей ацетона и эпоксидной смолы.

Ацетон и смесь эпоксидных смол без добавления катализатора, приготовленную по п. 5.2.5, смешивают в объемных соотношениях 3:1, 1:1, 1:3. Каждую смесь готовят непосредственно перед использованием из расчета 2 куб. см на 1 образец.

6.3. Подготовки проб к анализу методом электронной микроскопии

Все работы с использованием органических растворителей (ацетон и его смеси с эпоксидными смолами) ведут в вытяжном шкафу, применяя только стеклянную посуду.

6.3.1. Тяжелые металлы, применяемые для контрастирования клеточных структур при стандартной подготовке биологических образцов для ПЭМ, существенно мешают обнаружению фуллерена С60. Поэтому образцы для детекции фуллерена С60 следует готовить без использования контрастирующих реагентов или с применением только тетраоксида осмия, который не оказывает значительного влияния на результаты анализа. Всю совокупность фиксированных образцов разделяют на две равноценные группы, одну из которых (в дальнейшем — группа № 1) дополнительно фиксируют и контрастируют тетраоксидом осмия, а вторую (группа № 2) подвергают обработке без применения контрастирующих агентов. Таким образом, при подготовке проб группы № 1 применяют полную процедуру, описанную в п. п. 6.3.2 - 6.3.9, а при подготовке проб группы № 2 исключают п. 6.3.3 и п. 6.3.4.

6.3.2. Каждый образец отмывают от фиксирующего раствора, инкубируя в 2 куб. см 0,1 моль/куб. дм фосфатного солевого раствора, pH 7,2 — 7,4, три раза по 5 минут однократно при комнатной температуре.

6.3.3. Образцы группы № 2 дополнительно фиксируют 1% OsO 4 в 0,1 моль/куб. дм фосфатном солевом растворе pH 7,2 — 7,4 в течение 2 ч.

6.3.4 Образцы промывают в 0,1 моль/куб. дм фосфатном солевом растворе,

pH 7,2 — 7,4, 2 — 4 раза до получения прозрачного смыва.

6.3.5 Образцы дегидратируют в серии растворов этанола возрастающих

концентраций. Для этого пробы обрабатывают 2 куб. см каждого из водно-спиртовых растворов в следующем порядке: - 50%-ным этанолом холодным (4 °C) отмывают образцы от OsO 3 — 4 раза 4 по 5 мин. до исчезновения потемнения раствора; использование холодного 50%-ного этанола предотвращает выпадение соединения осмия в осадок; - 60%-ным этанолом в течение 20 мин. при 4 °C (2 раза); - 70%-ным этанолом в течение 12 ч при 4 °C (оставляют на ночь в холодильнике); - 80%-ным этанолом в течение 20 мин. при комнатной температуре; - 96%-ным этанолом в течение 20 мин. при комнатной температуре.

6.3.6. Пробы обрабатывают 100%-ным ацетоном для полного вытеснения этанола (3 раза по 45 мин. при комнатной температуре).

6.3.7. Образцы пропитывают смесями ацетона с эпоксидными смолами (приготовленными по п. 5.2.5) в последовательности, которая обеспечивает возрастание концентрации эпоксидных смол:

  • из 3 частей ацетона и 1 части смеси эпоксидных смол (п. 5.2.6) - в течение 2 ч при комнатной температуре;
  • из 2 частей ацетона и 2 частей смеси эпоксидных смол — в течение 2 ч при комнатной температуре;
  • из 1 части ацетона и 3 частей смеси эпоксидных смол — в течение 12 ч при комнатной температуре;
  • 100%-ной смеси эпоксидных смол — в течение 2 ч при комнатной температуре.

6.3.8. Подготовленные образцы стеклянной палочкой переносят в заливочные контейнеры (допустимо использование фармацевтических блистеров для таблеток), заполненные 100%-ной смесью эпоксидных смол с добавлением катализатора. Для полимеризации смолы контейнеры с образцами инкубируют в термостате при 37 °C в течение 24 ч, затем при 60 °C в течение 48 ч.

6.3.9. Из образцов, заключенных в смесь эпоксидных смол, при помощи лобзика выпиливают блоки размером 2 х 2 х 5 мм. Из эпоксидного блока, закрепленного в держателе, лезвием бритвы формируют усеченную пирамиду, с которой при помощи ультрамикротома, оснащенного стеклянным или алмазным ножом, получают срезы толщиной 40 — 80 нм. Для повышения статистической значимости результатов анализа нарезку пробы организуют в виде 4 — 6 серий, отстоящих друг от друга не менее чем на 100 мкм, по 10 срезов в каждой серии. Случайно выбранные срезы (по 1 — 2 из каждой серии) вылавливают на бленды, покрытые формваровой пленкой, и высушивают не менее 1 часа. Необходимо удостовериться, что на отобранных срезах присутствует ткань.

6.4. Процедура подготовки референсных образцов порошка фуллерена С60

Препараты порошка фуллерена С60, заключенного в эпоксидную смолу, готовят согласно процедуре, описанной в подразделе 5.4.

VII. Методика проведения электронно-микроскопических измерений

7.1. Порядок проведения измерений

Выявление мономеров молекул фуллерена С60, размер которых 0,7 нм, в биологических образцах методами электронной микроскопии не представляется возможным. Однако фуллерен С60 имеет тенденцию накапливаться в клетках и структурах тканей в виде агрегатов. Детекция и идентификация агрегатов фуллерена С60 в срезах тканей растений и животных с применением методов аналитической ПЭМ основаны на том, что агрегаты фуллерена С60 имеют повышенную электронную плотность, выраженные морфологические отличия от биогенных структур, характеристические картину дифракции электронов и спектр ХПЭЭ. Для выявления агрегатов фуллерена С60 следует использовать неконтрастированные образцы (группа № 2). Образцы, контрастированные тетраоксидом осмия (группа № 1), рекомендуется использовать, если помимо выявления агрегатов фуллерена С60 необходимо охарактеризовать их локализацию в тканевых структурах. При этом вначале следует провести выявление агрегатов фуллерена С60 в препаратах проб группы № 2.

Для каждого анализируемого органа или вида ткани проводят измерения не менее чем на 3 срезах, взятых из различных частей образца. Процедура проведения измерения включает в себя:

а) регистрацию изображений, картины электронной дифракции и спектра ХПЭЭ от агрегатов фуллерена С60, получаемых при заливке чистого порошка фуллерена С60 в эпоксидную смолу (образец сравнения), с использованием настроек микроскопа, которые будут применяться при анализе образцов тканей растений или животных;

б) регистрацию обзорных изображений среза тканей растений или животных при увеличениях микроскопа от 6000х до 20000х с целью обнаружения электроноплотных включений, предполагаемых агрегатов фуллерена С60;

в) регистрацию изображений обнаруженных электронно-плотных включений при больших увеличениях микроскопа;

г) измерение электронограмм от обнаруженных электронно-плотных включений;

д) измерение спектров ХПЭЭ от обнаруженных электронно-плотных включений;

е) оценку плотности распределения агрегатов фуллерена С60 в анализируемом срезе.

7.2. Регистрация изображений, картины электронной дифракции и спектра ХПЭЭ от образца сравнения агрегатов фуллерена С60

7.2.1. После проведения стандартных процедур по настройке и юстировке прибора, изложенных в п. 6.1.2 МР 1.2.2639-10, срезы просматривают на средних увеличениях (от 6000х до 20000х, в зависимости от модели микроскопа и расположения цифровой камеры относительно флуоресцентного экрана). Образец исследуют зигзагообразно, используя принцип систематического случайного выбора:

а) определяют границы среза;

б) намечают воображаемую прямоугольную систему координат, совмещая ее первый квадрант с площадью среза (рисунок 1 — здесь и далее рисунки не приводятся);

в) в пределах среза, вблизи точки отсчета, выбирают первое поле зрения;

г) перемещают поле зрения вдоль выбранной оси системы координат (рисунок 1, OX);

д) дойдя до края среза, сдвигают перпендикулярно на величину одного поля зрения (рисунок 1, OY) и продолжают сканирование в противоположном направлении (рисунок 1, XO);

е) повторяют пункт «д» до обнаружения характерных включений, морфологически идентичных агрегатам фуллерена С60 (рисунок 2, А).

7.2.2. Получают изображение поля зрения, выбранного в пункте 7.2.1 «е», в режиме ПЭМ при средних увеличениях.

7.2.3. Получают ПЭМ-изображение найденных включений при увеличении 50000 — 200000х. Конкретное значение этого параметра выбирают так, чтобы оно обеспечивало возможность различить и охарактеризовать морфометрически элементы агрегата (т.е. размеры проекции изображения самого мелкого в скоплении агрегата на матрицу камеры должны составлять не менее 5 х 5 пикселей). Предпочтительно, чтобы выбранное увеличение позволяло детектировать характерную, типичную для фуллерена С60, параллельную исчерченность (рисунок 2, B), которая объясняется регулярной (квазикристаллической) упаковкой фуллерена С60 в агрегатах и является морфологическим признаком, облегчающим идентификацию специфических включений.

7.2.4. Регистрируют картину электронной дифракции от найденного скопления агрегатов фуллерена С60. Оптимизируют параметры: ускоряющее напряжение, размер апертурной диафрагмы, глубину дифракционной камеры, — добиваясь, чтобы на электронограмме были четко различимы дифракционные кольца. Предпочтительно использовать диаметр диафрагмы, ограничивающий область детекции размером не более 0,5 — 1,0 мкм, что позволяет более селективно регистрировать сигнал от выделенных электронно-плотных частиц. Критерием успешного подбора глубины дифракционной камеры является наличие трех — пяти (или более) дифракционных колец, не сливающихся друг с другом и с центральным рефлексом. Пример электронограммы приведен на рисунке 3.

7.2.5. Регистрируют спектр ХПЭЭ от найденного скопления агрегатов фуллерена С60 в диапазоне 275 — 325 эВ. Затем в максимальной близости к измеренному скоплению находят поле зрения, не содержащее агрегатов фуллерена С60 и, не изменяя настроек прибора, получают спектр ХПЭЭ от этой области.

7.3. Регистрация обзорных изображений среза тканей растений или животных

7.3.1. При проведении обзорного анализа определяют границы среза ткани и в пределах этих границ визуально оценивают наличие включений, аналогичных эталонным. При регистрации обзорных изображений среза ткани применяют процедуру, описанную в п. 7.2.1, со следующими дополнениями:

а) просматривают не менее 50% площади среза; для ускорения процедуры с сохранением репрезентативности можно рекомендовать просмотр каждого второго или каждого третьего поля зрения вдоль траектории сканирования;

б) регистрируют и сохраняют изображения всех полей зрения, содержащих предполагаемые агрегаты фуллерена С60 (пример такого изображения приведен на рисунке 4);

в) определяют масштаб цифрового изображения при используемом увеличении.

Масштаб рассчитывают как отношение L/X, где L — линейный размер поля образца, отображаемый микроскопом на ПЗС-камере при выбранном увеличении в нанометрах, X — число пикселей в оцифрованном изображении размером X х X пикселей. Полученное значение отмечают в протоколе исследования.

7.3.2. На срезах образцов группы № 1, контрастированных тетраоксидом осмия, дополнительно определяют зоны преимущественного накопления в клетках.

7.3.3. Обнаружение включений, аналогичных включениям на образце сравнения, вне границ среза ткани указывает на возможную контаминацию среза наночастицами фуллерена С60 в процессе пробоподготовки или выпадение агрегатов фуллерена С60 из мест их скопления на ультратонком срезе ткани. Если плотность агрегатов фуллерена С60 вне среза ткани в 10 и более раз ниже, чем в пределах самой ткани, результаты анализа считаются значимыми. Если плотность распределения агрегатов фуллерена С60 внутри среза ткани и за ее пределами (в эпоксидной смоле) сравнимы, процедуру пробоподготовки повторяют, используя свежеприготовленные растворы и смеси.

7.3.4. Если при просмотре всех подготовленных и отобранных для анализа срезов одной пробы (пункты 5.3.8 и 6.3.9) на средних увеличениях не обнаруживают включений, морфологически сходных с включениями, обнаруженными на образце сравнения, или частиц, которые значительно отличаются от эндогенных структур образца, делают заключение, что агрегаты фуллерена С60 в пробе отсутствуют или присутствуют в концентрации ниже предела детекции данным методом. В этом случае анализ ограничивают обзорным сканированием и более детальное исследование, описанное в пунктах 7.4 - 7.6, не проводят.

7.3.5. В ходе обзорного анализа могут быть обнаружены включения, морфологически не сходные с изображениями агрегатов фуллерена С60, полученными на образце сравнения, и отличающиеся от биологических структур. В таком случае предполагают, что эти включения имеют экзогенное происхождение и могут представлять собой особые типы агрегатов фуллерена С60, которые формируются под воздействием уникального сочетания физиологических и метаболических факторов, свойственных живому организму, но не образуются при механическом диспергировании порошка фуллерена С60 в эпоксидной смоле. Нетипичные включения анализируют так же, как сходные с эталоном. Их идентичность фуллерену С60 подтверждают или исключают только на основании результатов электронной дифракции и СХПЭЭ (пункты 7.5, 7.6).

7.4. Регистрация изображений электронно-плотных включений при больших увеличениях микроскопа

7.4.1. Для получения детализированных ПЭМ-изображений препарата выбирают области, содержащие один или несколько агрегатов типичной морфологии. Анализируют от 10 до 20 областей, в зависимости от степени вариабельности размера и формы агрегатов. Если в препарате присутствует несколько разновидностей частиц, сходных с агрегатами фуллерена С60, обнаруженных на образце сравнения, выборку формируют из частиц всех найденных типов. К нетипичным включениям (пункт 7.3.5) применяют аналогичную процедуру анализа.

7.4.2. Устанавливают увеличение (в диапазоне от 50000х до 200000х), выбранное при анализе образца сравнения (пункт 7.2). Если при заданных настройках ПЭМ удается различить характерную для фуллерена С60 параллельную исчерченность агрегатов (рисунок 2, В), при регистрации изображений обращают внимание, чтобы этот признак был хорошо выражен. Пример детализированного изображения агрегата фуллерена С60 в срезе биологической ткани, которое было получено при большом увеличении микроскопа, приведен на рисунке 5.

7.4.3. При получении цифрового изображения не допускают использования опции автоконтрастирования, так как нормирование на максимальную интенсивность ведет к потере информации об уровне электронной плотности и затрудняет идентификацию агрегатов фуллерена среди эндогенных наноразмерных включений.

7.4.4. Определяют масштаб цифрового изображения при выбранном увеличении микроскопа (пункт 7.3.1 «в»). Полученное значение отмечают в протоколе исследования.

7.5. Измерение электронограмм от обнаруженных электронно-плотных включений

7.5.1. Для получения электронограммы с помощью апертурной диафрагмы модуля для регистрации дифракции электронов выделяют область анализируемого скопления (рисунок 6). Следует учитывать, что надежность и достоверность идентификации методом электронной дифракции может снижаться, если размер агрегатов меньше 100 — 200 нм. Измерения проводят при ранее оптимизированных настройках прибора (пункт 7.2.4).

В качестве критерия, позволяющего идентифицировать агрегаты фуллерена С60 в процессе проведения измерений, рекомендуется оценивать соотношение диаметров характеристических колец и сравнивать их со значениями, установленными для образца сравнения (таблица 1).

Таблица 1

СООТНОШЕНИЯ ДИАМЕТРОВ (d /d ) ХАРАКТЕРИСТИЧЕСКИХ n 2 МАКСИМУМОВ 2-ГО И ПОСЛЕДУЮЩИХ (n-НЫХ) ПОРЯДКОВ ДЛЯ КАРТИНЫ ЭЛЕКТРОННОЙ ДИФРАКЦИИ АГРЕГАТА ФУЛЛЕРЕНА С60

n 3 4 5 6 7 8
d /d n 2 1,3 +/- 0,1 2,2 +/- 0,1 2,5 +/- 0,2 3,3 +/- 0,2 3,7 +/- 0,2 4,0 +/- 0,2

7.5.2. Если в области, ограниченной апертурной диафрагмой, присутствует единичный агрегат небольших размеров, метод электронной дифракции дополняют методом темного поля. Другим основанием для применения метода темного поля является случай, когда в области анализа присутствуют два или несколько отдельно лежащих включения, и при этом часть рефлексов не совпадает с положением характеристических колец.

Для получения изображения методом темного поля в режиме электронной дифракции с помощью апертурной диафрагмы выделяют наиболее яркий рефлекс из тех, которые расположены на линиях характеристических колец. Изменяют режим измерения и получают изображение той же области в темном поле. Совпадение изображений агрегата в режимах темного поля и светлого поля подтверждает, что источником выделенного на электронограмме рефлекса является анализируемое электронно-плотное включение. В случае, если метод применяют для идентификации источников нехарактерных рефлексов, их выделяют с помощью апертурной диафрагмы, а кристаллы, которые выявляют на полученном темнопольном изображении, относят к неспецифическим включениям. Если взаимное расположение электронно-плотных включений позволяет вывести идентифицированные неспецифические включения из области, ограниченной диафрагмой, то рекомендуется сделать это и повторно получить электронограмму от агрегатов фуллерена С60.

7.6. Измерение спектров ХПЭЭ от электронно-плотных включений

Формваровая подложка и область биологического образца, свободная от фуллерена, содержат соединения углерода в высокой концентрации и поэтому имеют в спектре потерь энергии электронов в области 275 — 325 эВ два пика 287 — 288 и 298 эВ. Возможность идентификации фуллерена С60 методом СХПЭЭ в составе биоматериала обусловлена появлением в спектре дополнительного, третьего, пика с максимумом 303 эВ, который сопровождается смещением максимума в области 298 эВ в сторону увеличения потерь энергии на 3 — 5 эВ в зависимости от вклада сигнала фуллерена С60 (рисунок 7).

Для получения спектра ХПЭЭ в области характерного пика углерода оператор ограничивает область анализируемых наночастиц при помощи диафрагмы. Выбор области, значительную долю которой занимает поверхность анализируемых наночастиц, существенно повышает отношение характеристичного сигнала пика к фону.

Спектр ХПЭЭ регистрируют в диапазоне потерь энергии 275 — 325 эВ. Оптимальную интенсивность освещения образца электронным лучом подбирают в каждом конкретном измерении, добиваясь условий, при которых не происходит насыщения детектора, плавления и дрейфа подложки. Затем выбирают область в непосредственной близости от скопления, не содержащую экзогенных включений, и, не изменяя настроек прибора, измеряют СХПЭЭ этой области. Полученный спектр является внутренним контролем, который позволяет оценить вклад сигнала от биологического матрикса в спектр ХПЭЭ анализируемого агрегата.

В качестве оперативной оценки наличия дополнительного, характерного для фуллерена С60, пика в спектре углерода рекомендуется использовать эмпирический критерий R (формула 1):

                  R = (I    - I   ) / (I    - I   ),                    (1)
                        306    288      298    288

    где  I   ,  I   ,  I     -  значения интенсивности сигнала при величине
          288    298    306
потерь  энергии  288, 298 и 306 эВ соответственно. Для биологической ткани,
не  содержащей  фуллерен  С60,  R  < 0,85 (при уровне значимости 0,01). Для
агрегатов   С60,  занимающих  более  5%  площади,  ограниченной  апертурной
диафрагмой  при  измерении  СХПЭЭ, значение R > 0,94 (при уровне значимости
0,01).  Значение  R  возрастает  с  увеличением  площади,  занимаемой С60 в
выбранной  для  анализа  зоне, и может превышать 1,0. Поэтому достоверность
оценки   зависит   от  соотношения  размера  агрегата  и  площади  образца,

выделяемой апертурной диафрагмой.

7.7. Оценка плотности и равномерности распределения агрегатов фуллерена С60 в образце

Оператор намечает линию, проходящую через весь срез, и вдоль этой линии измеряет 30 равномерно отстоящих друг от друга изображений в режиме ПЭМ при увеличении, выбранном в пункте 7.2.3. При этом визуально на люминесцентном экране обнаруживают включения, сходные по морфологическим признакам с агрегатами С60, и получают изображения полей, содержащих такие включения. В целях оптимизации процедуры изображения полей, не содержащих агрегаты С60, не регистрируют, но ведут их учет и отмечают эти данные в протоколе исследования.

Существует альтернативный способ оценки плотности и однородности распределения детектируемых наночастиц, применимый в случае, если программное обеспечение предусматривает возможность виртуального разбиения площади среза на квадратные зоны и автоматизированного перехода от зоны к зоне. Тогда в каждой зоне (всего не менее 30) анализируют 1 — 2 области (например, центральную или угловые); получают изображения областей, содержащих агрегаты С60, и учитывают число пустых областей.

Измерения этого типа рекомендуется проводить на срезах неконтрастированного материала. Распознавание агрегатов фуллерена на ПЭМ-изображениях выполняют на основании следующих морфологических особенностей:

  • повышенная, на фоне биологического матрикса, электронная плотность: агрегаты С60 выделяются на фоне цитоплазмы клеток более темными сегментами;
  • морфология агрегата, в частности, неоднородность структуры и полигональность;
  • параллельная исчерченность.

Для повышения достоверности идентификации обнаруженные электронно-плотные включения дополнительно анализируют методами электронной дифракции (пункт 7.5) или СХПЭЭ (пункт 7.6).

VIII. Методика обработки и анализа полученных данных

8.1. Преобразование изображений и спектров в форму, удобную для анализа

Файлы с полученными изображениями и электронограммами конвертируют из внутреннего формата программного обеспечения к прибору в общедоступные форматы (*.jpeg или *.tiff, 8-битный), не допуская изменения исходного динамического диапазона в результате автоматического нормирования на максимальную интенсивность и изменения дискретности оцифровки за счет объединения нескольких соседних пикселей (элементов изображения) в один элемент. Сохраняемые изображения должны содержать метку масштаба. Спектры СХПЭЭ конвертируют в форматы *.xls или *.txt.

8.2. Программное обеспечение для анализа изображений, электронограмм и спектров

Для обработки и анализа изображений, полученных в режимах ПЭМ и электронной дифракции, рекомендуется использовать специализированное программное обеспечение электронного микроскопа и/или свободно распространяемый комплекс программ ImageJ (Национальный институт здоровья США, rsb.info.nih.gov/ij/). Для обработки и анализа спектров ХПЭЭ рекомендуется использовать специализированную программу, входящую в комплект электронного микроскопа, и/или программы, предназначенные для работы с электронными таблицами.

8.3. Анализ детальных изображений агрегатов фуллерена

Распознавание агрегатов фуллерена на изображениях срезов основано на сравнении их с изображениями, полученными для образца сравнения. Анализируют следующие параметры:

  • морфологические признаки;
  • уровень электронной плотности (оценивают визуально по изображениям, полученным без применения функции автоконтрастирования).

Для оценки количественных морфологических параметров (размер и форм-фактор) определяют линейные размеры агрегата вдоль наиболее короткой и наиболее длинной осей. Форм-фактор f рассчитывают по формуле (2):

F = a / b, (2)

где:

a — размер наиболее длинной оси;

b — размер наиболее короткой оси.

Дают качественное описание морфологии агрегатов, субъективно классифицируя их по взаимоисключающим категориям, например «симметричный»/«асимметричный», «структурно однородный»/«структурно неоднородный», «компактный»/«рыхлый». При анализе изображений индивидуальных частиц в составе агрегата, полученных при больших увеличениях (100000х — 200000х), отмечают наличие характерной для фуллерена С60 параллельной исчерченности.

8.4. Анализ электронограмм

Критерием идентичности обнаруженных электронно-плотных включений и агрегатов фуллерена С60 является совпадение подавляющего большинства рефлексов на электронограмме образца и электронограмме, полученной от образца сравнения. Для сравнения электронограмм их совмещают средствами используемого графического редактора, сохраняя равенство масштаба.

    Количественно   электронограмму  анализируемой  частицы  характеризуют,
рассчитывая  соотношение  диаметров  дифракционного  максимума  n-го и 2-го
порядков  (d  / d ),  и   сравнивают  полученные  значения  со  значениями,
            n    2

полученными для образца сравнения (табл. 1).

8.5. Анализ спектра ХПЭЭ

8.5.1 Анализ формы спектра ХПЭЭ

В спектре ХПЭЭ анализируют область 275 — 325 эВ. Наличие двух пиков 287 — 288 и 298 эВ (рисунок 7) интерпретируют как сигнал от биоматериала и формваровой подложки. Смещение максимума пика в область 303 эВ указывает на присутствие в образце агрегатов фуллерена С60. Смещение обнаруживают путем наложения спектров ХПЭЭ (диапазон 275 — 325 эВ), измеренных от соседних зон, содержащих и не содержащих электронно-плотные включения. Для надежного выявления сдвига пика углерода:

  • минимумы по интенсивности в сравниваемых спектрах сдвигают к нулю; максимумы выравнивают по интенсивности путем умножения одного из спектров на расчетный коэффициент;
  • отнормированные таким образом спектры накладывают друг на друга на экране компьютера и сравнивают форму спектров в области 295 — 310 эВ.

В качестве количественного критерия присутствия сигнала С60 в спектре используют параметр R (формула 1). Значение R > 0,94 расценивают как подтверждение наличия характеристического пика С60.

8.5.2 Метод сравнения интегральных интенсивностей

В качестве дополнительного метода идентификации агрегатов С60 в биологических пробах, основанного на повышении концентрации углерода в зоне скопления С60, используют сравнение интегральных интенсивностей сигнала в спектрах ХПЭЭ в диапазоне 282 — 313 эВ анализируемой зоны и пяти контрольных зон, расположенных в непосредственной близости от агрегата, но не содержащих электронно-плотных включений. Поскольку измеряемая интенсивность сигнала существенно зависит от толщины образца, сравнение полученных значений является информативным только в том случае, если градиент толщины среза и вариабельность плотности биологических структур в зоне измерений незначительны. Для того чтобы оценить применимость метода, определяют стандартное отклонение сигма средней интенсивности сигнала в контрольных зонах, в общем случае — по формуле 3:

                         _______________________

                            /            2
                  сигма = \/SUM(I  - I  )  / (n - 1),                   (3)
                                 i    ср
где:
I  - интегральная интенсивность сигнала  в  спектре  ХПЭЭ  в  диапазоне
 i

282 - 313 эВ для i-той контрольной  зоны (i = {1, 2, ...n});
    I   - среднее  значение  интегральной  интенсивности сигнала в спектрах
 ср

ХПЭЭ в диапазоне 282 — 313 эВ для всех контрольных зон; n — число контрольных зон.

Формула 3' представляет собой частный случай формулы 3 при n = 5.

                                _____________

                                   /            2
                     сигма = 1/2 \/SUM(I  - I  ) .                     (3')
                                        i    ср

По формуле 4 вычисляют величину сигма':

сигма' = 100% х сигма / I . (4) ср

    Метод  сравнения интегральных интенсивностей применяют при условии, что
сигма' <= 5%. Вычисляют разность ДЕЛЬТА = I  - I  , где I   -  интегральная
                                           а    ср       а
интенсивность   сигнала   в   спектрах  ХПЭЭ   в  диапазоне   282 - 313  эВ

от анализируемой зоны.

Если ДЕЛЬТА >= 2 сигма, возрастание сигнала углерода в зоне локализации электронно-плотного включения считают значимым и расценивают как доказательство его углеродного состава. Выявление повышенной концентрации углерода в анализируемой области в совокупности с получением характерной картины электронной дифракции (рисунок 3) является достаточным основанием для идентификации включения как агрегата С60.

Если -2 сигма < ДЕЛЬТА < 2 сигма, различия в интегральной интенсивности не расценивают как значимые. Решение об отнесении электронно-плотного включения к агрегатам С60 принимают на основании данных электронной дифракции и наличия характерного пика 303 эВ в СХПЭЭ углерода. Результаты, полученные методом сравнения интегральных интенсивностей, в этом случае не учитывают.

8.6. Анализ плотности и равномерности распределения агрегатов фуллерена в образце

В серии изображений систематически расположенных областей среза (не менее 30) подсчитывают число агрегатов фуллерена M. При этом в сумму включают только частицы, идентичность которых была подтверждена методами электронной дифракции или СХПЭЭ. Двумерную плотность распределения агрегатов D определяют по формуле (5).

D = M / (S х N), (5)

где:
N  -  общее число изображений,  как содержащих,  так  и  не  содержащих

агрегаты; S — площадь образца на изображении, кв. мкм.

Равномерность распределения агрегатов фуллерена характеризуют величиной 2 дисперсии сигма среднего количества наночастиц на одном изображении (формула 6).

                        2                   2
                   сигма  = SUM (M  - M / N)  / (N - 1),                (6)
                              i

где  M  - количество агрегатов С60 в i-том изображении. Суммирование по
      i

i ведут по всем № полученным изображениям (как содержащим, так и не содержащим фуллерены).

IX. Представление полученных данных

Для включений, идентифицированных как агрегаты фуллерена С60, составляют матрицу данных, столбцы которой содержат информацию о срезе, в котором была обнаружена каждая частица, ее морфометрических характеристиках (размер, форма, форм-фактор), результатах анализа методами электронной дифракции и спектроскопии ХПЭЭ. Пример фрагмента матрицы данных приведен в виде таблицы 2. В случае анализа срезов, контрастированных тетраоксидом осмия, также указывают компартмент, в котором выявлена частица.

Таблица 2

МАТРИЦА ДАННЫХ ПО РЕЗУЛЬТАТАМ АНАЛИЗА
ЛОКАЛИЗАЦИИ АГРЕГАТОВ ФУЛЛЕРЕНА С60 В ТКАНИ ПЕЧЕНИ МЫШИ

№ п/п № среза Средний размер, нм <1> Формфактор <2> Форма Локализация <3> Электронная дифракция <4> СХПЭЭ <5>
74 2 156 3,17 двустороннесимметричная ПЭ + +

<1> Среднее размеров, измеренных вдоль наиболее длинной и наиболее короткой осей.

<2> Соотношение размеров, измеренных вдоль наиболее длинной и наиболее короткой осей.

<3> Клеточный компартмент, в котором обнаружена наночастица (Вне — внеклеточная зона, ПМ — плазматическая мембрана, Я — ядро, М — митохондрии, ЭПР — эндоплазматический ретикулум, ЛС — лизосома, ПЭ — поздняя эндосома и так далее).

<4> Наличие (+) или отсутствие (-) совпадения электронограммы с электронограммой от образца сравнения.

<5> Наличие (+) или отсутствие (-) характерного пика фуллерена С60 в спектре ХПЭЭ.

Если выборка значений количественных показателей из матрицы данных превышает n = 30, проводят их статистический анализ. Для выборки строят гистограмму распределения по значениям, проводят проверку на нормальность распределения, вычисляют среднее и среднее квадратичное отклонение. Для описательных признаков (например, «форма» в таблице 2) рассчитывают долю (в %) каждого варианта в общей структуре признака и представляют результат в виде круговой диаграммы.

Результаты анализа представляют в виде письменного заключения о выявлении агрегатов фуллерена С60 в тканях животного или растительного организма, оформленного в виде текстового документа с таблицами, рисунками и графиками.

Результат считают отрицательным, если агрегаты фуллерена не выявлены ни в одном из срезов исследуемого образца и достоверно идентифицированы в референсных срезах (образцы сравнения, заключенные в эпоксидную смолу). В этом случае представляют репрезентативные микрофотографии образца и эталона. Если агрегаты фуллерена достоверно обнаружены и идентифицированы в образцах группы № 1 и группы № 2, в отчете представляют следующие данные (отдельно по каждому типу образца, например, для каждого вида ткани, извлеченного при аутопсии животного):

  • репрезентативные изображения наночастиц, измеренные методом просвечивающей электронной микроскопии, в неконтрастированных и в контрастированных срезах;
  • гистограмму распределения агрегатов по размерам, средний размер, его среднее квадратичное отклонение, а также сопоставление с соответствующими данными для образца сравнения;
  • гистограмму распределения агрегатов фуллерена по форм-фактору, среднее значение и среднее квадратичное отклонение форм-фактора, а также сопоставление этих данных с соответствующими данными для образца сравнения;
  • репрезентативные картины дифракции электронов и результаты их сопоставления с электронограммой стандартного образца;
  • диаграммы распределения агрегатов фуллерена по качественным категориям (форма, внутриклеточная локализация). В случае бинарного признака указывают только долю (%) встречаемости каждого из двух возможных вариантов;
  • репрезентативные спектры ХПЭЭ, содержащие характерный дополнительный пик С60 в области края поглощения углерода;
  • оценку плотности и равномерности распределения агрегатов фуллерена С60 в образце в виде значений двумерной плотности (формула 5, частиц/кв. мкм) и дисперсии среднего количества агрегатов на поле зрения (формула 6);
  • любую дополнительную информацию, полученную при анализе образца, которая представляется важной для интерпретации приведенных данных (на усмотрение составителя отчета, в виде примечания).

Если агрегаты фуллерена выявлены в образцах одной из двух групп одной пробы и не детектированы в другой, предполагают контаминацию срезов или иные нарушения технологии пробоподготовки. В этом случае исследование повторяют, заменив все рабочие растворы и усилив контроль качества обработки инструментов.

Приложение 1

ОБОЗНАЧЕНИЯ И СОКРАЩЕНИЯ

С60 — нативный фуллерен С60, его производные и гомологи;

ПЗС — прибор с зарядовой связью;

ПЭМ — просвечивающая электронная микроскопия;

ХПЭЭ — характеристические потери энергии электронов;

СХПЭЭ — спектр характеристических потерь энергии электронов.