МР 4.2.0014-10. 4.2. Методы контроля. Биологические факторы. Оценка генотоксических свойств методом ДНК-комет in vitro. Методические рекомендации

(утв. Роспотребнадзором 14.10.2010)

14 октября 2010 года

4.2 МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

ОЦЕНКА ГЕНОТОКСИЧЕСКИХ СВОЙСТВ МЕТОДОМ ДНК-КОМЕТ IN VITRO

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

с момента утверждения

1. Разработаны: НИИ фармакологии им. В.В. Закусова РАМН, Москва; Институтом теоретической и экспериментальной биофизики РАН, Пущино, Московская область; Открытым Акционерным Обществом Заводом экологической техники и экопитания «ДИОД», Москва.

2. Утверждены и введены в действие Руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Г.Г. Онищенко 14 октября 2010 г.

3. Введены впервые.

Введение

Предупреждение контакта человека с потенциальными генотоксикантами представляется наиболее конструктивным способом защиты организма человека от последствий индуцированного мутагенеза. Вместе с тем тотальная проверка ксенобиотиков/комплекса ксенобиотиков на генотоксичность невозможна вследствие огромного объема исследований. Это обусловило внедрение в практику генотоксикологических исследований понятия «первоочередность» тестирования. Первоочередному тестированию подлежат лекарственные средства, пищевые добавки, пестициды, парфюмерно-косметические средства, бытовая химия, а также наиболее широко распространенные загрязнители воды, воздуха и производственные вредности. Для удешевления и ускорения работ по генетическому скринингу проводится изучение генотоксичности с помощью простых и быстровыполнимых методов и использованием качестве тест-объекта микроорганизмов или культур клеток млекопитающих.

Из имеющихся на сегодняшний день в арсенале генотоксикологии методов для решения указанных задач наиболее перспективным представляется метод гель-электрофореза отдельных клеток или метод ДНК-комет. Метод является высокочувствительным и обеспечивает высокую надежность получаемых результатов.

Данные Методические рекомендации содержат порядок проведения оценки генотоксических свойств с применением метода ДНК-комет в клетках млекопитающих в системе in vitro. Преимуществом настоящей тест-системы являются простота, экономичность, быстрота получения результатов. Кроме того, система отвечает современным этическим требованиям, согласно которым следует ограничивать использование млекопитающих в эксперименте.

1. Область применения

Методические рекомендации предназначены для токсикологических (генотоксикологических) исследований и испытаний пищевых ингредиентов (пищевых добавок, красителей и др.), биологически активных добавок к пище и сырья для их производства, парфюмерно-косметической продукции и средств гигиены полости рта, товаров бытовой химии, полимерных материалов и различных изделий из них (изделия детского ассортимента, изделия, контактирующие с пищевыми продуктами), сырья и продуктов, с том числе полученных с применением нанотехнологий, а также объектов и факторов среды обитания (вода централизованных источников, сточная вода и т.д.).

2. Принцип метода

Метод основан на регистрации различной подвижности в постоянном электрическом поле поврежденной ДНК и/или фрагментов ДНК индивидуальных лизированных клеток, заключенных в агарозный гель. При этом ДНК мигрирует к аноду, формируя электрофоретический след, визуально напоминающий «хвост кометы», параметры которого зависят от степени поврежденности ДНК.

Общая процедура метода включает получение гель-слайдов (подложки), получение микропрепаратов, лизис, щелочную денатурацию, электрофорез, нейтрализацию, окрашивание и микроскопический анализ. Гель-слайды готовятся с использованием предметных стекол, которые покрывают агарозным гелем. Исследуемые образцы инкубируют с клетками, затем в агарозном геле на подготовленные гель-слайды. После затвердевания геля клетки подвергают лизису, приводящему к разрушению клеточных и ядерных мембран, диссоциации ДНК-белковых комплексов. Проводится щелочная денатурации (pH > 13), которая переводит щелочно-лабильные сайты ДНК в однонитевые разрывы, затем проводят электрофорез. После завершения щелочного электрофореза слайды нейтрализуют, окрашивают и анализируют под флуоресцентным микроскопом. Далее проводят компьютерный анализ цифровых изображений комет с помощью специализированного программного обеспечения и определяют основной показатель процент ДНК в хвосте кометы и другие параметры.

3. Оборудование, материалы и реактивы

Ламинарный бокс с вертикальным потоком ГОСТ ИСО 14644-1-2002

Микроскоп эпифлуоресцентный

Высокочувствительная цифровая фотокамера или видеокамера с адаптером к микроскопу

Микроскоп инвертированный

CO -инкубатор встряхиватель лабораторный 2

типа Вортекс                                      ТУ 64-1-1081-73
pH-метр или аналоги                               ТУ 4215-00-18294344-01
Термометр лабораторный 0 - 55 °С                  ГОСТ 8.279-78

Холодильник бытовой ГОСТ 26678-85

Микротермостат для пробирок 25 — 99 °С

Камера для горизонтального электрофореза ГОСТ 4.372-85

Источник питания для электрофореза (диапазон

регулирования напряжения до 400 В)                ГОСТ 4.372-85
Центрифуга лабораторная                           ГОСТ Р МЭК 61010-2-020-99
Центрифуга лабораторная для микропробирок         ГОСТ Р МЭК 61010-2-020-99
Магнитная мешалка                                 ТУ 25-11-834-73

Весы аналитические (предел допустимой погрешности не более 0,01 мг) ГОСТ 24104-2001

Плитка электрическая ГОСТ 14919-83

Колбы, цилиндры стеклянные мерные ГОСТ 1770-74

Колбы стеклянные лабораторные вместимостью 0,5 и 1,0 куб. дм ГОСТ 25336-82

Микропробирки пропиленовые конические объемом 0,5 и 1,5 куб. см с крышкой

Штатив для микропробирок вместимостью 0,5 и 1,5 куб. см

Наконечники одноразовые для дозаторов переменного объема в штативах

Дозаторы автоматические переменного объема        ТУ 9452-002-33189998-2002
Часы сигнальные                                   ТУ 25-07-57

Пинцеты медицинские ГОСТ 21241-89

Шпатели металлические ГОСТ 19126-2007

Камера для счета форменных элементов крови по Горяеву ТУ 42-816

Стекла покровные для микропрепаратов ГОСТ 6672-75

Стекла предметные ГОСТ 9284-75

Спиртовка лабораторная стеклянная ГОСТ 25336-82

Фильтры АФА-ВП-10 ТУ 95-743-80

Фильтровальная бумага ГОСТ 12026-76

Агароза универсальная, Тип I

Агароза легкоплавкая (низкоплавкая), Тип VII

Вода дистиллированная ГОСТ 6709-02

Натрия гидроокись ГОСТ 4328-77

Этилендиамин-N,N,N',N'-тетрауксусной кислоты динатриевая соль двухводная ГОСТ 10652-73

N-лауроилсаркозин натриевая соль

Натрий хлористый ГОСТ 4233-77

Натрий фосфорно-кислый двухзамещенный ГОСТ 4172-76

Калий фосфорно-кислый однозамещенный ГОСТ 4198-75

Калий хлористый ГОСТ 4234-77

Трис(гидроксиметил)-аминометан ТУ 6-09-4292-76

Тритон Х-100

Этидий бромистый ТУ 6-09-13-452-75

Краситель SYBR Green I (возможно использование других красителей, применяемых для визуализации ДНК: DAPI; пропидиум иодид, акридиновый оранжевый и др.)

Эмбриональная сыворотка крупного рогатого скота

Среда ДМЕМ

Среда RPMI-1640

Смесь Ficoll-Paque или аналогичная

L-глутамин

Пенициллин

Стрептомицин

3.1 Характеристика объектов исследования

Для оценки генотоксических свойств в качестве тест-объекта используют традиционно применяемые в генотоксикологических исследованиях клетки первичных и перевиваемых клеточных культур человека (лимфоциты периферической крови и фибробласты человека, карцинома шейки матки HeLa, карцинома легкого А-549, карцинома гортани Hep2 и др.). Среди данных тест-объектов целесообразно использовать лимфоциты периферической крови, клеточные культуры фибробластов человека или HeLa, что обусловлено рядом их преимуществ по сравнению с другими клетками: простота процедуры получения материала; высокая синхронизированность популяции клеток, широкая изученность биологических процессов.

4. Культивирование перевиваемых культур клеток

    Фибробласты  и  клетки  HeLa  культивируют  в  среде  DMEM  с 0,3 мг/мл
L-глутамина  с  добавлением  10%  эмбриональной сыворотки крупного рогатого
скота  (Cibro BRL, США), 100 ед./мл пенициллина и 0,1 мг/мл стрептомицина в
контролируемых  условиях  (37 °С, 5% CO ) в пластиковых флаконах с площадью

                                   2
                                       6

дна 25 кв. см (посевная концентрация 1 х 10 клеток/флакон).

5. Подготовка к исследованию

5.1 Подготовка растворов и буферов

Фосфатно-солевой буфер (ФСБ), pH 7,4 (хранят при 4 °С).

Фосфатно-солевой буфер с 1 мМ ЭДТА-Na (ФСБ + ЭДТА), pH 7,4 (хранят при 4 °С).

Универсальная 1%-ная агароза. Готовят 10 мл 1%-ного раствора универсальной агарозы в ФСБ + ЭДТА в стеклянном флаконе с крышкой на водяной бане до получения полностью прозрачного геля.

Легкоплавкая 1%-ная агароза. Готовят 1%-ный раствор легкоплавкой агарозы в ФСБ + ЭДТА и инкубируют в микротермостате при 70 °С до получения полностью прозрачного агарозного геля. Приготовленный агарозный гель охлаждают до (39 +/- 2) °С.

Легкоплавкая 0,5%-ная агароза.

Основной лизирующий раствор. Готовят основной лизирующий раствор — 10 мМ Трис-HCl (pH 10), 2,5 М NaCl, 100 мМ ЭДТА-Na. Раствор хранится при комнатной температуре в течение месяца.

Рабочий лизирующий раствор готовится и используется непосредственно в день эксперимента.

Готовят 1%-ный раствор Тритон-Х100 в основном лизирующем растворе.

Щелочной раствор для электрофореза (pH 13). Готовят раствор 0,3 М NaOH и 1 мМ ЭДТА-Na. Раствор охлаждают до 4 °С.

Раствор этидиум бромида. Готовят раствор с концентрацией этидиум бромида 2 мкг/куб. см в ФСБ. Полученный раствор хранят при 4 °С.

SYBR Green I. Готовят раствор SYBR Green I 1:10000 в TE-буфере. Полученный раствор хранят при 4 °С не более 2 недель.

6.1 Подготовка перевиваемых клеток

Непосредственно перед тестированием клеточный монослой 2 раза промывают

            2+     2+
ФСБ  без  Ca   и Mg   и заливают на 5 минут 0,05%-ным раствором трипсина (1
куб.  см  на флакон). Затем инактивируют трипсин средой для культивирования
клеток,  осторожно  пипетируют  клетки  в  среде  до образования однородной
суспензии.  После  чего  клетки осаждают центрифугированием (5 мин. 400 g).

После этого клетки еще 2 раза отмывают в охлажденном растворе ФСБ + ЭДТА (4 °С).

Жизнеспособность клеток оценивают окраской 0,4%-ного трипанового 6

синего.  Суспензию  клеток  разводят  до  концентрации  1 х 10  кл./куб. см
(подсчет    клеток   осуществляют   в   камере   Горяева).   До   получения

микропрепаратов возможно хранение клеток при 4 °С не более 3 часов.

6.2 Получение лимфоцитов периферической крови

    Для  исследования кровь берут у здоровых доноров в возрасте от 20 до 40
лет,  не  работающих  в сфере химического производства, не контактирующих с

источниками ионизирующего излучения, не болевших за последние 3 — 6 месяцев вирусными заболеваниями и не проходивших за последние 6 месяцев рентгенодиагностическое обследование. Из локтевой вены асептически отбирают аликвоту крови и переносят в стерильные пробирки, содержащие антикоагулянт.

Цельную  кровь смешивают с равным объемом среды RPMI-1640 (без L-глютамина)
и  осторожно  наслаивают  на  градиентную  смесь  фиколла Ficoll-Paque (или
аналогичную)  плотностью 1,077 и центрифугируют при 400 g в течение 40 мин.
Образующее  на  разделе  фаз  "кольцо"  из мононуклеаров аккуратно отбирают
пипеткой  и дважды отмывают средой RPMI-1640 центрифугированием при 400 g в
течение  10  мин. После второй отмывки осадок разводят в среде RPMI-1640 до

                                5

концентрации клеток 1 — 5 х 10 /куб. см и помещают до использования в холодильник при 4 °С.

6.3 Подготовка исследуемых образцов

6.3.1 Растворители

При работе с гидрофильными веществами в качестве растворителя используют бидистиллированную воду. При работе с гидрофобными веществами в качестве растворителя используют диметилсульфоксид или этиловый спирт в конечной концентрации не более 1%. При необходимости допускается использование других растворителей в концентрациях, не вызывающих токсического эффекта, что должно быть установлено экспериментально.

6.3.2 Контроли

В качестве негативного контроля используется растворитель, вносимый в эквивалентных объемах. В качестве позитивного контроля используют пероксид водорода. Непосредственно перед использованием готовят 1 мМ раствор пероксида водорода в охлажденном (4 °С) ФСБ.

6.3.3 Исследуемые концентрации

Во избежание ложноположительных или ложноотрицательных результатов образцы исследуются в концентрациях, не вызывающих изменение pH инкубационной среды и/или осмотического давления.

    Исследование   начинают  с  определения  цитотоксичности  in  vitro.  В
качестве  максимальной  исследуемой концентрации принимается 1/2 LC  . Если

                                                               50

1/2 LC превышает 10 мМ, то в качестве максимальной концентрации 50 принимается последняя. Для низкотоксичных и нетоксичных образцов в качестве

максимальной  используется концентрация 5 мг/куб. см, 5 мкл/куб. см либо 10
мМ.  Две  последующие концентрации для исследования составляют 1/10 и 1/100

от максимальной.

6.3.4 Подготовка парфюмерно-косметической продукции и средств гигиены полости рта

Экстракты из испытуемых образцов готовят согласно МР № 29 ФЦ/394 от 29.01.03 путем настаивания в дистиллированной воде. Соотношения веса образца и объема модельной среды (дистиллированной воды) приведены в табл. 1. Навески образцов взвешивают в сухой чистой колбе, куда потом добавляют требуемый объем модельной среды. В другую колбу наливают модельную среду и обе колбы помещают в термостат на 24 часа при 37 °С. После окончания экстракции растворы охлаждают до комнатной температуры.

Вид продукции	Масса образца, г	Объем модельной среды, мл	Степень разведения образца	Продолжительность экстракции, час.
Шампуни для волос и тела	0,1	250	1:2500	24
Жидкое туалетное мыло	0,1	250	1:2500	24
Пена для ванн, гель для душа	0,1	250	1:2500	24
Дезодоранты и депилятории в аэрозольной упаковке	1,0	300	1:300	1
Туалетная и парфюмированная вода, духи, одеколон, спиртосодержащие лосьоны	1,0	700	1:700	1
Зубные пасты и отбеливающие системы	0,1	250	1:2500	1

После завершения экстракции раствор подвергают фильтрации через бумажный фильтр. Фильтрованию также подвергают модельную среду. Используют фильтр АФА-ВП-10 диаметром 9 см. Бумажные фильтры заранее промывают в дистиллированной воде. Для этого 10 бумажных фильтров опускают в большой стакан, заполненный 1,5 л дистиллированной воды. Стакан накрывают и ставят в термостат на 24 ч при 37 °С. Затем воду сливают и высушивают фильтры, не вынимая из стакана, в термостате до постоянной массы. Достижение постоянной массы контролируют взвешиванием каждого фильтра на аналитических весах.

6.3.5 Подготовка товаров бытовой химии

Растворы образцов готовят согласно МР № 29 ФЦ/4746 от 27.12.01. Испытуемый образец в количестве 0,1 г помещают в мерную колбу с притертой крышкой объемом 250 куб. см и доводится до метки дистиллированной водой, что соответствует разведению образца 1:2500. Это разведение является стандартным для исследования моющих средств. Во вторую колбу в качестве контроля помещается 250 куб. см дистиллированной воды. Обе колбы помещают в термостат на 24 ч при 37 °С, затем охлаждают до комнатной температуры. После охлаждения контрольный и опытный образцы подвергают фильтрованию через бумажный фильтр.

6.3.6 Подготовка изделий из полимерных материалов

Образцы изделий из полимерных материалов готовятся согласно МУ № 1.1.037-95 от 20.12.95.

Изделия из полимерных материалов измельчаются на куски максимальным сечением 20 х 20 мм. Навеску 30 г помещают в термостойкую колбу емкостью 250 куб. см, заливают 100 куб. см кипящей дистиллированной воды. По достижении температуры вытяжки 37 °С колбу помещают в термостат и выдерживают до 24 часов при температуре 37 °С.

6.3.7 Подготовка стекол для микропрепаратов

Обезжиренные предметные стекла выкладывают на термостатируемую поверхность электрической плитки, нагретой до 65 — 70 °С. Расправленную 1%-ную агарозу из расчета 20 куб. мм на площадь стекла 25 мм дозатором наносят на край стекла и равномерно распределяют по всей поверхности. После полного высыхания геля стекла снимают и охлаждают до комнатной температуры. Приготовленные стекла для микропрепаратов могут храниться 1 месяц при комнатной температуре.

7.1 Инкубация клеток с исследуемыми образцами

В микропробирки, содержащие 5 куб. мм ФСБ, вносят 20 куб. мм раствора 6

исследуемого образца и 225 куб. мм клеточной суспензии (1 х 10  клеток/куб.
см).  Для контроля растворителя в микропробирки приливают 5 куб. мм ФСБ, 20

                                                          6

куб. мм растворителя и 225 куб. мм клеточной суспензии (1 х 10 клеток/куб. см). Клеточную суспензию с образцами инкубируют при 37 °С в течение 30 мин. и 3 ч. По окончании инкубации пробирки центрифугируют при 400 g в течение 5

мин.  Надосадочную  жидкость  сливают и осажденные клетки дважды отмывают в
ФСБ  +  ЭДТА  центрифугированием  при  400  g  5  мин. После второй отмывки
осажденные  клетки  разводят  ФСБ  +  ЭДТА  и  сразу приступают к процедуре
получения  микропрепаратов.  Каждая  экспериментальная  точка проводится не

менее чем в двух повторностях, по три микропрепарата на каждую повторность.

В микропробирки вносят 25 куб. мм раствора пероксида водорода и 6 добавляют 225 куб. мм клеточной суспензии (1 х 10 клеток/мл) и инкубируют 5 мин. при 4 °С. По окончании инкубации пробирки центрифугируют при 400 g в

течение  5  мин.  Надосадочную  жидкость сливают и осажденные клетки дважды
отмывают  в  ФСБ  +  ЭДТА  центрифугированием при 400 g 5 мин. После второй
отмывки  осажденные  клетки  разводят  ФСБ  +  ЭДТА  и  сразу  приступают к

7.2 Приготовление микропрепаратов

При использовании предметных стекол нестандартного размера для получения микропрепаратов исследуемые клетки иммобилизируют в трехслойные агарозные блоки по принципу «сэндвича». На стекла с высушенной универсальной 1%-ной агарозой наносят слой универсальной 1%-ной агарозы. Охлаждают 5 мин. при 4 °С для застывания геля. В микропробирке быстро смешивают в равных частях (1:1) 1%-ную легкоплавкую агарозу с суспензией клеток после воздействия исследуемых образцов и наносят следующим слоем. Охлаждают 5 мин. при 4 °С для застывания геля. После этого наносят третий слой — 0,5%-ную легкоплавкую агарозу и охлаждают 5 мин. при 4 °С.

При использовании стандартных стекол в микроцентрифужные пробирки с 240 куб. мм агарозного геля вносят 60 куб. мм клеточной суспензии, 2 — 3 раза прокачивают дозатором. В центральную часть предметного стекла наносят 60 куб. мм полученного агарозного геля с клетками и накрывают покровным стеклом под углом так, чтобы не было пузырей. Предметные стекла кладут на поверхность емкости со льдом и оставляют на 10 мин. для затвердевания геля. Аккуратно снимают покровные стекла (тянут за край) и предметные стекла помещают в стеклянную кювету.

Далее все манипуляции проводятся только в затемненном месте при свете желтой или зеленой лампы.

7.3 Лизис

В кювету с микропрепаратами заливают рабочий лизирующий раствор, пока раствор не покроет микропрепараты на 2 — 3 мм, накрывают крышкой и инкубируют при 4 °С в течение 1 ч. Допускается нахождение препаратов в лизирующем растворе до 24 ч.

7.4 Щелочная денатурация

По окончании лизиса микропрепараты вынимают из лизирующего раствора и переносят в кювету с охлажденным (4 °С) щелочным раствором для электрофореза (pH 13). Инкубируют при 4 °С в течение 20 мин.

7.5 Щелочной электрофорез

Микропрепараты раскладывают на поверхности камеры для горизонтального электрофореза. Электрофорез осуществляют в свежей порции охлажденного (4 °С) щелочного раствора для электрофореза (pH 13) при температуре окружающей среды 20 — 25 °С. Отклонения в указанных температурных режимах может приводить к вариабельности получаемых результатов. Электрофорез проводят в течение 20 мин. при напряженности электрического поля 1 В на 1 см длины площадки для микропрепаратов.

7.6 Окрашивание

    Микропрепараты  помещают  в кювету и заливают бидистиллированной водой.
Проводят   нейтрализацию  в  течение  5  мин.  при  комнатной  температуре.
Процедуру  нейтрализации  повторяют дважды в свежей порции H O. При окраске

                                                        2

препаратов   красителем   SYBR   Green   I  препараты  после  электрофореза
фиксируются  в  70%-ном  растворе  этанола в течение 15 мин. и высушиваются

при комнатной температуре.

Для окрашивания ДНК-комет этидиум бромидом микропрепараты погружают в кювету с раствором красителя и инкубируют в темном месте при 4 °С не менее 1 ч. Непосредственно перед проведением анализа микропрепарат, выбранный для регистрации ДНК-комет, промывают в дистиллированной воде 2 — 3 раза.

Для окраски ДНК-комет SYBR Green I краситель наносят на микропрепарат из расчета 100 куб. мм на площадь 25 кв. мм и проводят окраску в течение 20 мин. По окончании окраски остающийся на микропрепаратах краситель не удаляется.

7.7 Микроскопический анализ

Микропрепараты анализируют под флуоресцентным микроскопом. Рекомендуемое увеличение х200 — х400. С каждого микропрепарата рандомизированно анализируется не менее 50 ДНК-комет без наложений хвостов. Получение изображения и обработку данных осуществляют с помощью программно-аппаратного комплекса, включающего в себя высокочувствительную камеру или цифровой фотоаппарат, совмещенные с микроскопом, и специализированное программное обеспечение. В зависимости от имеющегося программного обеспечения анализ параметров ДНК-комет проводится в режиме «реального времени» либо с сохраненных цифровых изображений. В качестве показателя поврежденности ДНК используют % ДНК в хвосте кометы.

8. Статистическая обработка данных

Статистическая обработка экспериментальных данных проводится по всем повторностям каждой экспериментальной точки путем сравнения показателей поврежденности ДНК в опытной и контрольной группах с использованием непараметрического критерия Даннета. Данные двух повторностей объединяются и определяется среднее, если 95%-ные доверительные интервалы перекрываются. Критериями положительного результата являются статистически достоверное, дозозависимое увеличение показателя поврежденности ДНК или статистически достоверный, воспроизводимый эффект по крайней мере для одной экспериментальной точки. Позитивный результат в данном тесте указывает на то, что исследуемое соединение индуцирует ДНК-повреждения в данном типе клеток в условиях in vitro.

9. Форма представления результатов

Протокол представления результатов:

Название эксперимента _____________________________________________________

Тест-объект (название) ____________________________________________________

Вещество (название) _______________________________________________________

Формула, физико-химические свойства _______________________________________

Откуда получено ___________________________________________________________

Растворитель ______________________________________________________________

Позитивный контроль _______________________________________________________

Анализ данных литературы __________________________________________________

Схема эксперимента ________________________________________________________

Дата проведения эксперимента ______________________________________________

Дозы ______________________________________________________________________

Полученные результаты _____________________________________________________

Исполнители _______________________________________________________________

Дата сдачи отчета _________________________________________________________

Критериями положительного результата являются статистически достоверное, дозозависимое увеличение показателя поврежденности ДНК или статистически достоверный, воспроизводимый эффект по крайней мере для одной экспериментальной точки. Позитивный результат в данном тесте указывает на то, что исследуемый агент индуцирует ДНК-повреждения в данном типе клеток в условиях in vitro.

Показателем генотоксического действия является индекс повреждения (ИП), который вычисляется по формуле:

ИП = «% ДНК в хвосте» в опытной группе/«% ДНК в хвосте» в контрольной группе.

Индекс повреждения, превышающий 2,0, указывает на то, что исследуемый образец обладает генотоксическими свойствами в условиях in vitro.

В случае выявления положительного результата для оценки безопасности применения необходимо проведение дальнейших исследований в тестах in vivo на млекопитающих.

11. Список литературы

1. Дурнев А.Д., Жанатаев А.К., Анисина Е.А., Сиднева Е.С., Никитина В.А., Оганесянц Л.А., Середенин С.Б., Бекиш В.Я., Чернуха И.М. Применение метода щелочного гель-электрофореза изолированных клеток для оценки генотоксических свойств природных и синтетических соединений: Методические рекомендации. Москва, 2006, 28 стр.

2. Жанатаев А.К., Дурнев А.Д., Оганесянц Л.А. Метод гель-электрофореза изолированных клеток (метод «ДНК-комет») в пищевой генотоксикологии//Хранение и переработка сельхозсырья. 2007. № 1. с. 31 — 33.

3. Collins A.R., Oscoz A.A., Brunborg G., Gaivao I., Giovannelli L., Kruszewski M., Smith C.C., Stetina R. The comet assay: topical issues//Mutagenesis. 2008 May; 23(3):143-51.

---