Изменение № 1 ГОСТ 25383-82 «Животные сельскохозяйственные. Методы лабораторной диагностики кокцидиоза»

(утв. и введено в действие Постановлением Госстандарта СССР от 27.05.1987 № 1714)

Утверждено и введено в действие Постановлением Государственного комитета СССР по стандартам от 27 мая 1987 г. № 1714

ИЗМЕНЕНИЕ № 1 ГОСТ 25383-82 «ЖИВОТНЫЕ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫЕ. МЕТОДЫ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ КОКЦИДИОЗА»

Группа С79

Дата введения 1 января 1988 года

Утверждено и введено в действие Постановлением Государственного комитета СССР по стандартам от 27.05.1987 № 1714.

Пункты 2.1.1.1, 2.1.2.1 изложить в новой редакции:

«2.1.1.1. Для проведения исследования применяют:»

микроскоп с окулярным микрометром марки МБИ-3 по ГОСТ 8284-78;

весы лабораторные общего назначения по ГОСТ 24104-80 с наибольшим пределом взвешивания 200 г;

центрифугу с частотой вращения 5000 мин-1;

стаканы стеклянные вместимостью 150 — 200 см3 и 1000 см3 по ГОСТ 25336-82;

чашки стеклянные лабораторные по ГОСТ 25336-82;

стекла предметные по ГОСТ 9284-75 и покровные по ГОСТ 6672-75;

пипетки градуированные исполнений 1, 2, 4, 5, 6 2-го класса точности вместимостью 50 см3 по ГОСТ 20292-74;

посуду лабораторную фарфоровую;

воронки стеклянные по ГОСТ 25336-82;

штатив для пробирок;

петли;

марлю медицинскую по ГОСТ 9412-77;

вату гигроскопическую медицинскую по ГОСТ 5556-81;

фильтры беззольные по ГОСТ 12026-76;

натрий хлористый по ГОСТ 4233-77;

воду дистиллированную по ГОСТ 6709-72.

2.1.2.1 Приготовление флотационного раствора

К 1 дм3 горячей воды добавляют 400 г хлористого натрия, тщательно размешивают, выдерживают 30 мин и фильтруют через вату или складчатый фильтр в чистую склянку. Плотность флотационного раствора должна составлять 1,3 г/см3».

Пункт 2.1.2.2 исключить.

Пункт 2.1.3.1 изложить в новой редакции: «2.1.3.1. Из пробы выделяют навеску кала массой 3 — 5 г, помещают навеску в ступку, заливают 15 — 20 см3 воды, размешивают до жидкой консистенции и процеживают через марлю в центрифужные пробирки.»

Пробирки центрифугируют в течение 5 мин с частотой вращения 5000 мин-1. Жидкую часть сливают, затем добавляют 10 см3 флотационного раствора, тщательно перемешивают палочкой и повторно центрифугируют. При помощи петли из каждой пробирки берут по три капли раствора, наносят на предметное стекло и накрывают покровным стеклом. Определяют наличие ооцист под микроскопом. После проведения одного исследования петлю обжигают».

Пункт 2.2.1.1. Исключить слова: «или Мак. Мастера».

Пункты 2.2.2.1, 2.2.3.1 изложить в новой редакции: «2.2.2.1. Взвешивают 5 г кала, взятого из отобранной пробы, и тщательно размешивают в ступке с 45 см3 воды. Полученную суспензию фильтруют через один слой марли, осадок отбрасывают. 10 см3 фильтрата помещают в центрифужную пробирку и центрифугируют в течение 5 мин с частотой вращения 5000 мин-1. Жидкую часть сливают, к осадку добавляют 10 см3 флотационного раствора, тщательно перемешивают и еще раз центрифугируют в течение 5 мин с частотой вращения 5000 мин-1. Из пробирки снимают при помощи петли поверхностный слой жидкости и в счетной камере Горяева подсчитывают количество ооцист во всех 225 квадратах. Для определения количества ооцист в 1 г кала подсчитанное в камере Горяева число ооцист умножают на 1111.»

2.2.3.1. У домашней птицы наличие 50000 ооцист на 1 г кала не влияет на зоотехнические показатели цыплят, обнаружение более 100000 ооцист на 1 г кала свидетельствует о заражении средней степени, обнаружение ооцист в количестве более 300000 на 1 г кала — о высокой степени заражения и малой эффективности применяемого препарата.

У крупного рогатого скота и овец наличие до 1000 ооцист в 1 г кала свидетельствует о низкой степени заражения, до 5000 — о средней степени заражения, более 5000 — о высокой степени заражения.

У кроликов наличие до 10000 ооцист на 1 г кала служит признаком низкой степени заражения, до 100000 — высокой степени заражения, более 100000 — очень высокой степени заражения».

Пункт 2.3. Наименование изложить в новой редакции: «2.3. Метод исследования павших или убитых животных».

Пункт 2.3.1.1. Заменить ссылку: ГОСТ 10973-75 на ГОСТ 25336-82.

Пункт 2.3.2.1. Первый абзац. Заменить слова: «патологически измененные части кишок» на «исследуемые части кишок».

Пункт 2.3.3.1 изложить в новой редакции: «2.3.3.1. Для своевременной диагностики кокцидиоза у домашней птицы подсчет ооцист проводят один раз в 7 дней, начиная с двух-, трехнедельного возраста цыплят. Из каждой группы вскрывают по 4 — 6 ослабленных птиц. Исследуют соскобы со слизистой и содержимое кишечника в месте перехода дненадцатиперстной кишки в тощую, середины тонкого отдела кишечника и слепых кишок. Несколько капель наносят на предметное стекло, разбавляют водой и накрывают покровным стеклом. Просматривают под микроскопом 20 полей зрения, определяют среднее количество ооцист на одно поле зрения и проводят идентификацию кокцидий вида Eimeria в соответствии с ключом идентификации, представленном на схеме. В зависимости от клинических проявлений, степени и характера изменений отделов кишечника, локализации поражения и стадий развития кокцидий определяют виды ооцист E. tenella, E. necatrix, E. acervulina, E. maxima, E. praecox (см. схему. См. с. 339)».

Раздел 2 дополнить пунктами — 2.3.4, 2.3.4.1:

«2.3.4. Оценка результатов»

2.3.4.1. Наличие ооцист видов E. acervulina менее 50 и ооцист E. tenella, E. necatrix, E. maxima менее 5 кокцидий в поле зрения — признак низкой степени заражения.

При установлении разных стадий развития кокцидий в большом количестве у павших птиц или животных кокцидиоз считают причиной падежа».

Пункт 2.4.1.1. Исключить слова: «и дополнительно: счетную камеру Горяева или Мак. Мастера; гомогенизатор электрический».

Пункт 2.4.2.1 изложить в новой редакции: «2.4.2.1. Пробу подстилки хорошо перемешивают и взвешивают 100 г. Заливают 1 дм3 воды, выдерживают до набухания содержимого и тщательно размешивают. Полученную суспензию фильтруют через марлю, осадок отбрасывают. Фильтрат тщательно перемешивают и отбирают 100 см3 в центрифужную пробирку. Центрифугируют в течение 5 мин с частотой вращения 5000 мин-1. Жидкую часть сливают, к осадку добавляют 50 см3 флотационного раствора, тщательно перемешивают и центрифугируют в течение 5 мин с частотой вращения 5000 мин-1. Из пробирки снимают при помощи петли поверхностный слой и в счетной камере Горяева подсчитывают количество ооцист во всех 225 квадратах. Полученное число ооцист умножают на 5555 и определяют количество ооцист в 1 г подстилки».

Пункты 2.4.3, 2.4.5 исключить.

Ключ и идентификации видов Eimeria цыплят

Наименование показателя	Характеристика
Клинические признаки	Кровотечения				Кровотечений не отмечено
Патологические изменения	Глубокие эрозии эпителия				Слизистый энтерит			Слизистонекротический энтерит
Отдел кишечника	Слепые кишки		Тонкая кишка		12-перстная верхний отдел тонкой кишки			Средний отдел тонкой кишки		Нижний отдел тонкой кишки
Наличие в мазке развивающихся стадий кокцидий	Большие шизонты		Большие шизонты		Гаметоциты и мелкие ооцисты в большом количестве			Гаметоциты и большие желтоватые ооцисты		Гаметоциты или ооцисты
Дополнительныепризнаки	Казеозная масса в слепых кишках большое количество ооцист		Слепые кишки без изменений		Слабое заражение характеризуется наличием беловатых раздельных фокусов, сильное — слиянием поражений и распространением по кишечнику			При сильном заражении видимые геморрагии и некрозы		Беловатый энсудат и казеозные массы в тяжелых случаях некроз нижнего отдела кишечника
	При слабом заражении сероватые или красноватые поражения стенки кишок без видимой крови
	E. tenella		E. necatrix		E. acervulina			E. maxima		E. praecox

---