МР 3.1.0322-23. 3.1. Эпидемиология, профилактика инфекционных болезней. Сбор, учет и подготовка к лабораторному исследованию кровососущих членистоногих в природных очагах инфекционных болезней. Методические рекомендации

(утв. Роспотребнадзором 13.04.2023)

ИСТОРИЯ ИЗМЕНЕНИЙ НОРМАТИВНО-ТЕХНИЧЕСКИХ АКТОВ

flowchart LR
  n0["МУ 3.1.1027-01"]:::rst
  click n0 "https://bukva.ai/docs/ukazanie-ukazaniya-mu-3-1-1027-01" "МУ 3.1.1027-01. 3.1. Эпидемиология. Профилактика инфекционных болезней. Сбор, учет и подготовка к лабораторному исследованию кровососущих членистоногих - переносчиков возбудителей "
  n1["МУ 3.1.3012-12"]:::rst
  click n1 "https://bukva.ai/docs/mu-3-1-3012-12" "МУ 3.1.3012-12. 3.1. Эпидемиология, профилактика инфекционных болезней. Сбор, учет и подготовка к лабораторному исследованию кровососущих членистоногих в природных очагах опасных и"
  n2["МР 3.1.0322-23"]:::doc
  click n2 "https://bukva.ai/docs/mr-3-1-0322-23" "МР 3.1.0322-23. 3.1. Эпидемиология, профилактика инфекционных болезней. Сбор, учет и подготовка к лабораторному исследованию кровососущих членистоногих в природных очагах инфекцион"
  n1 --> n2
  n0 --> n1
classDef rst fill:#FFEBEB,stroke:#8B0000,color:#000;
classDef doc fill:#EBFFEB,stroke:#006400,color:#000;
classDef notEnt fill:#FFFFEB,stroke:#FF8C00,color:#000;

Утверждаю Руководитель Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главный государственный санитарный врач Российской Федерации А. Ю. Попова 13 апреля 2023 года

3.1 ЭПИДЕМИОЛОГИЯ, ПРОФИЛАКТИКА ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ

СБОР, УЧЕТ И ПОДГОТОВКА К ЛАБОРАТОРНОМУ ИССЛЕДОВАНИЮ КРОВОСОСУЩИХ ЧЛЕНИСТОНОГИХ В ПРИРОДНЫХ ОЧАГАХ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ

МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ МР 3.1.0322-23

1. Разработаны Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Скударева О.Н., Абрамов Ю.Е., Шадская М.О.), ФКУН «Российский научно-исследовательский противочумный институт „Микроб“ Роспотребнадзора (Поршаков А.М., Кузнецов А.А., Матросов А.Н., Корнеев М.Г., Селенина А.Г., Кондратьев Е.Н., Попов Н.В.), ФКУЗ „Иркутский научно-исследовательский противочумный институт Сибири и Дальнего Востока“ Роспотребнадзора (Вержуцкий Д.Б., Вершинин Е.А., Вержуцкая Ю.А., Ляпунов А.В., Корзун В.М.), ФКУЗ „Ростовский научно-исследовательский противочумный институт“ Роспотребнадзора (Забашта М.В., Забашта А.В., Хаметова А.П., Добровольский О.П., Орехов И.В., Пичурина Н.Л., Носков А.К.), ФКУЗ „Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт“ Роспотребнадзора (Тохов Ю.М., Дубянский В.М., Котти Б.К., Жильцова А.Ю., Лазаренко Е.В., Шапошникова Л.И., Куличенко А.Н.), Институт дезинфектологии ФБУН „Федерального научного центра гигиены им. Ф.Ф. Эрисмана“ Роспотребнадзора (Богданова Е.Н., Лопатина Ю.В.), ФКУЗ „Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт“ Роспотребнадзора (Бородай Н.В., Фомина В.К., Несговорова А.В., Зарубин Н.А.), ФБУН „Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии“ Роспотребнадзора (Акимкин В.Г., Чеканова Т.А., Янковская Я.Д.), ФГБУ „Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи“ Минздрава России (Коренберг Э.И., Ковалевский Ю.В., Сироткин М.Б., Горелова Н.Б., Голидонова К.А.), ФГБУН „Институт систематики и экологии животных“ СО РАН (Юрченко Ю.А., Петрожицкая Л.В.), ФГБОУ ВО „Воронежский государственный университет“ (Прокин А.А.), ФБУЗ „Федеральный центр гигиены и эпидемиологии“ Роспотребнадзора (Транквилевский Д.В., Царенко В.А.), ФКУЗ „Противочумный центр“ Роспотребнадзора (Лопатин А.А., Попов В.П.), ФБУЗ „Центр гигиены и эпидемиологии в Ставропольском крае“ (Соломащенко Н.И., Пурмак К.А., Маркова М.Ю.), ФБУЗ „Центр гигиены и эпидемиологии в Воронежской области“ (Квасов Д.А.), ФБУЗ „Центр гигиены и эпидемиологии в Республике Крым и городе федерального значения Севастополе“ (Беднарская Е.В.), ФБУЗ „Центр гигиены и эпидемиологии в Калужской области“ (Корзиков В.А., Васильева О.Л.), ФБУЗ „Центр гигиены и эпидемиологии в Тюменской области“ (Таджидинов В.О.).»

2. Утверждены руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации А.Ю. Поповой «13» апреля 2023 г.

3. МР 3.1.0322-23 введены взамен МУ 3.1.3012-12 «Сбор, учет и подготовка к лабораторному исследованию кровососущих членистоногих в природных очагах опасных инфекционных болезней», утвержденных руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 04.04.2012.

I. Область применения

1.1. В настоящих методических рекомендациях (далее — МР) представлена методология энтомологических (паразитологических) исследований кровососущих членистоногих <1> в целях обеспечения унифицированного подхода при проведении эпизоотологического обследования.

<1> Главы IV, V, IX — XII, XV, XVII, XVIII, XX, XXI, XXIII, XXVIII, XLIII СанПиН 3.3686-21 «Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней», утвержденных постановлением Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 28.01.2021 № 4 (зарегистрировано Минюстом России 15.02.2021, регистрационный № 62500), с изменениями, внесенными постановлениями Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 11.02.2022 № 5 (зарегистрировано Минюстом России 01.03.2022, регистрационный № 67587), от 25.05.2022 № 16 (зарегистрировано Минюстом России 21.06.2022, регистрационный № 68934) (далее — СанПиН 3.3686-21).

1.2. МР определяют организацию и методы энтомологической работы при зоолого-энтомологическом, эпизоотологическом мониторинге природных очагов инфекционных болезней в целях обеспечения профилактики заболеваний человека.

1.3. МР предназначены для специалистов органов и организаций Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, а также могут быть использованы специалистами научно-исследовательских, медицинских и образовательных организаций.

II. Общие положения

2.1. В субъектах Российской Федерации выявлены очаги трансмиссивных инфекционных и паразитарных болезней, также существует возможность возникновения данных очагов на других территориях. Кровососущие членистоногие — представители классов Насекомые (Insecta) и Паукообразные (Arachnida) могут участвовать в передаче возбудителей инфекционных и паразитарных болезней от донора к реципиенту, быть резервуарными хозяевами и в некоторых случаях — источником трансмиссивных инфекций (инвазий).

Списки кровососущих членистоногих приведены в приложении 1 к настоящим МР.

2.2. Изучение экологии, эпизоотологического значения кровососущих членистоногих, их роли в природной очаговости трансмиссивных болезней — важные разделы энтомологической работы, проводимой в рамках эпизоотологического мониторинга при обеспечении эпидемиологического надзора в комплексе противоэпидемических мероприятий.

2.3. Результаты энтомологических наблюдений, осуществляемых в комплексе с другими зоологическими разделами работ при эпизоотологическом обследовании, позволяют выявлять тенденции изменения ареалов, а также оценивать:

• биоразнообразие и динамику численности кровососущих членистоногих;
• характер пространственного распределения кровососущих членистоногих;
• паразито-хозяинные отношения кровососущих членистоногих и их прокормителей;
• экологические особенности переносчиков в конкретных ландшафтных условиях с учетом геоботанического, физико-географического, зоогеографического, эпидемиологического и эпизоотологического районирований территорий;
• эпидемиологическое и эпизоотологическое значение кровососущих членистоногих, наносимый ими социально-экономический ущерб.

III. Значение различных групп кровососущих членистоногих — переносчиков возбудителей опасных трансмиссивных природно-очаговых болезней

3.1. Среди кровососущих членистоногих — переносчиков возбудителей опасных трансмиссивных болезней, основное значение имеют иксодовые клещи, блохи, комары, в отдельных случаях — аргасовые, гамазовые, краснотелковые клещи, слепни, мошки, мухи-кровососки, мокрецы, вши.

3.1.1. Иксодовые клещи (семейство Ixodidae), являющиеся облигатными кровососами на всех активных фазах развития, связаны с возбудителями большого числа опасных природно-очаговых болезней бактериальной, риккетсиозной, вирусной и протозойной этиологии. Природные очаги данных болезней распространены на территории Российской Федерации, например, туляремии, Крымской геморрагической лихорадки, клещевого энцефалита, иксодовых клещевых боррелиозов, лихорадки Ку, клещевых риккетсиозов, в том числе Астраханской пятнистой лихорадки и марсельской (средиземноморской) лихорадки, Омской геморрагической лихорадки, лихорадки Западного Нила, моноцитарного эрлихиоза и гранулоцитарного анаплазмоза человека. Иксодовые клещи являются механическими переносчиками возбудителя чумы <2>.

<2> Глава X СанПиН 3.3686-21; постановление Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 12.05.2011 № 53 «Об усовершенствовании эпидемиологического надзора и профилактических мероприятий в отношении клещевого вирусного энцефалита»; МУ 3.1.1755-03 «Организация эпидемиологического надзора за клещевым риккетсиозом», утвержденные Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации, первым заместителем Министра здравоохранения Российской Федерации 28.09.2003.

Наибольшее эпизоотологическое значение имеют виды, меняющие в процессе метаморфоза хозяев (многохозяинный тип развития), когда их личинки и нимфы паразитируют преимущественно на мелких животных и птицах, а взрослые клещи — на крупных млекопитающих, а также птицах.

Уникальность иксодовых клещей — переносчиков и резервуаров возбудителей болезней заключается в длительном цикле их развития (до 3 — 5 лет), способности к трансовариальной и трансфазовой передаче многих возбудителей инфекций. Иксодовые клещи могут быть заражены одновременно разными патогенными агентами, что позволяет им заражать людей при кровососании возбудителями нескольких сочетанных инфекций.

Большинство представителей семейства Ixodidae относятся к подстерегающим эктопаразитам. Они прицепляются к человеку с почвы, травянистой или кустарниковой растительности. Иксодовые клещи рода Hyalomma активно перемещаются по направлению к прокормителю. Формирование устойчивых популяций иксодовых клещей в природных биотопах происходит в зональных ландшафтах лесной и степной зон и на интразональных пойменных территориях, в селитебных биотопах — в зеленых зонах городов, лесопарках, на пустырях, приусадебных участках, кладбищах, что может быть причиной осложнения эпидемиологической обстановки.

3.1.2. Аргасовые клещи (Argasidae) встречаются преимущественно в южных регионах Российской Федерации. Основными их хозяевами являются птицы. Местами обитания данных клещей в населенных пунктах городских и сельских поселений (далее — населенные пункты) являются глинобитные и каменные постройки, чердаки, помещения для скота, курятники, заборы; в природе — норы грызунов, логова зверей, пещеры, птичьи гнезда.

Выявлена спонтанная зараженность аргасовых клещей возбудителями болезней вирусной и бактериальной этиологии.

Аргасовые клещи могут быть переносчиками возбудителей клещевого возвратного тифа (Borrelia duttonii, B. crocidurae, B. persica, B. hispanica, B. latyschewii, B. caucasica). Источником спирохет преимущественно являются грызуны, летучие мыши, хищники, собаки, кошки. Сроки развития у разных видов аргазид 1 — 2,5 лет. Длительный жизненный цикл (данные о продолжительности жизни в лабораторных условиях до 25 лет), а также способность к трансфазовой и трансовариальной передаче боррелий способствуют стойкому существованию природных очагов клещевых спирохетозов <3>. Отмечена спонтанная зараженность аргасовых клещей возбудителем чумы.

<3> Главы XVII, XXIII СанПиН 3.3686-21.

3.1.3. Гамазовые клещи (Gamasoidea) могут принимать участие в циркуляции возбудителей в очагах болезней. Группа гамазовых клещей многочисленна и разнообразна.

Паразитические виды гамазовых клещей связаны с различными теплокровными животными и птицами. У значительной части представителей данной группы отсутствует строгая хозяинная специфичность.

Большинство паразитических видов гамазовых клещей относятся к гнездово-норовым паразитам. Самостоятельно они перемещаются на короткие расстояния. Гамазиды способны к многократному питанию, отличаются круглогодичным паразитированием на всех активных фазах развития. При благоприятных условиях у разных видов гамазовых клещей скорость развития от яйца до взрослой стадии составляет от 5 до 12 суток.

Ряд представителей этого надсемейства являются переносчиками возбудителя везикулезного (осповидного, гамазового) риккетсиоза и лимфоцитарного хориоменингита. От гамазид выделяли возбудителей клещевого энцефалита и Омской геморрагической лихорадки. Данные клещи могут быть переносчиками бактериальных инфекций (туляремия, чума, псевдотуберкулез); способны нападать на человека, вызывая клещевой дерматит <4>.

<4> Глава XXVIII СанПиН 3.3686-21.

Некоторые виды гамазовых клещей синантропны и экологически связаны с постройками человека (например, крысиный, мышиный и куриный клещи).

Гамазовые клещи являются многохозяинными эктопаразитами.

3.1.4. Краснотелковые клещи (семейство Trombiculidae) характеризуются облигатным эктопаразитизмом личинок на наземных позвоночных животных, в том числе на грызунах, насекомоядных и хищных. При паразитировании на млекопитающих и человеке тромбикулиды могут вызывать тромбидиоз (крыжовниковая болезнь, осенняя эритема), в ряде регионов являются переносчиками возбудителей лихорадки цуцугамуши.

3.1.5. Блохи (Siphonaptera). Имаго блох являются специфическими переносчиками и хранителями микроба чумы, для них характерна облигатная гематофагия. Личинки блох питаются фекалиями имаго и другими органическими остатками.

Блохи паразитируют на теплокровных животных, в том числе носителях возбудителя чумы. Зараженные чумой блохи представляют опасность для человека, особенно при вовлечении в эпизоотию синантропных грызунов.

Блохи являются переносчиками эндемического (крысиного) сыпного тифа, туляремии и других возбудителей (бактерии, вирусы, простейшие) <5>.

<5> Главы XII, XV, XXIII СанПиН 3.3686-21.

3.1.6. Двукрылые (Diptera), например, кровососущие комары (Culicidae), мокрецы (Ceratopogonidae), мошки (Simuliidae), слепни (Tabanidae), мухи-кровососки (Hippoboscidae) — переносчики, в том числе механические, возбудителей многих трансмиссивных болезней человека и животных.

Наибольшее эпидемиологическое значение имеют кровососущие комары — переносчики возбудителей малярии, туляремии, лихорадки Западного Нила, лихорадки Зика, желтой лихорадки, лихорадки денге, лихорадки Синдбис, японского энцефалита <6>.

<6> Главы IX, XXI, XXIII СанПиН 3.3686-21; приказ Роспотребнадзора от 18.04.2011 № 385 «О совершенствовании эпидемиологического надзора и профилактике лихорадки Западного Нила в Российской Федерации».

IV. Цели и задачи энтомологических исследований в природных очагах зоонозов

4.1. Энтомологическая работа — раздел эпизоотологического мониторинга при обеспечении эпидемиологического надзора за трансмиссивными инфекционными болезнями, направленный на получение информации о кровососущих членистоногих — переносчиках в целях изучения природных и антропоургических очагов, оценки и прогнозирования эпизоотической и эпидемической ситуаций, планирования и проведения профилактических мероприятий.

4.1.1. С целью комплексной оценки эпизоотологической (паразитологической) ситуации при обеспечении эпидемиологического надзора за инфекционными (паразитарными) болезнями специалистами, осуществляющими энтомологические работы по мониторингу за сочленами природных, антропогенных и урбанизированных экосистем — переносчиками возбудителей трансмиссивных инфекций, реализуются задачи:

• наблюдения за фенологическими явлениями, началом и окончанием периодов сезонной активности кровососущих членистоногих;
• изучение видового состава кровососущих членистоногих — переносчиков, особенностей их распределения по территории;
• наблюдения за сезонной, годовой и многолетней динамикой численности кровососущих членистоногих, особенностями их пространственного размещения;
• сбор (отлов) кровососущих членистоногих и их подготовка к лабораторному исследованию;
• определения половозрастного состава и генеративного состояния кровососущих членистоногих в различные фенологические периоды, что необходимо для анализа эпизоотологической ситуации, планирования и своевременного проведения акарицидных и инсектицидных мероприятий;
• анализа распространения, видового состава и численности кровососущих членистоногих, инфицированных возбудителями трансмиссивных инфекций;
• создание, сохранение, обновление и пополнение коллекций кровососущих членистоногих, встречающихся в природных и на антропогенных территориях.

4.1.2. При возникновении эпидемических осложнений по трансмиссивным инфекционным болезням выявляются причины, определяются основные (второстепенных (факультативных), случайных) переносчики, разрабатываются рекомендации по организации профилактических мероприятий (содержание, сроки, дислокация и объемы дезинсекционных, акарицидных обработок, включая оценку эффективности обработок).

4.2. При проведении эпизоотологического мониторинга энтомологическая работа состоит из трех разделов — подготовительного, полевого и камерального.

4.2.1 Подготовительный раздел включает:

• определение целей и задач предстоящих исследований;
• планирование сроков и объемов исследований;
• подготовку спецодежды, необходимого оборудования, комплектующих и расходных материалов;
• разработку предложений по оптимизации организационных вопросов и координации работ с другими службами и специалистами, участвующими в эпизоотологическом обследовании.

4.2.2 Во время полевых энтомологических исследований специалистами осуществляются:

• изучение условий существования кровососущих членистоногих на обследованной территории;
• учет численности и сбор (отлов) кровососущих членистоногих разных фаз, стадий и возрастов в местах их обитания, в том числе на растительности, в водоемах, на хозяевах (прокормителях) — диких и домашних млекопитающих и птицах, в норах и гнездах млекопитающих и птиц;
• обследование жилых и хозяйственных объектов, надворных и подсобных построек, придворовых территорий, зон рекреации и других объектов и территорий на наличие эктопаразитов;
• доставку полевого материала в лабораторию для исследования на наличие возбудителей инфекционных (паразитарных) болезней.

4.2.3 Камеральный этап включает:

• подготовку информации о результатах фенологических наблюдений, изучения распределения и численности кровососущих членистоногих;
• разбор полевого материала, включающий осмотр и сбор членистоногих с добытых животных, из субстрата гнезд, клеевых листов;
• определение видовой принадлежности эктопаразитов и показателей, характеризующих их физиологическое состояние;
• формирование проб для группового (пулов) или индивидуального лабораторного исследования;
• передача проб на исследования в лабораторию;
• создание коллекционных и учебных препаратов;
• занесение результатов энтомологических наблюдений для последующего анализа и обобщения накопленных сведений в карточку сбора (учета) иксодовых клещей в природных биотопах; журнал учета сезонной динамики численности кровососущих членистоногих, имеющих эпидемиологическое значение; таблицу учета физиологического состояния блох; протокол записи сбора эктопаразитов с различных объектов; карточку учета видового состава эктопаразитов; сводную таблицу распределения эктопаразитов по объектам сбора; сведения о численности (индекс обилия) и размножении блох; карточку сбора (учета) иксодовых клещей с сельскохозяйственных животных; карточку сбора (учета) двукрылых насекомых; ведомость обследования населенных пунктов на наличие эктопаразитов; карточку учета видового состава и численности эктопаразитов мелких млекопитающих, отловленных в населенных пунктах (см. рекомендуемые формы 3, 4, 6 - 13 приложения 2 к настоящим МР);
• анализ, обобщение и систематизацию полученных данных;
• участие в составлении обзоров и прогнозов по трансмиссивным инфекционным болезням;
• участие в составлении рекомендаций по инсектицидным и акарицидным обработкам в очагах инфекционных болезней с трансмиссивным механизмом передачи возбудителя, организации данных мероприятий в случае экстренной необходимости.

4.3. Составлении годового плана и программы эпизоотологического обследования рекомендуется осуществлять с участием энтомолога. Многолетняя программа эпизоотологических исследований составляется не менее чем на 5 лет, учитывая уровень изученности региона и результаты наблюдений на стационарных пунктах многолетних наблюдений (см. гл. VI).

Если в литературных источниках отсутствуют сведения о фауне конкретной группы эктопаразитов, то приоритетным направлением на несколько лет становится составление списка видов.

После определения фаунистического состава, анализируется сезонная и многолетняя динамика численности и инфицированности кровососущих членистоногих возбудителями инфекционных болезней, изучаются экологические особенности и эпизоотологическое значение отдельных групп переносчиков.

Работа энтомолога осуществляется в составе специализированного отделения, например, зоолого-энтомологической или зоологической группы, противоэпидемиологического отряда (далее — эпидотряд) или отдельной энтомологической группы.

4.4. Ежегодную подготовку к 15 июня и 15 ноября материалов к обзорам и прогнозам численности мелких млекопитающих и членистоногих — носителей и переносчиков возбудителей природно-очаговых болезней (далее — обзоров и прогнозов) — обобщение и анализ информации о кровососущих членистоногих <7>, полученной в результате реализации поставленных целей и задач (см. п.п. 4.1 - 4.3), рекомендуется осуществлять с участием энтомолога.

<7> Инструкция по оформлению обзора и прогноза численности мелких млекопитающих и членистоногих — носителей и переносчиков возбудителей природно-очаговых болезней в субъекте Российской Федерации, утвержденная приказом Роспотребнадзора от 14.01.2013 № 6 (далее — Инструкция по оформлению обзора и прогноза).

4.5. Обеспечение биологической безопасности при проведении энтомологических работ осуществляется в соответствии с приложением 3 к настоящим МР.

V. Учет численности и методы сбора кровососущих членистоногих

Единицы (объекты) учета численности

5.1.1 Единицами (объектами) учета численности являются:

• особь хозяина-прокормителя в соответствии со списками млекопитающих и птиц <8>;

<8> Приложение № 4 к приказу Роспотребнадзора от 31.05.2022 № 296 «О мониторинге за вирусными трансмиссивными зооантропонозными инфекциями на территории Российской Федерации на период до 2026 года» (далее — приказ Роспотребнадзора от 31.05.2022 № 296), приложение 1 к МУ 3.1.3844-23 «Эпидемиологический надзор, лабораторная диагностика и профилактика геморрагической лихорадки с почечным синдромом», утвержденные руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 27.01.2023.

• вход норы животного;
• гнездо млекопитающего или птицы;
• гнездово-норовый микробиотоп (единая система подземных ходов с гнездом, включая теплокровных обитателей);
• иные объекты, в (на) которых могут встречаться кровососущие насекомые и клещи;
• площадь (1 га природного биотопа или 1 м2 поверхности).

5.1.2. Кровососущих членистоногих собирают с помощью различных приспособлений (например, флаг, волокуша, клеевой лист, фланелевая лента, выгребалка, эксгаустер, ловушки) или на одежде учетчика (сбор иксодовых клещей, отлов кровососущих двукрылых).

В качестве единицы учета применяют:

• время работы ловчего приспособления (1 час сбора пастбищных иксодовых клещей на флаг, 1 час работы одного «наблюдателя», 20 минут, 1 час или 1 ловушко-ночь при отлове комаров);
• длину маршрута (1 км при сборе клещей на флаг или волокушу);
• количество взмахов сачком (1 взмах при сборе летающих насекомых).

При учете и отлове двукрылых, нападающих на крупный рогатый скот, за единицу учета принимается 1 животное, время сбора — 1 минута.

Показатели численности кровососущих членистоногих

5.2.1. Для характеристики численности кровососущих членистоногих используются относительные показатели, характеризующие количество особей на единицу учета, которые отражают состояние популяции в данный период времени в данном месте.

Основными показателями численности кровососущих членистоногих, используемыми для эпизоотологической характеристики обследуемой территории, являются общие и видовые индексы обилия и индексы встречаемости, вспомогательными — индексы доминирования и приуроченности (верности).

5.2.2 Индекс обилия и общий запас

Индекс обилия (далее — ИО, Ио) — среднее число особей одного вида (или систематической группы), приходящееся на единицу учета (объект).

Например, число паразитов на 1 особь хозяина-прокормителя, число клещей на 1 флаго-километр (п. 5.8.5), число комаров или их личинок на 1 взмах сачка или на 1 м2 (относительная численность) (п. 5.10.2).

Для определения ИО учитывают все однотипные объекты, осмотренные на наличие паразитов, включая объекты, на которых паразиты отсутствовали.

Единичные объекты с нетипично большим количеством паразитов исключаются при вычислении ИО, но регистрируются. При планировании обследований целесообразно предусматривать репрезентативный объем выборки (гл. VI). Для анализа используются видовые и общие ИО.

Расчет ИО осуществляется путем деления суммарного количества особей одного вида паразита (видовой индекс) или особей нескольких видов одной систематической группы (общий индекс) на количество осмотренных объектов по формуле (1):

\text{И}_{\text{о}} = \frac{n}{N} , (1)

где: n — общее количество собранных членистоногих;

N — общее количество осмотренных хозяев-прокормителей (гнезд).

5.2.3. Большинство переносчиков трансмиссивных болезней являются временными или периодическими паразитами, поэтому общая численность (плотность населения) членистоногих складывается из числа особей, паразитирующих на теле хозяев-прокормителей, и особей, находящихся в остальных местообитаниях (например, норы, гнезда) в один момент времени. Сумма ИО в микробиотопе (в гнездах, на зверьках и в норах) является общим запасом эктопаразита, который распространяется на одну фазу развития паразита, например, имаго.

ИО используется при учете блох и для характеристики численности других групп гнездово-норовых паразитов.

При определении численности членистоногих на единицу площади (например, 1 га) необходимо определить ИО на каждом учитываемом объекте и плотность объектов на данной площади.

Сумма произведений ИО на количество учитываемых объектов на 1 га дает общий запас эктопаразитов на 1 га. В случае с гнездово-норовыми периодическими кровососами, например, блохами, общий запас эктопаразитов (L) вычисляется по формуле (2):

L = i1a + i2b + i3c, (2)

где: L — общий запас эктопаразитов;

i — индексы обилия блох: на зверьке — i₁, во входах нор — i₂, в гнезде — i₃;

a, b, c — количество особей, входов нор, гнезд на 1 га соответственно.

Расчет общего запаса блох на 1 га осуществляется путем умножения общего запаса блох в 1 микробиотопе на среднюю плотность микробиотопов на 1 га.

5.2.4. Индекс встречаемости — число объектов, на которых обнаружены эктопаразиты одного вида или группы видов, в процентах от общего числа обследованных объектов (проб). Расчет индекса встречаемости (Ив) осуществляется по формуле (3):

\text{И}_{\text{в}} = \frac{N\prime*100}{N} , (3)

где: N' — количество хозяев-прокормителей (гнезд), имеющих паразитов;

N — количество всех осмотренных хозяев (гнезд).

5.2.5. Индекс доминирования — доля, выраженная в процентах, которую обилие данного вида (таксономической единицы) составляет по отношению к суммарному обилию всех сравниваемых между собой видов (таксономических единиц) в изучаемом материале. Расчет индекса доминирования (Ид) осуществляется по формуле (4):

\text{И}_{\text{д}} = \frac{n\prime*100}{n} , (4)

где: n' — количество особей данного вида;

n — общее количество особей всех видов.

5.2.6. Индекс приуроченности (верности) эктопаразита к одному из мест обитания в микробиотопе — это выраженная в процентах доля индекса обилия паразита в данном месте обитания (особь, гнездо, входы нор) в общем запасе данного переносчика. Соотношение числа паразитов, одновременно обнаруживаемых на одном животном или птице и в различных частях их жилища, зависит от продолжительности нахождения паразита на хозяине-прокормителе и вне его. Расчет индекса приуроченности (Ип) паразита к исследуемым единицам среды осуществляется по формуле (5):

\text{И}_{\text{п}} = \frac{\text{Ио}*100}{\sum \text{Ио}} , (5)

где: Ио — обилие вида на хозяине-прокормителе (гнезде) (см. п. 5.2.2);

\Sigma\text{И}_{\text{о}} — суммарное обилие вида на хозяине-прокормителе и в гнезде.

5.2.7. В природных очагах чумы общий запас блох в микробиотопе или на 1 га территории в текущий период вычисляется, используя:

• средний многолетний индекс приуроченности блох к хозяину-прокормителю в определенный фенологический период в конкретном ландшафтном районе;
• индекс обилия блох в шерсти хозяина-прокормителя в аналогичный период текущего года.

Данный расчет разработан для массовых видов блох суслика, полуденной, гребенщиковой песчанок.

Расчет запаса блох конкретного вида в микробиотопе (B) осуществляется по формуле (6):

B = \frac{i \cdot n \cdot 100}{f} , (6)

где: i — видовой индекс обилия в шерсти хозяина-прокормителя;

n — число зверьков в микробиотопе;

f — индекс приуроченности данного вида блох к хозяину-прокормителю.

Запас блох на 1 га представляет собой произведение общего запаса блох в микробиотопе и числа микробиотопов на 1 га.

Определение индекса приуроченности блох проводят опытным путем (рассчитывается по абсолютному числу добываемых блох) или на основании архивных данных за 3 — 5 лет (по индексу обилия на зверьках, в их гнездах и норах, если известно среднее количество данных объектов в 1 микробиотопе).

5.2.8. После проведения сбора кровососущих членистоногих в полевых условиях в соответствии с п.п. 5.3.1 - 5.11.6 и гл. VI, при осуществлении камеральной обработки энтомологического материала проводится расчет экстенсивных и интенсивных показателей численности в соответствии с п.п. 5.2.2 - 5.2.7.

Учет численности и сбор эктопаразитов при зоолого-энтомологическом, эпизоотологическом обследовании

5.3.1. При обследовании природных очагов трансмиссивных болезней основными разделами энтомологической работы являются проведение учетов численности и сбор кровососущих членистоногих для лабораторного исследования.

5.3.2 Учеты численности эктопаразитов осуществляются:

• в процессе планового обследования территории очага одновременно со сбором эктопаразитов для лабораторного исследования (разовые учеты численности);
• на стационарных участках.

5.3.3. Разовые учеты численности дают оперативную информацию о видовом составе и состоянии численности переносчиков на конкретном участке энзоотичной территории в определенный момент времени.

Информацию о численности переносчиков в течение года и за несколько лет, определяющих ее факторах получают на стационарных пунктах многолетних наблюдений (см. гл. VI).

Учеты численности эктопаразитов осуществляются регулярно в оптимальные фенологические сроки на протяжении сезона активности эктопаразитов или круглогодично (ежемесячно или ежедекадно).

5.3.4. На стационарных пунктах многолетних наблюдений изучаются экологические особенности носителей и переносчиков по специальным комплексным программам. Собранный полевой энтомологический материал передается для лабораторного исследования.

Данные формы учетов численности и распределения эктопаразитов могут использоваться одновременно. Раздельное применение форм учета повышает информативность данных об уровне и динамике численности переносчиков.

5.3.5. Эктопаразиты в процессе обследования природных и антропоургических очагов собираются в природных биотопах и жилье человека, с мелких млекопитающих, птиц, из гнезд и входов нор, с домашних и диких млекопитающих.

5.3.6. Все найденные трупы млекопитающих и птиц осматриваются на наличие эктопаразитов. В случае добычи редких для обследуемой территории видов животных или гнезд сборы паразитических членистоногих с этих объектов фиксируются и сохраняются в коллекции.

Основные подходы при обследовании природных очагов болезней

5.4.1 Рекомендуется применять унифицированный подход при проведении обследования:

• использовать стандартные методы сбора эктопаразитов (см. гл. V);
• фиксировать сведения о числе осмотренных объектов и о числе объектов, где были встречены эктопаразиты;
• осуществлять определение видовой (таксономической) принадлежности эктопаразитов в лаборатории. В отдельных случаях видовой состав эктопаразитов устанавливается, используя фиксированный материал.

Часть сборов эктопаразитов из различных мест обитания фиксируется в 70% спирте (с указанием количества осмотренных объектов). Кровососущих комаров целесообразно накалывать на энтомологические булавки или минуции для максимального сохранения основных диагностических признаков в случае их использования для коллекции.

Основным способом сохранения диагностически важных признаков, возбудителей и их маркеров в энтомологическом материале является прижизненная заморозка в криопробирках для молекулярно-биологических исследований. Для данной цели весь отловленный материал помещается в низкотемпературный морозильник (температура хранения не выше минус 70 °C) в криопробирках.

Для камеральной обработки пробирки достаются по одной, одновременная разморозка всех пробирок не рекомендуется. При обследовании малоизученной территории, в случаях затруднений с определением видовой принадлежности кровососущих членистоногих, сборы сохраняются для последующего уточнения и идентификации.

5.4.2. Собранные в природных биотопах кровососущие членистоногие доставляются в лабораторию живыми или прижизненно замороженными. В летнее время живые кровососущие членистоногие транспортируются в автономном холодильнике, работающем от бортовой сети автомобиля, или в термоизолирующих контейнерах с хладагентами.

При длительной транспортировке кровососущие членистоногие, подготовленные для вирусологических исследований, помещаются на сухой лед или в жидкий азот в пробирках, предназначенных для хранения в данных средах. Также возможен сбор эктопаразитов в буфер для стабилизации нуклеиновых кислот в тканях на сроки, указанные производителями реагента.

5.4.3. К полевому материалу прилагаются сопроводительные этикетки для сбора эктопаразитов, для сбора иксодовых клещей, для отлова двукрылых насекомых (см. рекомендуемые формы 1, 2, 5 приложения 2 к настоящим МР).

5.4.4. В очагах чумы в зависимости от особенностей экологии носителей и переносчиков микроба чумы обследуются места обитания, массовый сбор эктопаразитов из которых более доступен, а их лабораторное исследование — наиболее информативно. В процессе эпизоотологического обследования производится отлов мелких млекопитающих, с которых осуществляется сбор эктопаразитов.

Блохи собираются из основных мест обитания — шерсти хозяина-прокормителя, его гнезд и входов нор. Иные встречающиеся кровососущие членистоногие собираются из различных мест обитания. При высокой численности кровососущих членистоногих для проведения лабораторного исследования <9> допускается выборочный сбор по 10 — 20 экземпляров с объекта.

<9> Глава XII СанПиН 3.3686-21; приказ Роспотребнадзора от 01.04.2015 № 152 «Об организации деятельности системы противочумных учреждений Роспотребнадзора».

В поселениях малого, горного, даурского и длиннохвостого сусликов организуются массовые сборы мигрирующих блох из входов нор. В поселениях малой песчанки, где в первом отрезке нор численность блох низкая, их выбирают из более глубоких отрезков нор. Доступным является массовый сбор блох из гнезд полевок.

5.4.5. При осуществлении мониторинга очагов туляремии, клещевого энцефалита, иксодовых клещевых боррелиозов, клещевого риккетсиоза и лихорадки Ку, геморрагических лихорадок (Крымская, Омская) ключевым разделом энтомологической работы является учет численности и сбор иксодовых клещей в природных биотопах и (или) с животных и птиц, в том числе с мелких млекопитающих (грызунов), сельскохозяйственных и диких животных.

5.4.6. Учет численности и сбор кровососущих членистоногих (комаров, мошек, мокрецов, слепней, а также блох, вшей, клопов, иксодовых, аргасовых, гамазовых и краснотелковых клещей) проводят, исходя из особенностей трансмиссивной болезни <10>. Например, в очагах арбовирусных болезней (например, лихорадки Западного Нила, Синдбис и Карельской, японского энцефалита) осуществляется отлов комаров.

<10> Главы IV, IX — XII, XV, XVII, XVIII, XX, XXI, XXIII, XXVIII, XLIII СанПиН 3.3686-21.

Сбор эктопаразитов с мелких млекопитающих и птиц

5.5.1. В природных очагах трансмиссивных болезней с млекопитающих собирают блох, иксодовых и гамазовых клещей, вшей и других кровососущих членистоногих.

Личинки и нимфы иксодовых клещей, гамазовые клещи и блохи, а также мухи-кровососки могут обнаруживаться в значительном количестве на диких и домашних птицах.

Млекопитающих и птиц для исследования добывают различными способами: давилками Геро, живоловками, капканами, в ловчие канавки, выливанием водой, петлями, сетями, отстрелом <11>. Наиболее полные сборы эктопаразитов с животных получают при их отлове живыми, отстреле и при достаточно быстром изъятии зверьков из орудий лова, когда эктопаразиты не успели покинуть остывающий труп.

<11> МР 3.1.0211-20 «Отлов, учет и прогноз численности мелких млекопитающих и птиц в природных очагах инфекций», утвержденные руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 03.09.2020 (далее — МР 3.1.0211-20); МР 3.1.7.0250-21 «Тактика и объемы зоологических работ в природных очагах инфекционных болезней» утвержденные руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 20.05.2021 (далее — МР 3.1.7.0250-21).

При отлове животных, активных в течение дня, предпринимаются систематические осмотры орудий лова. При отлове ночных животных орудия лова проверяются на рассвете.

Встречающиеся в поле трупы животных (например, грызуны, ежи, зайцы, лисицы, шакалы) также подбираются. Поиск данных животных может проводиться рано утром, пока они не съедены хищниками.

При изъятии из орудия лова мертвого зверька, сборе отстрелянных животных или обнаружении трупа почва под ними осматривается, так как в ней могут оказаться покинувшие остывший труп эктопаразиты. Обнаруженные эктопаразиты (блохи, иксодовые клещи) собираются в пробирку, которую укладывают в мешочек вместе с хозяином-прокормителем или непосредственно сбрасывают на хозяина-прокормителя. Для предотвращения рассеивания блох края мешочка дважды подворачиваются и туго завязывают.

Мешочки изготавливаются из плотной светлой, однотонной ткани, размером в 2 — 3 раза превышающим размер животного (рекомендуемый средний размер 20x30 см). Мешочки используются швом наружу. Мешочки с животными из одного места добычи объединяются в общую связку. Под тесемку закладывается этикетка на млекопитающих и птиц <12>. К мешочку с найденным трупом животного привязывают отдельную этикетку с надписью «труп». Для полного учета эктопаразитов индивидуальной этикеткой отмечаются животные, которые изымались из орудий лова живыми.

<12> Рекомендуемая форма 14 приложения 2 к МР 3.1.0211-20.

Хранение тушек пойманных птиц и зверьков возможно в отдельных специальных одноразовых полиэтиленовых патологоанатомических пакетах для трупов животных. Раскрытый пакет подносится к орудию лова, затем ловушка быстро погружается в пакет, который зажимается, затем зверек освобождается.

При доставке в лабораторию живых зверьков, для сохранения на них эктопаразитов, живоловки с отловленными животными помещаются в полотняные мешочки большого размера, которые укладываются в отсадники (контейнеры) <13>.

<13> МР 3.1.0211-20.

5.5.2. Отлов мух-кровососок семейства Hippoboscidae можно проводить с живых птиц, пойманных в паутинные сети или другие ловушки. Мухи-кровососки локализуются преимущественно на голове, шее и под крыльями, быстро покидают тело птицы и могут садиться на человека.

Пойманных мух-кровососок помещают в просторные пробирки. Большинство мух-кровососок без питания погибает в течение 1 — 2 суток.

Мухи-кровососки встречаются на птицах в течение всего теплого периода года, но оптимальным для сбора следует считать время вылета молодняка и вторую половину лета. При сильной зараженности на отдельных особях птиц может находиться 5 — 30 мух-кровососок.

5.5.3. В выводковых и зимовочных колониях рукокрылых, расположенных в закрытых местообитаниях природного и антропогенного происхождения, кроме осмотра самих летучих мышей, целесообразно осматривать щели, мелкие полости на наличие аргасовых и иксодовых клещей, а также кровососущих клопов. При высокой численности клопы могут находиться открыто вблизи скоплений летучих мышей на стенах и различных конструкциях построек. Сбор клопов осуществляется мягким пинцетом.

При длительном существовании колонии летучих мышей на полу формируется плотный слой гуано, на более плотных и старых участках которого можно обнаружить эктопаразитов. Сборы эктопаразитов с гуано проводятся при соблюдении принципа парности: один специалист подсвечивает фонарем место сбора, второй — собирает эктопаразитов в пробирки.

Очес живых рукокрылых, потенциальных источников возбудителей опасных для человека болезней, нецелесообразен. В отдельных случаях работу возможно проводить в рамках взаимодействия с иными организациями <14>, в том числе природоохранными и научно-исследовательскими (кольцевание, маркировка, генетические исследования методом «сухой капли»). Очес погибших рукокрылых проводится по методикам очеса иных млекопитающих.

<14> МР 3.1.7.0250-21.

Сбор эктопаразитов из нор мелких млекопитающих

5.6.1. Из нор грызунов собираются в основном блохи и встречающиеся в них иксодовые и гамазовые клещи. В субстрате ходов нор могут быть найдены все стадии развития аргасовых клещей.

Сбор возможен в поселениях грызунов, чьи блохи обладают выраженной миграционной активностью. Обследование нор осуществляется в периоды, когда в их верхних частях (первом колене) сосредотачивается наибольшее количество насекомых, что фенологически связано с появлением новой генерации паразитов, в разных очагах в определенный период.

Активная миграция блох может происходить также вследствие гибели хозяина-прокормителя.

Сбор эктопаразитов из нор грызунов в жаркое время года проводится утром и вечером, в прохладное — в середине дня.

Эктопаразиты из ходов нор извлекаются с помощью приспособлений, наиболее подходящих в конкретных условиях, например, фланелевых лент, тампонов, выгребалок. Для получения сравнимых учетных данных следует применять однотипные приспособления.

5.6.2. Норы сусликов, песчанок, пищух на плотных грунтах обследуются с помощью ленты-шланга. Чехол из светлой фланелевой ткани шириной 5 — 6 см и длиной 100 — 150 см набивается ватой или поролоном, внутрь вставляется упругий резиновый шланг или каркас из проволоки. К верхнему концу чехла пришивается шнур длиной 1 — 1,5 м.

Для обследования нор сурков с помощью ленты готовится полоска светлой ткани шириной 20 — 25 см и длиной 150 см. Одна из продольных сторон сгибается вдвое на ширину 2 — 2,5 см и прошивается. В образовавшуюся складку вставляется упругая проволока, конец которой выступает наружу на 15 — 20 см. Один конец ленты прочно закрепляется на проволоке.

Обследование входов нор сурков также возможно с помощью ватного тампона, обтянутого непроницаемой для блох тканью (например, фланель, бязь) и прикрепленного на упругую проволоку. Размер тампона выбирается в соответствии с диаметром нор.

5.6.3. Сбор членистоногих из ходов нор проводится при помощи лент всех типов. Перед входом в нору помещается обтянутый фланелевой тканью обруч (диаметр не менее 50 см) с небольшой ручкой (до 15 см). При отсутствии круга допустимо использовать отрез белой ткани размером не менее 50x50 см. Лента-шланг вводится в первое колено норы, шевелится несколько секунд, затем извлекается из норы, помещается на круг (салфетку) и собираются эктопаразиты.

В местностях с песчаными почвами или при необходимости обследовать более глубокие отрезки ходов (поселения малых песчанок) эктопаразиты из наклонных нор добываются, выгребая субстрат к устью в вырытую перед норой ямку с помощью скребка-выгребалки или черпака, похожего на узкую столовую ложку.

Эктопаразиты собираются мягким пинцетом, аспиратором или пробиркой. Для выбора из субстрата норы аргасовых клещей используется металлическое сито с величиной ячеек 2 мм (после просеивания субстрата клещи остаются в сите), либо субстрат просматривается на светлой клеенке (белой ткани) или в эмалированной кювете. Клещи собираются мягким пинцетом или кисточкой.

5.6.4. При сборе учитываются общее число осмотренных входов нор и число нор с эктопаразитами. На одном участке в зависимости от численности блох осматриваются 25, 50 или 100 входов нор, рассредоточивая их по обследуемой площади. При высокой численности блох из одной норы для лабораторного исследования достаточно выбрать часть насекомых, но обследовать больше объектов. Для учетных работ блохи из первого колена норы выбираются полностью. Число пунктов забора материала зависит от площади обследования и эпизоотологической обстановки.

Собранные с одного адреса несколькими сборщиками блохи могут объединяться в одну пробирку. Для создания влажности в пробирку опускается лист, не имеющий сильного запаха растений (злаков). Пробирки закрываются пробкой, упаковываются в полотняный мешочек и помещаются в металлический пенал для транспортировки. Учет численности блох, иксодовых клещей ведут на один обследованный вход норы. Численность аргасовых клещей учитывается по количеству просеянного субстрата (на навеску).

Сбор эктопаразитов из гнезд мелких млекопитающих и птиц

5.7.1. В гнездах сосредоточена основная масса блох, гамазовых клещей, отдельных видов аргазид, встречаются иксодовые клещи. Сборы блох из гнезд мелких млекопитающих и птиц дают сведения по видовому составу, численности и распределению эктопаразитов в микробиотопе, а также являются ценным материалом для лабораторного исследования. Добыча гнезд большинства животных трудоемка, поэтому их раскопка проводится при учетных работах на стационарах. Для лабораторного исследования блохи добываются из наиболее легкодоступных гнезд животных.

5.7.2. Раскопка гнезд грызунов, мелких хищных млекопитающих, а также птиц, гнездящихся в норах грызунов, начинается от входа норы.

По возможности предварительно отлавливаются хозяева, затем проверяется наличие эктопаразитов по ходам норы. По мере раскопки определяется направление хода шлангом, прутом или проволочным щупом, а появляющиеся ответвления отмечаются прутами или иными подходящими предметами. Для предотвращения потери направления хода, особенно при его резком повороте в глубоких норах, раскопку следует вести на 20 — 30 см ниже раскапываемого основного хода. Если разрытый ход не приводит к гнездовой камере, поиск ее продолжается по маркированным боковым ходам.

5.7.3. Для добычи гнезда сурка выбирается его поселение, расположенное на ровном участке поверхности, где неглубоко проходит горизонт грунтовых вод. Глубина расположения гнездовой камеры составляет примерно 1,5 — 2,5 м. На таком поселении отмечаются все входы нор. В средней части поселения выбирается участок, свободный от норовых отверстий, размером от 3x3 и до 5x5 метров. Участок может смещаться к периферии поселения, но имеет четкую выраженность. В центральной части данного участка может быть заметно слегка просевшее место размером 50x50 см, где производится раскоп вертикальной шахты. Гнездовой субстрат выбирается полностью, вместе с верхней частью грунта из камеры.

5.7.4. В отношении гнезд песчанок, пищух, серой крысы и полевок, характеризующихся обилием ходов и наружных отверстий, целесообразно осуществлять фронтальную раскопку по ходам нор от периферии к центру, начиная с наиболее посещаемых норовых отверстий.

В горах эффективен поиск гнезд обыкновенной полевки под камнями. Подснежные гнезда лесных и серых полевок собираются весной. Добыча гнезд мелких млекопитающих не является трудоемкой из-за небольшой глубины их залегания. Гнезда собираются также при перекладке скирд, ометов.

Гнезда птиц собираются на земле, если известны места их гнездовий. Гнезда каменки-плясуньи, береговой ласточки и других птиц-норников собираются при раскопке, попутно выбирая членистоногих по ходу норы.

5.7.5. Обнаруженное гнездо, не нарушая его целостность, переносится в полотняный мешочек или полиэтиленовый пакет объемом не менее 30 л, в которые также собирается подстилающий гнездо субстрат. Для исследования отбирается обитаемое гнездо, отличающееся от старых гнезд по цвету и характеру гнездового материала. Подстилка жилого гнезда сухая и более светлая, чем у старого, без плесени и гниющего субстрата. После помещения гнездового материала край мешочка подгибается и, для предотвращения ухода эктопаразитов, складывается «гармошкой», плотно фиксируется ее вязкой примерно посередине. В складку вставляется сопроводительная этикетка <15>. До разбора гнезда хранятся в прохладном, умеренно влажном месте, без доступа солнечных лучей. После раскопки гнезд проводится рекультивация участка. При разборе гнездового материала в лаборатории с целью сбора всех кровососущих членистоногих допустимо использование термоэклектора.

<15> Рекомендуемая форма 15 приложения 2 к МР 3.1.0211-20.

Сбор иксодовых клещей в природных биотопах

5.8.1. В природе голодных иксодовых клещей всех активных фаз развития можно обнаружить на растительности, поверхности почвы, где они поджидают прокормителя. Клещей собирают с помощью флага или волокуши на маршрутах, закладываемых в разных биотопах, чередуя редко и часто посещаемые людьми и скотом участки. Возможен сбор клещей с учетчиков. Пастбища рекомендуется обследовать ранней весной до начала выпаса скота. Летом значительное число личинок и нимф иксодовых клещей собирают, осматривая их прокормителей, например, мелких млекопитающих, зайцев, птиц.

5.8.2. Разовые учеты клещей на маршрутах (1 — 3 раза в период наибольшей активности) позволяют оценить их видовой состав и распределение в зоне обследования. При наличии в одной местности нескольких видов клещей с разными сроками активности сборы проводят с учетом фенологических особенностей каждого из них. Сборы клещей в солнечную погоду проводятся в утренние (до наступления жары) и вечерние часы при отсутствии росы и сильного ветра. В пасмурные дни сборы проводятся в дневные часы. При планировании сроков и времени сбора клещей следует учитывать температурные условия, зависящие от широты, высотной зональности и степени континентальности климата конкретной местности, а также данные проведенных в предыдущие годы учетных работ (по литературным источникам или пользуясь собственными материалами).

5.8.3. С учетом характера обследуемой территории и экологических особенностей клещей применяют различные способы их сбора и учета. На степных участках клещей собирают на волокушу — отрез однотонной светлой ворсистой ткани (вафельной, фланелевой) размером 1,5x2,0 м. В швы противоположных узких сторон отреза вставляются по рейке. К верхней рейке прикрепляется шнур, за который сборщик медленно протягивает волокушу (сбоку от себя) по участку. Волокушу можно использовать, прицепляя ее к любому подходящему механическому транспорту (например, автомобилю, квадроциклу) и протягивая ее по участку со скоростью, не превышающей скорость учетчика. Клещи цепляются за ткань, с которой снимаются пинцетом и переносятся в пробирку или на бинт (см. п. 5.8.7).

5.8.4. На луговых и лесных участках с травой и кустарником иксодовые клещи собираются на флаг из такой же ткани (см. п. 5.8.3). Отрез ткани 60x100 см прикрепляется узкой стороной к древку. Сборщик протаскивает развернутый флаг по растительности перед собой или сбоку, периодически проводя осмотр флага. Флаг скользит по траве большей частью своей поверхности. В случае сбора клещей с высоких кустарников полотнище флага поднимают вертикально и с наветренной стороны прижимают к концам веток. Подсчет длины маршрута ведут по 20 — 25 м отрезкам, заранее определив соответствующее им количество пар шагов. Для регистрации пройденного маршрута и расчета расстояния возможно использование спутниковых навигационных систем глобального позиционирования. В промежутках между отрезками делаются остановки для записей, осмотра одежды сборщиков. Суммарная протяженность маршрута при учете — не менее 1 км.

5.8.5. Обилие иксодовых клещей — число особей, собранных с флага (волокуши) и одежды учетчика при прохождении 1 км маршрута (1 флаго-км). При расчете показателя обилия возможно использование времени движения по маршруту — 1 час (показатель обилия — 1 флаго-час) с последующим пересчетом на 1 флаго-км. За 1 час учетчик в среднем проходит 0,5 км (до 2 км — в зависимости от численности клещей). В случае учетов клещей в горной местности со сложными формами рельефа учитывается только фактическое время учета. В случаях возникновения эпидемических осложнений (см. п. 4.1.2), при обследовании парковых зон (зон отдыха) за единицу учета возможна меньшая протяженность маршрута — до 0,5 км в однотипных биотопах.

5.8.6. Численность взрослых Hyalomma marginatum оценивают по числу напавших на одного учетчика особей за 1 час его нахождения в определенном биотопе (1 человеко-час). Учетчик медленно движется по маршруту, осматривая поверхность почвы и свою одежду, и собирает обнаруженных клещей. По одному маршруту обычно проходят дважды с интервалом в 10 — 15 минут.

5.8.7. При обследовании парковых зон (зон отдыха) за единицу учета возможна меньшая протяженность маршрута — 200 м в однотипных биотопах. Сбор клещей в природных биотопах осуществляется двумя и более специалистами для проведения периодического осмотра друг друга.

5.8.8. Иксодовые клещи собираются пинцетом и помещаются в стеклянные пробирки с ватно-марлевой пробкой или пластиковые пробирки с завинчивающейся крышкой. Для поддержания влажности в пробирку помещается лист злакового растения. Пробирки транспортируются в штативе. Клещи доставляются на исследование в день сбора или по окончании выезда. Клещи сохраняются живыми в полевых условиях в холодильнике при температуре от плюс 2 °C до плюс 8 °C, в пробирках с травой или мхом.

5.8.9. Сбор иксодовых клещей с растительности и последующее продолжительное хранение при температуре от плюс 2 °C до плюс 8 °C может проводиться с использованием широкого (14 см) нестерильного бинта. Бинт обильно смачивается чистой водой и слегка отжимается. Конец бинта несколькими оборотами накручивается на деревянную палочку с ребристой или шероховатой поверхностью длиной несколько шире бинта (размером с карандаш). Помещенные на бинт иксодовые клещи фиксируются 2 — 3 оборотами. После каждого отдельного сбора под бинт закладывается этикетка, написанная простым карандашом (см. рекомендуемая форма 2 приложения 2 к настоящим МР). Заполненный бинт не туго связывается резинкой и помещается в бязевый мешочек.

Сбор иксодовых клещей с крупных млекопитающих

5.9.1. На крупных животных (диких, сельскохозяйственных и домашних) паразитируют имаго большинства видов иксодовых клещей и преимагинальные стадии. Одновременно с обследованием природных биотопов в период активности иксодовых клещей возможен их сбор с крупных животных, преимущественно с коров, лошадей, овец, собак. Осуществляются видовая идентификация иксодовых клещей, формирование проб и передача для лабораторного исследования, определяется роль этих животных в прокормлении разных видов иксодид и фенологических наблюдений.

5.9.2. Клещи с сельскохозяйственных животных собираются в населенных пунктах, на фермах, пастбищах в присутствии ветеринара, зоотехника, хозяина или ответственного лица. Предпочтение отдается систематически выпасаемым животным. Внимание при сборе клещей уделяется местам их концентрации на хозяине-прокормителе (например, шея, подгрудок, ушные раковины, веки, подмышечные и паховые области, вымя, основание и конец хвоста). Присосавшиеся иксодовые клещи снимаются руками в медицинских одноразовых перчатках за основание хоботка. Может применяться пинцет или специальные технические средства для извлечения клещей. Извлечение клещей любым способом осуществляется осторожно, расшатывающими движениями, чтобы не оторвать хоботок. Инструменты после работы дезинфицируют, руки обрабатывают 70% спиртом и моют с мылом.

5.9.3. При эпизоотологическом обследовании посещаются стада домашнего скота, выпасающиеся в природных биотопах. В стаде до 50 голов для репрезентативной выборки осматривают не менее 3 животных, а при количестве голов в стаде более 50 голов — не менее 10 особей. В периоды высокой сезонной численности клещей сборы осуществляют с различных животных, например, с крупного и мелкого рогатого скота, лошадей, собак. Клещей помещают в отдельные пробирки. Заполняется сопроводительная этикетка для сбора иксодовых клещей (см. рекомендуемую форму 2 приложения 2 к настоящим МР). Соблюдаются условия хранения и транспортировки клещей (см. п. 5.8.7).

5.9.4. В природных биотопах имеют место случаи нападения иксодовых клещей на человека. Присосавшиеся клещи удаляются в медицинских организациях и направляются на исследование с целью выявления возбудителей инфекций, передающихся иксодовыми клещами. Предварительно определяется вид иксодового клеща, пол, фаза развития, степень насыщения особи.

Отлов кровососущих двукрылых

5.10.1. Жизненный цикл у кровососущих двукрылых (комаров, мокрецов, мошек, слепней) проходит в двух средах — воздушной и водной. Первую населяют взрослые особи, в воде или влажных биотопах происходит преимагинальное развитие насекомых.

В природе имаго находят убежища в зарослях травянистой растительности, дуплах деревьев, норах, пещерах. В населенных пунктах окрыленные комары концентрируются, например, в помещениях для скота или птицы, подвалах, погребах, подъездах домов, на кладбищах. Комары и мокрецы нападают в вечерние и утренние часы, днем — только в тенистых и влажных биотопах. Мошки и слепни активны в светлое время суток, нападают вне помещений, на открытом воздухе, не избегают освещенных солнцем открытых пространств. Слепни для кровососания предпочитают жаркие солнечные дни.

5.10.2. Для отлова практически всех видов нападающих кровососов используют стандартный энтомологический сачок (диаметр 30 см, глубина мешка 70 см, ручка 10 — 20 см). В 2 — 3 точках сбора ловец в защитной одежде подсчитывает количество взмахов, сделанных вокруг себя, и периодически выбирает насекомых. Для репрезентативного учета делают не менее 100 взмахов. Показателем относительной численности является среднее число отловленных комаров в пересчете на стандартное число взмахов (1 взмах).

5.10.3. Учет численности и отбор проб комаров и мошек для исследований возможно проводить с помощью устройств автоматического отлова (автоматических ловушек). Их использование позволяет минимизировать риск заражения учетчика, проводить отбор и учет в период активности как «дневных», так и «ночных» эпидемиологически значимых видов, собирать достаточное для исследований количество комаров и мошек. В процессе отбора насекомые в ловушке остаются живыми (не подвергаются воздействию электрического тока и химических реагентов). Выбор модели автоматической ловушки и аттрактантов осуществляет энтомолог с учетом их эффективности в отношении целевых объектов сбора, наличия автономного источника питания для работы в полевых условиях и возможности приобретения источников углекислого газа. Учет численности кровососущих комаров в сезон активности проводится на стационарных точках один раз в декаду. Размещение и количество стационарных точек и других точек отбора определяет заведующий зоолого-энтомологическим подразделением, с учетом предложения энтомолога и после анализа данных обследования потенциальных мест выплода комаров, оценки возможности контакта переносчика с резервуарными хозяевами инфекции, инфицированности насекомых и заболеваемости населения (при наличии таковой) в данном районе в предыдущие годы.

5.10.4. Места выплода комаров могут быть как естественные (например, озера, пруды, заболоченности, водохранилища, затоны малых рек, старицы), так и искусственные (например, поля фильтрации в населенных пунктах, ведра, бочки, банки, бассейны, малые декоративные водоемы, вазоны, старые автомобильные покрышки). Учет комаров, активных в дневное время, проводится ориентировочно с 9.00 до 21.00 ч (ловушко-день), с ночной активностью — с 21.00 ч текущих суток до 9.00 ч следующих (ловушко-ночь). Сумеречное время используется для всех видов. Единицей учета является количество комаров, пойманных в ловушку за ловушко-день, ловушко-ночь или ловушко-час. По результатам учета вычисляются среднемесячные и среднесезонные показатели численности вида на каждой точке, затем общие показатели на курируемой территории, которые заносятся журнал учета сезонной динамики численности кровососущих членистоногих, имеющих эпидемиологическое значение (см. рекомендуемую форму 4 приложения 2 к настоящим МР).

5.10.5. Для обеспечения оптимальной эффективности работы автоматическая ловушка устанавливается на открытом пространстве. Не рекомендуется устанавливать ловушку на солнце, напротив препятствий (закрытый забор, здание), зарослей густой растительности, а также рядом с источником подачи воды (поливочный шланг, разбрызгиватель). Для усиления эффективности работы ловушки рекомендуется применять аттрактанты. При установке ловушки учитывается направление ветра, потоки которого относят запах аттрактанта в сторону потенциальных мест размножения комаров.

5.10.6. Для сбора комаров со стен и потолков в подвалах, погребах, курятниках, хлевах, омшаниках и жилых помещениях возможно использование рюкзаков-аспираторов или приспособленных для этих целей автомобильных и вертикальных пылесосов, работающих от аккумуляторов. Существует несколько способов учета: при низкой численности подсчитывают абсолютное число сидящих на стенах насекомых с указанием площади помещения; при высокой численности подсчет сидящих комаров ведут на площади 0,25 — 1,0 м2 в нескольких местах помещения. Численность комаров характеризуется средним числом особей на 1 м2.

5.10.7. Самок комаров, завершивших нападение на прокормителей, совместно с голодными самками и самцами учитывают в природных биотопах (дневках) методом кошения по растительности энтомологическим сачком на удлиненной (до 1,5 м) рукоятке. Сборы проводят днем в теплую тихую погоду в период минимальной активности насекомых. Показателем является среднее число комаров, выловленных одним сборщиком на один взмах.

5.10.8. Для сбора и учета численности мокрецов и москитов применимы клеевые листы (липучки) в местах концентрации этих насекомых в природе, в убежищах прокормителей или вблизи них. Учетной единицей обычно служит экспозиция 1 листа размером 20x30 см в течение одной ночи.

5.10.9. В полевых условиях, для сохранения живыми отловленные комары и мошки помещаются в садок (с проволочным каркасом в виде куба), обтянутый марлей или мельничным газом, закрываются влажной тканью и ставятся в прохладное место. Сетки с комарами и мошками из автоматических ловушек помещаются в термоконтейнер с хладоэлементами. Садки со слепнями содержатся в тени, прикрытыми темной материей. На верхнюю стенку садка кладется ватный тампон, пропитанный подсахаренной водой. В лабораторию кровососущие двукрылые, предназначенные для вирусологического исследования, доставляются живыми или прижизненно замороженными в жидком азоте или на сухом льду. Перед видовым определением контейнер/сетку/мешочек с насекомыми для обездвиживания последних помещается на 5 — 7 минут в морозильную камеру. Чашки Петри в момент формирования проб охлаждают, пробирки помещают на холод при температуре от плюс 2 °C до плюс 8 °C. По окончании разбора энтомологического материала проба помещается в морозильную камеру, или в жидкий азот, или на сухой лед в случае транспортировки. Допускается хранение проб до исследований при температуре не выше минус 16 °C в течение 7 дней, далее — при минус 70 °C.

Используемых для коллекционирования насекомых умерщвляют в морилке. Часть сборов для коллекционных целей фиксируют в 70% спирте. Для молекулярно-биологических исследований возможна консервация материала в 96% спирте. Рекомендуется однократная смена спирта в течение суток после формирования пробы.

5.10.10. С целью количественной и качественной оценки преимагинальных фаз развития насекомых, собираются их личинки и куколки в местах выплода (из влажного грунта, с водных растений, в толще воды). Учетной единицей служит среднее число особей на единицу поверхности биотопа, либо на одно растение. Численность личинок и куколок комаров в открытых водоемах определяют путем взятия проб раз в 7 — 10 дней в течение всего сезона активности (апрель — сентябрь). Количественные пробы берут через каждые 10 шагов в небольших водоемах и не менее 10 проб в больших водоемах в местах, отличающихся, в том числе по условиям освещенности, растительности. Для учета личинок и куколок комаров в водоемах пользуются различными кюветами (фотокювета 13x18, лоток медицинский почкообразный), сачком или сачком-рамкой (обод 20 см глубина — 25 см, из мельничного газа или шелка). При учете кюветой ее осторожно подводят под поверхностный слой воды так, чтобы через край медленно переливалась вода и все личинки и куколки, находящиеся в этом слое, попали в пробу. После заполнения кювету резко поднимают и подсчитывают количество личинок и куколок. В каждой точке берут по 3 — 5 проб, результаты вносят в полевой журнал. Затем вычисляют среднее значение на 1 пробу и умножают на 32, что соответствует численности преимагинальных фаз на 1 м2 водоема. При учете сачком его погружают в воду на половину диаметра обода с небольшим разворотом вверх и протягивают по поверхности воды на расстояние 1 м и обратно. В одном участке водоема делают 5 — 10 проводок, ополаскивая содержимое сачка после каждой проводки в кювету. Обилие определяют по среднему числу особей на 1 проводку. Числу личинок на 1 м2 водоема соответствует пять проводок.

5.10.11. Личинок и куколок мокрецов, живущих в воде, собирают сачком, предварительно взмутив воду. Сбор личинок и куколок в мелких и неглубоких водоемах (например, лужицы, западины, затопленности) проводят более мелким сачком, диаметром до 10 см. Определение видовой принадлежности личинок и куколок насекомых проводят с целью установления мест выплода различных видов, сроков их развития, выяснения отдельных вопросов систематики и биологии, для контроля эффективности обработок водоемов. Часто используют метод доращивания преимагинальных фаз до имаго в лабораторных условиях. В очагах лихорадки Западного Нила проводят сбор личинок комаров рода Culex в природных биотопах и в подвалах жилых домов для лабораторного исследования.

5.10.12. Личинки и куколки мошек развиваются в текучих водах (водотоках, ручьях, реках). При необходимости, возможно проведение их сбора с растений, камней и других видов субстратов, погруженных в воду. Сбор осуществляется вручную, возможно использование гидробиологического скребка и сачка. Количественные показатели приводятся в пересчете числа особей на 1 м2 поверхности субстрата. Собранный материал сопровождается этикеткой (см. приложение 2 к настоящим МР). Определение материала ведется по имаго, личинкам и куколкам до рода и (или) вида. В последнем случае, нередко потребуется доращивание куколок до вылета имаго, при содержании куколок в микропробирках с увлажненным субстратом.

5.10.13. Каждый сбор переносчиков снабжают этикеткой (см. рекомендуемую форму 1 приложения 2 к настоящим МР). Другие необходимые сведения заносят в полевой журнал. В период активности членистоногих ежемесячно рассчитывают среднюю численность текущего года, среднемноголетние показатели, а по завершении сезона — среднесезонные показатели текущего года и среднемноголетние.

5.10.14. В местах обитания копытных в теплый период года происходит лет мух-кровососок (pp. Lipoptena и Hippobosca), которые в поисках окончательного хозяина-прокормителя могут садиться на человека. При высокой численности мухи-кровососки могут десятками садится на человека. Отлов летающих мух-кровососок производится вручную или с помощью эксгаустера. Оптимальное время для отлова окрыленных стадий — июнь — октябрь. В холодный период все представители p. Lipoptena в большом количестве обитают на теле копытных, где самки откладывают предкуколки, быстро превращающиеся в пупарии и опадающие в естественную среду. Зимой на лежках копытных может содержаться до десятка и более пупариев, хорошо заметных на снегу. При изучении значения мух-кровососок в циркуляции возбудителей инфекций важно обследовать территории с высокой плотностью населения копытных. Особенно это касается мест вольерного содержания охотничьих животных, которые в последние десятилетия получили широкое распространение.

5.10.15. Для отлова слепней возможно использование монитобской шаровидной ловушки Торстейнсона и ее модификаций. Конструкция ловушки — черный шар диаметром не менее 75 см, подвешенный к треноге. Сверху конструкция закрывается пластиковым конусом до половины шара с ловушкой по типу эксгаустера — мухоловки, куда залетают слепни. Преимущество ловушки — отсутствие избирательного действия. Также эффективна чучелообразная ловушка Скуфьина, которая также подходит для учета слепней и мошек, нападающих снизу объекта.

Сбор эктопаразитов (блох и клещей) в населенных пунктах

5.11.1. В природных очагах чумы обследование населенных пунктов на зараженность эктопаразитами (блохи, клещи) осуществляют регулярно в весенне-летний и осенний сезоны в соответствии с планом эпизоотологического мониторинга. В отдельных случаях работу проводят по показаниям, основанным на жалобах населения на высокую численность или укусы кровососущих паразитов.

5.11.2. В каждом населенном пункте обследуют 5% строений или не менее 10 домов. Небольшие поселки, хутора и одиночные строения (зимовки, летовки, вагончики) обследуют полностью. Местами концентрации блох в постройках служат щели в полу и за плинтусами, лежки собак и кошек, скопления мусора. Гамазовые клещи чаще встречаются на чердаках, в чуланах, кладовках, стойлах и загонах скота, курятниках, могут паразитировать на своих прокормителях — грызунах, кошках, собаках, голубях в жилых и производственных помещениях. Аргасовые клещи обнаруживаются в помещениях для скота и птицы, хозяйственных постройках, щелях стен, в мусоре на полу, на чердаках.

5.11.3. Сбор блох и клещей в строениях проводят путем протаскивания по поверхности пола фланелевого флага размером 60x100 см. При наличии мусора берут его пробы и разбирают как гнездовой материал. Клещей, обнаруженных в щелях построек, извлекают пинцетом, кисточкой. Блох собирают в неглубокие и широкие емкости с водой, расставляемые в помещении на ночь. Для учета эктопаразитов используют клеевые листы. Их раскладывают в укромных местах из расчета один лист 20x30 см на 10 м2 пола с экспозицией в течение ночи. Эктопаразитов с клеевых листов снимают на месте сбора или в лаборатории пинцетом или скальпелем. Если сбор предназначен для консервирования и дальнейшего фаунистического изучения, то скальпель (или кисточку) смачивают скипидаром.

При любом методе сбора учитывают количество обследованных объектов и их площадь. Показателями численности эктопаразитов в жилье человека служат ИО на 10 м2 пола или на 1 клеевой лист. Вычисляется также индекс встречаемости, процент строений с эктопаразитами, а также площадь, заселенная эктопаразитами (абсолютно или процент). Блохи, обнаруженные в помещении, подлежат определению и лабораторному исследованию.

5.11.4. Сбор эктопаразитов проводят с грызунов (синантропных и диких), отлавливаемых в населенных пунктах. Животных (соответственно их эктопаразитов), добытых непосредственно в постройках и на прилегающей территории (например, дворы), учитывают раздельно. При обследовании строений указывают их тип (например, дома деревянные или каменные, землянки, надворные постройки, подвальные помещения, погреба) и назначение (например, здания жилые, медицинские, образовательные, хозяйственные). На основании полученных данных устанавливают существование паразитарного контакта между жильем человека и природным очагом, определяют наличие показаний для проведения поселковой дезинсекции.

5.11.5. Систематический сбор и учет иксодовых клещей в зонах рекреации, придорожных лесополосах, кладбищах осуществляется в населенных пунктах в соответствии с методическими приемами, указанными в п. 5.8.

5.11.6. С целью характеристики видового состава переносчиков и особенностей их распределения в населенных пунктах целесообразно проводить сбор и учет эктопаразитов во время осмотра животных, которые не имеют владельцев или владельцы которых неизвестны, при поступлении в приют для животных <16>.

<16> Постановление Правительства Российской Федерации от 23.11.2019 № 1504 «Об утверждении методических указаний по организации деятельности приютов для животных и установлению норм содержания животных в них».

VI. Работа на стационарном пункте многолетних наблюдений

Программа исследований на стационарном пункте многолетних наблюдений

6.1.1. Стационарный пункт многолетних наблюдений (далее — стационар, стационарный пункт) — эталонный локальный участок земной поверхности, позволяющий на основе проводимых на нем многолетних регулярных наблюдений получить объективную и своевременную информацию об изменении состояния природных очагов и их основных элементов (носителей, переносчиков и возбудителя) при изучении зоонозных инфекций. Программа исследований на стационарном пункте многолетних наблюдений включает комплекс разделов, результаты изучения которых характеризуют состояние конкретного природного очага болезни. В территориях, где существуют или могут существовать очаги трансмиссивных инфекций, преобладает энтомологическое. Регулярному изучению подлежат свойства популяций эктопаразитов (динамика численности, распределение), определения их эпизоотологического значения в данный отрезок времени, выявление эпизоотий и их активности, пространственная и биоценотическая структура популяций носителей и переносчиков.

6.1.2. Стационарные пункты многолетних наблюдений целесообразно располагать в местах неоднократного или постоянного проявления эпизоотического процесса, с учетом ландшафтно-экологического районирования территории. В качестве картографической основы используются тематические карты: ландшафтные, физико-географические, геоботанические или зоогеографические. Территория стационара охватывает различные биотопы, типичные для обитания носителей и переносчиков возбудителей природно-очаговых болезней, или привязана к определенному типу очагов (например, при туляремии), не подвергается значительному антропогенному прессу, имеет наиболее благоприятные участки для обитания основных носителей и переносчиков, со стабильно высокой численностью. Определение и обоснование площади стационара осуществляется заведующим зоолого-энтомологическим подразделением (при его отсутствии — энтомологом) с учетом конкретной нозологии, ландшафтных характеристик, размеров и типов изучаемых очагов.

6.1.3. Сроки работы на стационарных участках планируются, исходя из особенностей жизнедеятельности носителей, переносчиков, экологии самого возбудителя изучаемой болезни. Оптимальной является круглогодичная, ежесезонная работа с периодичностью наблюдений. Возможна привязка сроков работы к конкретным фенологическим периодам у носителей (например, выход из спячки, гон, выкармливание молодняка). Проводятся учеты численности эктопаразитов и устанавливаются фенологические наблюдения за массовыми видами членистоногих, имеющими эпизоотологическое и эпидемиологическое значение. Выявляются сроки, продолжительность и активность размножения, периоды появления отдельных фаз развития (начало, массовое, конец). Проводятся наблюдения за алиментарной активностью, физиологическим состоянием переносчиков.

6.1.4. На территориях, где стационарные участки отсутствуют, а информации, получаемой при разовых учетах численности, для оценки объемов необходимых профилактических мероприятий недостаточно, регулярные наблюдения организовываются на произвольно выбранном участке, типичном для данного ландшафта, что возможно совмещать с текущим эпизоотологическим обследованием в течение нескольких дней. Сбор и исследование полевого материала проводится с соблюдением принципов учета на стационаре.

Стационарные наблюдения в очагах чумы

6.2.1. В поселениях сусликов стационарные наблюдения включают учеты численности блох на грызунах, во входах их нор и гнездах с последующим подсчетом их обилия в одном микробиотопе или запаса на 1 га. Учеты проводятся в основные фенологические сроки жизнедеятельности носителей и переносчиков: после выхода зверьков из спячки, когда происходит массовый выплод блох (конец марта — апрель у малого суслика, апрель — начало мая у горного, длиннохвостого и даурского сусликов); в период расселения молодых зверьков, когда появляются последующие генерации у основных переносчиков чумы (середина мая — июнь и июль соответственно). Миграционная активность блох учитывается при их полном сборе из первого колена устья норы. Обследуется не менее 50, а при низкой численности — до 100 объектов в одном пункте. Для определения ИО блох на животных в учет берутся только умерщвленные сразу после поимки особи, на которых полностью сохранились эктопаразиты. Осматриваются 25 — 30 зверьков (с появлением молодняка — в два раза больше). Добываются по возможности 5 гнезд. Запас блох в микробиотопе или на 1 га определяется, используя фактически полученные значения ИО блох во всех элементах микробиотопа в текущем сезоне. Если гнезда не раскапывали, то расчет ведется на основании ИО блох в шерсти грызунов в текущем сезоне и среднего многолетнего индекса приуроченности (см. п. 5.2.6) блох к хозяину-прокормителю.

6.2.1. Учет численности блох полуденной, гребенщиковой и монгольской песчанок проводится во время весеннего повышения генеративной и алиментарной активности насекомых (март — май), в период массового выплода имаго (май — июнь) и после прекращения размножения блох (сентябрь — ноябрь). В каждый учетный период для вычисления ИО на зверьках используются имеющиеся данные по очесу всех добытых в данные месяцы песчанок. Сбор блох из входов нор проводится при обнаружении миграции. Субстрат выгребается из первого колена норы или из более глубоких отрезков, подкапывая первое колено на 50 — 70 см. Для определения запаса блох в микробиотопе или на 1 га применяется индекс приуроченности эктопаразитов к хозяину-прокормителю. Если индекс приуроченности неизвестен, показатель рассчитывается, исходя из раскопок 5 — 10 гнезд в течение 2 — 3 сезонов.

6.2.2. Учет блох сурков проводится в период активной жизни. Ежемесячно отлавливается по 10 зверьков и вдвое больше — с появлением молодняка на поверхности. В связи с охраняемым статусом большинства видов сурков предпринимаются сборы блох с живых зверьков. Для их отлова используются капканы № 3 с дугами, обмотанными тканью или резиновыми лентами, чтобы избежать травмирования животных. Тело зверька, не вынимая из капкана, фиксируется, завернув в кусок бязевой ткани, на голову надевается целлофановый пакет с марлей, пропитанной медицинским эфиром. Экспозиция для усыпления сурка подбирается опытным путем в зависимости от возраста, веса, индивидуальной чувствительности. После засыпания зверек вынимается из капкана, заворачивается в бязевую ткань, опрыснутую эфиром, и накрывается целлофаном для иммобилизации находящихся на нем членистоногих. После сбора эктопаразитов и взятия крови на серологические тесты сурок отпускается возле входа норы, где он был отловлен. К этому времени зверек начинает приходить в себя и уходит в нору. Параллельно обследуется до 50 входов нор. В период смены поколений блох (конец июня — июль) по возможности добывается 5 гнезд.

6.2.3. Стационарные наблюдения в поселениях полевок проводятся не менее двух раз в год, добывая в каждый период не менее 30 зверьков одного вида, раскапывая 10 — 20 гнезд. Вычисляется запас блох на 1 га.

6.2.4. Эктопаразиты пищух учитываются преимущественно на зверьках. При возможности добываются их гнезда (3 — 5) и осматривается по 50 входов нор. Учет проводится не менее двух раз в год: весной и в конце лета — начале осени.

6.2.5. В природных очагах чумы практическое значение имеет определение физиологического и генеративного состояния популяций блох. Наблюдения проводятся ежедекадно (на стационарах) или совмещаются с учетными работами. При микроскопировании блох (по 30 — 50 особей из разных мест обитания) отмечаются пол, возраст, стадии переваривания крови, степень развития жирового тела. При вскрытии самок блох (по 25 — 30 из каждого места обитания) по изменениям в яичниках оцениваются их генеративное состояние и физиологический возраст, также указываются степень развития жирового тела. Данные заносятся в таблицу учета физиологического состояния блох (см. рекомендуемую форму 6 приложения 2 к настоящим МР).

Стационарные наблюдения в очагах туляремии, вирусных и других трансмиссивных болезней

6.3.1. На стационарных участках используются те же приемы сбора переносчиков, что и при разовых учетах их численности.

6.3.2. Учеты численности иксодовых клещей в природных биотопах проводятся на фиксированных маршрутах ежедекадно (с интервалом 7 — 10 дней) в течение всего периода активности членистоногих. Маршруты (3 — 5) закладываются с учетом привязанности различных видов клещей к определенным биотопам. Собираются клещи в часы их максимальной активности. Учтенных клещей сборщики оставляют на месте поимки, чтобы не вызвать искусственное изменение численности. В случае их изъятия, при последующих учетах маршрут смещается.

6.3.3. В сезон паразитирования преимагинальных стадий развития клещей проводятся их сборы с мелких млекопитающих и птиц, устанавливается роль различных хозяев в прокормлении нимф и личинок, а также численность членистоногих. В каждом из основных типов открытых биотопов (стаций) обследуемой территории накапливается не менее 100 ловушко-ночей, а при высокой численности — осматривается 20 — 25 зверьков фоновых видов. Птицы отстреливаются, отлавливаются орнитологическими сетями, а также обследуется поверхность земли под их гнездами <17>.

<17> МР 3.1.7.0250-21.

6.3.4. При наблюдении за сроками развития преимагинальных фаз в течение активного периода жизни клещей регулярно (2 раза в месяц) в лесную подстилку закладываются (на глубину до 2 см) партии по 10 напитавшихся кровью самок, нимф и личинок. Для закладки используются мешочки из мельничного газа, завязанные нержавеющей проволокой или капроновой нитью, цилиндры без дна, накрытые сверху мельничным газом (закапываются в почву) или другие контейнеры, куда помещаются по одной самке, а особей остальных фаз — группой. Клещи в используемых приспособлениях должны располагаться свободно. При регулярных (раз в неделю) просмотрах отмечаются происходящие изменения: начало и массовую яйцекладку у самок; начало и массовое появление личинок; начало и массовую линьку у преимагинальных фаз. На каждом этапе наблюдений регистрируются температура лесной подстилки на глубине 2 см и влажность воздуха на высоте 5 см над почвой.

6.3.5. Для учетов численности клещей на сельскохозяйственных животных (крупный и мелкий рогатый скот) выбираются постоянные контрольные хозяйства, выпасающие скот на определенной территории. Учеты проводятся ежедекадно либо в основные фенологические периоды, характеризующиеся массовым паразитированием на крупных животных различных видов клещей, играющих роль основных переносчиков в очаге. В намеченном стаде регулярно в течение всего сезона наблюдений проводится выборочный осмотр животных (до 10 голов) в соответствии с п. 5.9.3.

6.3.6. Контроль численности комаров в природных биотопах осуществляется регулярно в период с апреля по сентябрь. В подвальных помещениях учет численности может проводиться круглый год. Фенологические наблюдения за всеми фазами развития кровососущих двукрылых проводится один раз в 10 дней в биотопах, где численность группы наиболее высока. Для характеристики сезонной динамики численности двукрылых обследования предпринимаются, например, в одних и тех же домах, усадьбах, коровниках, птичниках, а также на прилегающей к строениям территории. Для выявления сезонного хода численности личинок и их возрастного состава обследуются постоянные и временные водоемы, типичные для данной местности и фауны комаров. В осенне-зимний период проводятся наблюдения за синантропными комарами. В некоторых очагах, где ведущее эпидемиологическое значение имеют комары, в циркуляции вирусов могут также участвовать иксодовые клещи и другие эктопаразиты, поэтому в весенне-летний период также организуются сборы и учеты иксодовых клещей, а по возможности и других групп кровососущих эктопаразитов в природных и антропогенных биотопах.

Эколого-физиологические показатели состояния популяций блох

6.4.1. Возрастной состав. При микроскопировании имаго блох (самок и самцов) на основании изменения внешних признаков условно выделяются 3 возрастные группы:

• молодые блохи — не питавшиеся, со светлым хитиновым покровом, у самок семяприемник бесцветный или светло-желтый;
• взрослые блохи — питавшиеся, с потемневшим хитиновым покровом, у самок резервуар семяприемника интенсивно пигментирован — коричневый или почти черный;
• старые блохи — хитиновые покровы темные, имеются повреждения на склеритах.

6.4.2. Генеративное состояние. Самки блох вскрываются в капле физиологического раствора на предметном стекле, отделяются яичники и просматриваются под микроскопом, прикрыв покровным стеклом. Отмечаются число яйцевых трубочек, стадии развития ооцитов, наличие желтых тел, а также наличие спермы в семяприемнике, последнее важно для установления начала размножения зимующих в неактивном состоянии имаго.

Физиологический возраст самок определяется по шкале, включающей 6 возрастных групп:

• самки молодые, еще не питавшиеся; яичники маленькие прозрачные, без темного секрета в яйцеводах, самые крупные ооциты не имеют желтка;
• самки питавшиеся, но еще не откладывавшие яйца; у неактивных блох яичники такие же, как и у блох первой группы, у активных — в яйцеводах появляется темное содержимое; ооциты находятся на различных стадиях развития, но желтых тел и остатков фолликулярного эпителия, свидетельствующих об имевшей место яйцекладке, нет;
• самки, отложившие по одному яйцу из каждой трубки; в основании яйцевой трубки после откладки имеются остатки фолликулярного эпителия; желтые тела еще не сформировались;
• самки, проделавшие немного кладок; в основаниях яйцевых трубок небольшие и неярко окрашенные желтые тела;
• самки, сделавшие много кладок; во всех яйцевых трубках крупные ярко окрашенные желтые тела, яичники функционируют; ооциты на различных стадиях развития;
• старые блохи, потерявшие способность к яйцекладке; яйцеводы и яйцевые трубки растянуты, у их основания остаются свободные места, не заполненные ооцитами; тургор ооцитов ослаблен, что указывает на прекращение их роста; в основании яйцевых трубок имеются крупные, ярко окрашенные желтые тела; при далеко зашедшем процессе старения яичник дегенерирует и у таких блох желтые тела могут исчезать.

Определить размножающихся самок можно без вскрытия путем просмотра блох в капле воды под покровным стеклом. При этом определяется три стадии созревания яиц: мелкие яйца в стадии формирования (м); средние ооциты в стадии созревания (ср.); зрелые, крупные, готовые к откладке яйца (кр.).

Число самок со зрелыми яйцами, выраженное в процентах к общему числу просмотренных самок, характеризует интенсивность размножения популяции блох.

6.4.3. Алиментарная активность. Условным показателем алиментарной активности блох служит процентное соотношение особей, имеющих различные стадии переваривания крови. При микроскопировании насекомых выделяются следующие стадии:

• желудочно-кишечный тракт заполнен алой кровью;
• в желудочно-кишечном тракте потемневшая кровь, но края пищевого комка ровные;
• в желудочно-кишечном тракте темная кровь, края пищевого комка неровные (изрезанные);
• в желудке имеются остатки переваренной крови, наблюдается сильная изрезанность пищевого комка;
• желудочно-кишечный тракт пустой, в отличие от молодых особей склериты темные, блохи старые.

Алиментарная активность блох определяет интенсивность эпизоотического контакта среди грызунов на территории непосредственно в период наблюдения. При низких температурах переваривание крови замедляется.

6.4.4. Состояние жирового тела. Степень развития жирового тела является важным показателем физиологического состояния эктопаразитов. Обилие жировых включений наблюдается у блох, находящихся в состоянии слабой активности (выплодившиеся особи или готовящиеся к зимовке имаго). У размножающихся особей происходит расходование жировых запасов.

Для определения степени развития жирового тела без вскрытия блох применяется пятибалльная шкала:

• жирового тела не видно;
• небольшие скопления жировых клеток в брюшке по вентральной и дорзальной сторонам;
• жировое тело заполняет примерно половину брюшной полости;
• жировое тело заполняет почти все брюшко, есть просветы;
• жировое тело заполняет все брюшко, просветов нет.

У блох с темным хитиновым покровом без вскрытия состояние жирового тела определить практически невозможно. В таких случаях состояние жирового тела описывается при вскрытии блох.

VII. Подготовка эктопаразитов к лабораторному исследованию

7.1. В лаборатории доставленный полевой материал разбирается (осмотр грызунов, разбор гнезд) в специально отведенной комнате. Для осмотра мелких млекопитающих мешочек с животным помещается в белый эмалированный таз или кювету (высота стенок 8 — 10 см для невысоко прыгающих блох), развязывается и собираются эктопаразиты с внутренней поверхности, постепенно выворачивая мешочек. Тушка перекладывается в таз (кювету), мешочек осматривается на наличие эктопаразитов, а затем сворачивается и опускается в емкость с дезинфицирующим раствором, по завершении экспозиции мешочки стираются.

7.1.1. Очес млекопитающих и птиц проводится частым гребнем, жесткой кисточкой, зубной щеткой или мягким пинцетом против шерсти (перьев). При этом обращается внимание на места концентрации эктопаразитов. На мелких млекопитающих, блохи, клещи (иксодовые, гамазовые, аргасовые) чаще встречаются вокруг основания хвоста, в подмышечных и паховых областях, на шее, за ушами. Личинки клещей-краснотелок скапливаются на наружной и внутренней поверхности ушных раковин. На птицах иксодовые, аргасовые, некоторые гамазовые клещи прикрепляются на веках, вокруг и внутри ушных отверстий, под крыльями, краснотелковые — локализуются в нижней части тела, реже — на голове.

7.1.2. Снятые с животных эктопаразиты разделяются по систематическим группам. Блохи из таза (кюветы) выбираются мягким пинцетом или аспиратором. Иксодовые клещи собираются глазным, анатомическим или мягким пинцетом. Блохи и иксодовые клещи помещаются в сухие пробирки и плотно закрываются пробками. Вши и гамазовые клещи собираются препаровальной иглой, мягкой кисточкой, смоченной в воде или спирте и, чтобы избежать расползания, переносятся в пробирки с водой, 70% спиртом (для коллекционирования) или 95 — 96% спиртом (для молекулярно-генетических исследований). Личинки краснотелковых клещей соскабливаются пинцетом или вырезаются участки кожи вместе с паразитами. Можно собирать всех клещей на впитывающую салфетку размером 10x10 см, смоченную водой или этиловым спиртом в зависимости от дальнейших методов исследования эктопаразитов. Влажная салфетка складывается пополам и проводится по кювете и пакету в месте нахождения клещей, после чего влажная салфетка повторно складывается и эктопаразиты снова собираются. Затем салфетка скручивается и помещается в пробирку.

Сбор блох с доставленных живых зверьков и с целью сохранения блох проводится с помощью марлевого конуса. Конус шьется соответственно размерам зверька, чтобы плотно облегал его тело. При энергичном поглаживании руками зверька, помещенного в конус, блохи свободно проходят через марлю.

Живые аргасовые клещи содержатся в пробирках, куда опускается сложенная гармошкой фильтровальная бумага. Основные сведения вносятся в полевой журнал (см. рекомендуемую форму 7 приложения 2 к настоящим МР).

7.1.3. Разбор гнезд целесообразно проводить не позже следующего дня после раскопки во избежание гибели или перехода его обитателей в следующую фазу развития. Гнездовой материал небольшими порциями извлекается из мешочка в таз и выбираются эктопаразиты. Для сбора мелких членистоногих используется набор сит, что позволяет исключить из просмотра субстрат гнезда и сосредоточиться на просеянном материале. При разборе большого объема гнездового материала для ускорения работы применяется термофотоэклектор. Его основу составляют 3 части: высокая воронка с впаянной металлической сеткой, на которую помещают гнездо; электрическая лампа, вмонтированная в крышку воронки; сосуд, подставленный под воронку или закрепленный к низу воронки. Отрицательное действие тепла и света заставляет обитателей гнезд перемещаться вниз, они скапливаются в подставленном сосуде. В полевых условиях термофотоэклектор можно выставлять на солнце, обмотав сосуд светонепроницаемой тканью, которая периодически увлажняется для охлаждения. Во избежание расползания гамазовых клещей край сосуда смазывается вазелином. Пользоваться аппаратом можно, если гнездо не предназначено для повторного разбора. В гнездовом материале после первичного просмотра обычно остаются преимагинальные фазы развития членистоногих (яйца, личинки, куколки). Многократный просмотр гнезд предусматривается специальной программой стационарных исследований. Гнезда, оставленные для длительного наблюдения, хранят во влажном, прохладном помещении (лучше подвальном) в полотняных мешочках или в стеклянных банках. Гнезда просматриваются через каждые 10 — 15 дней.

7.1.4. Результаты первичного разбора материала в лаборатории записываются в протокол записи сбора эктопаразитов с различных объектов (см. рекомендуемую форму 7 приложения 2 к настоящим МР), вносятся данные сопроводительных этикеток. На пробирках с эктопаразитами соответственно протоколу указываются вид и порядковый номер животного (или группы животных), с которого сняты эктопаразиты, номер разобранного гнезда.

7.2. Кровососущие членистоногие, собранные в ходе первичного разбора материала, а также непосредственно добытые в природных биотопах, поступают в помещение (блок) для зоолого-энтомологических работ, где оборудован стол со светлым покрытием, для определения эктопаразитов, формирования проб для исследования. Членистоногие сортируются в чашках Петри или мисках, предпочтительно эмалированных или из нержавеющей стали. Каждый сбор разбирается в отдельной стерильной чашке Петри. Инструменты после каждого сбора обжигаются, посуда обрабатывается 70% этиловым спиртом. Блохи перед сортировкой или определением усыпляются эфиром. Экспозиция иммобилизации не должна превышать 1 — 2 мин. Работа проводится в защитной одежде <18>.

<18> Приложение 3 к СанПиН 3.3686-21.

7.2.1. Эктопаразиты, предназначенные только для лабораторного исследования, определяются до вида. Сборы, которые в дальнейшем планируется использовать в целях учета (как и стационарные), подвергаются более тщательной обработке. У блох определяется видовая принадлежность, регистрируется пол, возраст, алиментарную активность, генеративное состояние (процент размножающихся самок, физиологический возраст самок), указывается степень развития жирового тела (см. рекомендуемую форму 6 «Таблица учета физиологического состояния блох» приложения 2 к настоящим МР); у иксодовых клещей с целью лабораторного исследования и других видов мониторинга, отмечаются вид, пол, фазы развития, учитываются пившие и голодные особи.

Результаты исследования материала заносятся в соответствующие учетные формы. Карточки учета видового состава эктопаразитов (см. рекомендуемую форму 8 приложения 2 к настоящим МР) заводятся для каждого вида объекта (сборы с мелких млекопитающих, птиц, входов нор, гнезд) раздельно по ландшафтным районам. Сборы с редких объектов регистрируются в одной карточке. Сведения о численности (индекс обилия) и размножении блох (см. рекомендуемую форму 9 приложения 2 к настоящим МР), заполняются ежемесячно. Она используется для составления обзора по фауне, численности и размножению блох. Сведения о сборах клещей и насекомых заносятся в этикетку для сбора эктопаразитов, карточку сбора (учета) иксодовых клещей с сельскохозяйственных животных, карточку сбора (учета) двукрылых насекомых (см. рекомендуемые формы 1, 10 и 11 приложения 2 к настоящим МР), на основе записей в полевых дневниках. Численность эктопаразитов в населенных пунктах записывается в ведомость обследования населенных пунктов на наличие эктопаразитов и карточку учета видового состава и численности эктопаразитов мелких млекопитающих, отловленных в населенных пунктах (см. рекомендуемые формы 12 и 13 приложения 2 к настоящим МР).

Одновременно с определением или в процессе сортировки, эктопаразиты группируются в пробы (пулы) для исследования. В пробу включается определенное число особей паразита, добытых с одного адреса («точки»), одного места обитания, однотипных объектов. Число особей в пуле определяется видом эктопаразита, полом, стадией (фазой) развития, степенью напитанности, тестируемыми патогенными микроорганизмами. Эта информация содержится в инструкциях к используемым методикам и наборам реагентов, в справочниках по подготовке биологических образцов для молекулярно-биологических методов исследований. На пробирках указывается номер пробы. При стандартном числе эктопаразитов в пробе и на основании данных о числе положительных проб вычисляется процент зараженных эктопаразитов в исследуемом материале.

7.2.2. При исследовании на чуму в одну пробу включается до 30 блох или мелких клещей, вшей. При работах непосредственно на эпизоотических участках рекомендуется группировать в одну пробу не более 10 особей основного переносчика. Индивидуальное исследование (в частности, блох в очагах чумы) проводится в случае их сбора с трупа животного или грызуна, имеющего характерные для чумы патологические изменения, а также для установления процента зараженности эктопаразитов в период эпизоотии. Иксодовые клещи исследуются отдельно по фазам развития. В одну пробу берется не более 3 напитавшихся взрослых особей и до 30 мало пивших или голодных; нимф пивших — до 15 экземпляров и голодных — до 50; личинок пивших — до 30.

7.2.3. При исследовании на туляремию в одну пробу включается до 50 имаго иксодовых клещей, до 50 — 100 их нимф и до 100 — 200 личинок. Блохи, гамазовые клещи, вши исследуются до 100 особей в пробе. Из кровососущих двукрылых в одну пробу объединяются до 25 — 50 комаров, до 250 мошек и до 20 — 25 слепней (у последних предварительно отстригаются ноги и крылья). При исследовании кровососущих членистоногих объединение в одну пробу насекомых и иксодовых клещей собранных с биотопически разных участков и маршрутов или собранных с разных видов прокормителей не допускается.

7.2.4. Кровососущие двукрылые, доставляемые для вирусологических исследований, в полевых условиях обездвиживаются табачным дымом (эфир и хлороформ применять нельзя), определяются до вида (если это возможно) или 10% сбора членистоногих фиксируется, сохраняется изложенным выше способом и используется для последующей камеральной обработки. Комары, предназначенные для исследования, группами до 25 — 50 особей помещаются в криопробирки и погружаются в жидкий азот в сосуд Дьюара, где хранятся до исследования. Мошки, мокрецы хранятся и транспортируются так же, но в пробы целесообразно группировать до 400 особей в зависимости от объема собранного материала. Если материал не был обработан в полевых условиях, доставленные кровососущие членистоногие разбираются в лаборатории. Их разбор проводится на охлажденной поверхности. Живые двукрылые для обездвиживания подмораживаются в течение 5 — 7 мин. Иксодовые клещи исследуются отдельно по стадиям, формируются пулы до 10 — 30 мало пивших или голодных особей. Напитавшиеся клещи объединяются в пробу до 3 экземпляров одного вида, фазы и пола, собранных с одного животного. Количество гамазовых клещей в пробе — не более 100 экземпляров. Если их определение не проводится, то часть сборов также фиксируется для дальнейшей камеральной обработки. При большом объеме материала количество эктопаразитов в группах должно быть одинаковым. Если при исследовании используются специальные консервирующие среды, материал разбирается на месте сбора перед помещением в среду. Необходимые для исследования и учета сведения отражаются в сопроводительной этикетке.

7.3. Вскрытие членистоногих может проводиться с целью определения их физиологического возраста или дальнейшего исследования на зараженность возбудителями. Членистоногих вскрывают на стерильном предметном стекле (лучше с лункой), помещенном в чашку Петри, в капле физиологического раствора. Комары вскрываются в капле воды. Препаровальные иглы держатся в стакане с 96% спиртом и периодически обжигаются. На дно стакана кладется вата (для предотвращения затупления игл). Членистоногие предварительно усыпляются эфиром и 1 — 2 секунды промывают в 96% спирте.

7.3.1. Вскрытие блох. Острой иглой, находящейся в левой руке, фиксируется грудь блохи. Лопатовидной иглой надрезается хитин между 2-м и 3-м члениками груди с брюшной и спинной сторон. Затем правой иглой отсекается часть хитина позади пигидия, отделяя конец задней кишки. Придерживая правой иглой блоху за брюшко, а левой за грудь, потягиванием левой иглой вперед через просвет между члениками извлекается желудочно-кишечный тракт и отделяется от грудных сегментов. Яичники извлекаются через задний конец тела самки, сделав разрез перед пигидием или удалив конец брюшка позади пигидия.

7.3.2. Клещ при вскрытии придерживается левой рукой с помощью тупой иглы или пинцета. Правой рукой острой лопатовидной иглой отсекается край тела по всей окружности (аргасовые и голодные иксодовые клещи). У крупных сытых иксодовых клещей осторожно надрезается идиосома сбоку, вводятся в появившуюся щель ножницы и разрезается хитин по окружности. Возможно разрезание копьевидной иглой кожных покровов брюшка. Во избежание разбрызгивания внутреннего содержимого, вскрытие проводится под прикрытием чашки Петри. У препарированного клеща приподнимаются дорзальные покровы и извлекаются внутренности.

7.3.3. У комаров перед вскрытием отрезаются крылья и ноги. Придерживая препаровальной иглой брюшко, копьевидной иглой рассекается тело комара примерно посредине грудного отдела. В задней части тела остаются желудочно-кишечный тракт, мальпигиевы сосуды и половые железы, в передней — глотка, пищевод и слюнные железы. Для извлечения органов брюшка надрывается хитиновый покров между 2-м и 3-м сегментами, считая от его заднего конца. Затем одна игла втыкается в грудь, другая — в конец брюшка и осторожно раздвигаются в разные стороны. Покровы брюшка легко снимаются с внутренних органов, которые прикреплены к его последнему сегменту. Слюнные железы препарируются аналогично: хитиновый покров за головой комара разрывается, затем двумя иглами, воткнутыми одна в грудь, другая — в голову, эти отделы разъединяются. При другом способе у комара отсекается голова, иглой плашмя надавливается на грудь комара и проводится ею вперед. Из надреза выступает беловатый комочек, в котором обнаруживаются слюнные железы. Определение физиологического возраста комаров проводится на основании изменения трахейной системы желудка и яичников самок. Описанными методами препарируются и другие кровососущие двукрылые.

VIII. Коллекционирование паразитических членистоногих

8.1. Создание коллекции членистоногих, имеющих медицинское значение, необходимо для изучения фауны, экологии, зоогеографии эктопаразитов, а также подготовки кадров. Коллекции различаются по целям их создания и использования. Организациями, проводящими наблюдения непосредственно в природных очагах опасных трансмиссивных болезней, создаются научные и учебные коллекции. В научной коллекции собираются все группы кровососущих членистоногих, имеющих медицинское значение на обследуемой территории, а также редкие виды. Препараты для коллекции отбираются в процессе камеральной обработки полевых сборов, проводимых специалистами в природных очагах различных трансмиссивных болезней. В коллекцию берутся препараты, не имеющие повреждений, с выраженными систематическими признаками, хорошо высушенные, расправленные (для суховоздушных препаратов), без посторонних включений (для препаратов на стекле). Для каждого вида членистоногих достаточно иметь серию из 10 — 15 препаратов из различных географических точек (в пределах района работ данной организации), с различных видов хозяев, из основных биотопов. Параллельно с научной коллекцией возможно формирование обменного фонда. Для подготовки специалистов создается учебная коллекция из наиболее массовых видов кровососущих членистоногих. В научно-исследовательских организациях, подведомственных Роспотребнадзору, осуществляющих методическое обеспечение противоэпидемической работы соответствующего профиля на закрепленной за ними территории, создается фундаментальная коллекция кровососущих членистоногих, а также учебная, включающая выборки массовых видов паразитических членистоногих из разных систематических групп по отдельным регионам курируемой территории.

8.2. Объем материала, подлежащего коллекционированию, зависит от степени изученности территории. При обследовании новых и малоизученных территорий консервируется до 10% сборов, с хорошо изученных территорий — до 2% сборов. Консервировать сбор необходимо полностью. При определении видового состава эктопаразитов специалистом допускается консервирование отдельных экземпляров, представляющих научный интерес. Обязательному коллекционированию подлежат эктопаразиты, новые для данной территории или снятые с редких для данной местности видов животных, а также экземпляры, не поддающиеся определению на месте или имеющие отклонения в строении.

8.3. Материал в музеях организаций рекомендуется сохранять в виде спиртовых коллекций, монтированных на предметных стеклах в канадском бальзаме, эупарале или жидкости Фора тотальных препаратов или постоянных препаратов с диагностически значимыми частями тела кровососущих членистоногих, а также в виде суховоздушных препаратов.

8.3.1. Спиртовые препараты готовятся для хранения всех фаз развития иксодовых клещей, блох, гамазовых клещей, личинок и куколок кровососущих двукрылых, вшей грызунов. Для содержания материала рекомендуется использовать пробирки разного объема (например, пластмассовые пробирки с завинчивающейся крышкой объемом 10 — 15 мл для более крупных членистоногих или объемом до 2 мл с плотной защелкивающейся крышечкой для мелких членистоногих). Членистоногие обеззараживаются, фиксируются и хранятся в 70% спирте, заливая пробирки на 3/4 высоты. Голодных клещей лучше фиксировать в подогретом 70% спирте. Если фиксируются напитавшиеся клещи, то через 1 — 2 месяца заменяется спирт. Не рекомендуется помещать в пробирки большое количеством особей, чтобы членистоногие располагались в них свободно. Пробирки помещаются в герметичные сосуды большого размера. Мелкие пробирки хранятся во флаконах с притертыми пробками, в которые добавляется 70% спирт и 2 — 3% глицерина к объему спирта. Периодически сосуды со спиртовыми сборами пополняются спиртом.

8.3.2. Препараты подписываются, указываются дата сбора, административный район, ландшафт (биотоп), координаты сбора (широта, долгота), объект сбора, вид хозяина-прокормителя, видовое название паразита, количество последних по полу и стадии развития, фамилия коллектора и фамилия специалиста, определившего видовую принадлежность. Прописывается номер препарата. Хранится фиксированный материал в шкафах или на специальных стеллажах.

8.3.3. Тотальные препараты сильно склеротизированных членистоногих (блохи, личинки, нимфы иксодовых клещей) изготавливаются с применением пихтового (канадского) бальзама, менее склеротизированных (например, гамазовые, краснотелковые клещи, личинки блох) — погружаются в жидкость Фора. На предметных стеклах тотальных препаратов пишутся те же данные, что и на этикетках спиртовых препаратов. Постоянные тотальные препараты хранятся на фанерных или картонных планшетах в специальных пластиковых или деревянных коробках, или папках из толстого картона.

8.3.4. Имаго кровососущих двукрылых сохраняются в виде суховоздушных препаратов, наколотых на энтомологические булавки (самки), а также в 70% спирте (самцы). Наколотые экземпляры хранятся в энтомологических коробках, снабженных их видовыми и географическими этикетками. Также используются стеклянные пробирки высотой 60 — 75 мм и диаметром 25 — 30 мм с плотно подогнанными корковыми или резиновыми пробками. Энтомологическая булавка с высушенным в расправленном виде насекомым втыкается в перевернутую пробку и сверху закрывается пробиркой. Энтомологическая булавка с насекомым может помещаться в стеклянный кубик с одной открытой стороной, внутри которого наклеивается кусочек корковой пробки.

Все коллекционные препараты снабжаются этикетками, нумеруются и регистрируются в инвентарном журнале коллекционных препаратов эктопаразитов (см. рекомендуемую форму 14 приложения 2 к настоящим МР).

IX. Составление обзора численности эктопаразитов

9.1. Результаты энтомологической работы анализируются и обобщаются в обзорах и прогнозах численности мелких млекопитающих и членистоногих — носителей и переносчиков возбудителей природно-очаговых болезней, информация вносится в форму отраслевого статистического наблюдения <19>.

<19> Инструкция по оформлению обзора и прогноза; приказ Роспотребнадзора от 31.05.2022 № 296; приказ Роспотребнадзора от 13.05.2020 № 272 «Об утверждении формы отраслевого статистического наблюдения „Результаты зоолого-энтомологического, эпизоотологического мониторинга в природных очагах инфекционных болезней“.»

9.1.1. В тексте обзора дается краткое описание ландшафтно-экологических районов, метеоусловий за прошедший период, количественных показателей и состояния численности и территориального распределения хозяев-прокормителей, использованных методов учета и сбора членистоногих. Подробно описывается численность и распределение основных видов переносчиков между хозяевами и другими объектами среды, а также в пределах обслуживаемой территории. Анализ численности кровососущих членистоногих проводится в сравнении с данными за аналогичный предшествующий период и со среднемноголетними показателями (за 10 лет), анализируются материалы о размножении, возрастном составе и физиологическом состоянии паразитов. Отражаются имеющиеся сведения о прочих сторонах жизнедеятельности переносчиков, необходимых для эпизоотологической и эпидемиологической оценки территории и для прогноза возможных осложнений. Учитываются: активность нападения на человека иксодовых клещей, приводится число обратившихся за медицинской помощью пострадавших человек (в абсолютных и относительных показателях); наличие в жилье человека блох диких грызунов; изменения в продолжительности активной жизнедеятельности членистоногих (комаров, клещей). Отмечаются находки на обследуемой территории редких или встреченных впервые видов эктопаразитов с подробным описанием условий, места и времени находки. Представляются данные об участии эктопаразитов в циркуляции возбудителей природно-очаговых болезней в сравнении с прошлогодними и среднемноголетними показателями.

9.1.2. Обзоры снабжаются таблицами динамики численности основных видов переносчиков в пределах ландшафтных районов, в основных биотопах и местах обитания за период активной жизнедеятельности, прилагаются карты-схемы численности основных видов переносчиков на обслуживаемой территории.

9.1.3. В случае осуществления энтомологических работ в отношении млекопитающих и птиц, запрещенных к содержанию <20> и потенциально опасных собак <21>, информация о собранных с данных животных эктопаразитах и результатах их лабораторных исследований отдельно приводится в соответствующем разделе обзоров и прогнозов <22>.

<20> Постановление Правительства Российской Федерации от 22.06.2019 № 795 «Об утверждении перечня животных, запрещенных к содержанию».

<21> Постановление Правительства Российской Федерации от 29.07.2019 № 974 «Об утверждении перечня потенциально опасных собак».

<22> Раздел IV «Состояние популяций кровососущих членистоногих по ландшафтным зонам» в соответствии с пунктом 8 Инструкции по оформлению обзора и прогноза.

9.2. На основании изучения материалов по численности, алиментарной и генеративной активности, физиологическому состоянию переносчиков с привлечением сведений по динамике численности прокормителей в текущем периоде, а также метеорологических данных составляется краткосрочный прогноз численности массовых видов эктопаразитов. По результатам анализа перечисленных выше материалов определяются тенденции изменения численности кровососущих членистоногих на последующий сезон или год. Прогнозируемое увеличение численности прокормителей может повлечь за собой соответствующий рост численности эктопаразитов, но с некоторым отставанием во времени. Подобное отставание может приводить к продолжению повышения числа переносчиков при уже начавшемся падении числа носителей, что выражается в резком повышении ИО эктопаразитов на зверьках. Повышенные показатели активности и размножения членистоногих предшествуют росту их численности, а пониженные — снижению. Прослеживаются определенные корреляции в динамике численности прокормителей и их эктопаразитов, носителей возбудителей ряда заболеваний человека и животных. Понимание закономерностей существования и состояния очагов природно-очаговых и зоонозных болезней позволяет своевременно организовать и провести противоэпидемические мероприятия и предупредить дальнейшее развитие событий.

Приложение 1 к МР 3.1.0322-23

СПИСКИ КРОВОСОСУЩИХ ЧЛЕНИСТОНОГИХ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ <22>

<22> Примечание: возможны изменения в соответствии с современной классификацией.

Иксодовые клещи (сем. Ixodidae) (роды и виды)

Ixodes Latreille, 1795

1. Ixodes trianguliceps Birula, 1895

2. Ixodes ghilarovi Filippova et Panova, 1988

3. Ixodes stromi Filippova, 1957

4. Ixodes pomerantzevi Serdjukova, 1941

5. Ixodes angustus Neumann, 1899

6. Ixodes uriae White, 1852

7. Ixodes crenulatus Koch, 1844

8. Ixodes kaiseri Arthur, 1957

9. Ixodes arboricola Schulze et Schlottke, 1929

10. Ixodes subterraneus Filippova, 1961

11. Ixodes lividus Koch, 1844

12. Ixodes prokopjevi (Emel'yanova, 1979)

13. Ixodes signatus Birula, 1895

14. Ixodes unicavatus Neumann, 1908

15. Ixodes caledonicus Nuttall, 1910

16. Ixodes berlesei Birula, 1895

17. Ixodes frontalis (Panzer, 1798)

18. Ixodes brunneus Koch, 1844

19. Ixodes turdus Nakatsudi, 1942

20. Ixodes maslovi Emel'yanova et Kozlovskaya, 1967

21. Ixodes simplex Neumann, 1906

22. Ixodes vespertilionis Koch, 1844

23. Ixodes ricinus (Linnaeus, 1758)

24. Ixodes nipponensis Kitaoka et Saito, 1967

25. Ixodes pavlovskyi Pomerantzev, 1946

26. Ixodes persulcatus Schulze, 1930

27. Ixodes sachalinensis Filippova, 1971

28. Ixodes apronophorus Schulze, 1924

29. Ixodes eldaricus Dzhaparidze, 1950

30. Ixodes redikorzevi Olenev, 1927

31. Ixodes laguri Olenev, 1929

Haemaphysalis Koch, 1844

32. Haemaphysalis inermis Birula, 1895

33. Haemaphysalis pospelovashtromae Hoogstraal, 1966

34. Haemaphysalis punctata Canestrini et Fanzago, 1878

35. Haemaphysalis sulcata Canestrini et Fanzago, 1878

36. Haemaphysalis caucasica Olenev, 1928

37. Haemaphysalis phasiana Saito, Hoogstraal et Wassef, 1974

38. Haemaphysalis ornithophila Hoogstraal et Kohls, 1959

39. Haemaphysalis concinna Koch, 1844

40. Haemaphysalis flava Neumann, 1897

41. Haemaphysalis japonica douglasi Nuttall et Warburton, 1915

42. Haemaphysalis filippovae Bolotin, 1979

43. Haemaphysalis wellingtoni Nuttall et Warburton, 1908

44. Haemaphysalis longicornis Neumann, 1901

45. Haemaphysalis parva (Neumann, 1897)

46. Haemaphysalis erinacei taurica Pospelova-Shtrom, 1940

Amblyomma Koch, 1844

47. Amblyomma americanum (Linnaeus, 1758)

48. Amblyomma gemma Dönitz , 1909

Dermacentor Koch, 1844

49. Dermacentor reticulatus (Fabricius, 1794)

50. Dermacentor marginatus (Sulzer, 1776)

51. Dermacentor kamshadalus Neumann, 1908

52. Dermacentor niveus Neumann, 1897

53. Dermacentor silvarum Olenev, 1931

54. Dermacentor nuttalli Olenev, 1929

55. Dermacentor pomerantzevi Serdjukova, 1951

Rhipicephalus Koch, 1844

56. Rhipicephalus turanicus Pomerantzev, 1940

57. Rhipicephalus sanguineus (Latreille, 1806)

58. Rhipicephalus rossicus Jakimov et Kohl-Jakimova, 1911

59. Rhipicephalus pumilio Schulze, 1935

60. Rhipicephalus schulzei Olenev, 1929

61. Rhipicephalus bursa Canestrini et Fanzago, 1878

62. Rhipicephalus annulatus (Say, 1821)

Hyalomma Koch, 1844

63. Hyalomma aegyptium (Linnaeus, 1758)

64. Hyalomma asiaticum Schulze et Schlottke, 1929

65. Hyalomma anatolicum Koch, 1844

66. Hyalomma scupense Schulze, 1919

67. Hyalomma marginatum Koch, 1844

68. Hyalomma rufipes Koch, 1844

69. Без определения

Гамазовые клещи (инфраотр. Gamasina) (роды)

1. Непаразитические Gamasina

2. Laelaps C.L. Koch, 1836

3. Androlaelaps Berlese, 1903

4. Dipolaelaps Zemskaya et Piontkovskaya, 1960

5. Hyperlaelaps Zakhvatkin, 1948

6. Myonyssus Tiraboschi, 1904

7. Oryctolaelaps Lange, 1955

8. Eulaelaps Berlese, 1903

9. Haemogamasus Berlese, 1889

10. Hirstionyssus Fonseca, 1948

11. Ophionyssus Megnin, 1884

12. Dermanyssus De Geer, 1778 (Duges, 1834)

13. Allodermanyssus Ewing, 1923

14. Ornythonyssus Sambon, 1928

15. Macronyssus Kolenatii, 1858

16. Ichoronyssus Kolenatii, 1858

17. Steatonyssus Kolenatii, 1858

18. Paraperiglischrus Rudnick, 1960

19. Spinturnix von Heyden, 1826

20. Eyndhovenia Rudnick, 1960

21. Без определения

Блохи (отр. Siphonaptera) (роды)

1. Pulex Linnaeus, 1758

2. Echidnophaga Olliff, 1886

3. Archaeopsylla Dampf, 1908

4. Ctenocephalides Stiles et Collins, 1930

5. Euhoplopsyllus Ewing, 1940

6. Spilopsyllus Baker, 1905

7. Xenopsylla Glinkiewicz, 1907

8. Synosternus Jordan, 1925

9. Pariodontis Jordan et Rothschild, 1908

10. Coptopsylla Jordan et Rothschild, 1908

11. Dorcadia Ioff, 1946

12. Vermipsylla Schimkewitsch, 1885

13. Chaetopsylla Kohaut, 1903

14. Amphalius Jordan, 1933

15. Amalaraeus Ioff, 1936

16. Callopsylla Wagner, 1934

17. Ceratophyllus Curtis, 1852

18. Monopsyllus Kolenati, 1857

19. Citellophilus Wagner, 1934

20. Dasypsyllus Baker, 1905

21. Margopsylla Smit, 1983

22. Megabothris Jordan, 1933

23. Igioffius Smit, 1983

24. Mioctenopsylla Rothschild, 1922

25. Paramonopsyllus Argyropulo, 1946

26. Rostropsylla Wagner et Ioff, 1926

27. Nosopsyllus Jordan, 1933

28. Paraceras Wagner, 1916

29. Tarsopsylla Wagner, 1927

30. Myoxopsylla Wagner, 1927

31. Oropsylla Wagner, Ioff, 1926

32. Aenigmopsylla Ioff, 1950

33. Brevictenidia Liu et Li, 1965

34. Frontopsylla Wagner et Ioff, 1926

35. Ctenophyllus Wagner, 1927

36. Paradoxopsyllus Miyajima et Koidzumi, 1909

37. Ophthalmopsylla Wagner et Ioff, 1926

38. Phaenopsylla Jordan, 1944

39. Brachyctenonotus Wagner, 1928

40. Mesopsylla Dampf, 1910

41. Desertopsylla Argyropulo, 1946

42. Caenopsylla Rothschild, 1909

43. Ornithophaga Mikulin, 1957

44. Amphipsylla Wagner, 1909

45. Leptopsylla Jordan et Rothschild, 1911

46. Pectinoctenus Wagner, 1928

47. Peromyscopsylla Fox, 1939

48. Ischnopsyllus Westwood, 1833

49. Hexactenopsylla Oudemans, 1909

50. Rhinolophopsylla Oudemans, 1909

51. Myodopsylla Jordan et Rothschild, 1911

52. Araeopsylla Jordan et Rothschild, 1921

53. Nycteridopsylla Oudemans, 1906

54. Neopsylla Wagner, 1903

55. Paraneopsylla Tiflov, 1937

56. Catallagia Rothschild, 1915

57. Rhadinopsylla Jordan et Rothschild, 1912

58. Wagnerina Ioff et Argyropulo, 1934

59. Eopsylla Argyropulo, 1946

60. Stenoponia Jordan et Rothschild, 1911

61. Doratopsylla Jordan et Rothschild, 1912

62. Corrodopsylla Wagner, 1929

63. Palaeopsylla Wagner, 1903

64. Nearctopsylla Rothschild, 1915

65. Ctenophthalmus Kolenati, 1856

66. Hystrichopsylla Taschenberg, 1880

67. Atyphloceras Jordan et Rothschild, 1915

68. Без определения

Постельные клопы (сем. Cimicidae) (роды и виды)

Cimex Linnaeus, 1758

1. Cimex hemipterus (Fabricius, 1803)

2. C. lectuarius Linnaeus, 1758

3. C. pipistrelli Jenyns, 1839

4. C. sibiricus Vinokurov, 1995

Oeciacus Stal, 1873

5. Oeciacus hirundinis (Lamarck, 1816)

6. Oeciacus montandoni Pericart, 1972

7. Без определения

Прочие членистоногие — эктопаразиты млекопитающих и птиц

1. Подотряд Вши — Anoplura Leach, 1815 (отр. Phthiraptera)

2. Пухоеды — подотряды Amblycera Kellogg, 1896 и Ischnocera Kellogg, 1896 (отр. Phthiraptera)

3. Мухи-паучницы — сем. Nicteribiidae Samouelle, 1819

4. Личинки краснотелковых клещей — надсем. Trombidioidea Leach, 1815 и Trombiculoidea Ewing, 1929

Кровососущие комары (сем. Culicidae) (роды и виды)

Подсем. Anophelinae Род Anopheles Meigen, 1818 Подрод Anopheles Meigen, 1818

1. A. (A.) algeriensis Theobald, 1903

2. A. (A.) atroparvus van Thiel, 1927

3. A. (A.) beklemishevi Stegnii et Kabanova, 1976

4. A. (A.) claviger (Meigen, 1804)

5. A. (A.) hyrcanus (Pallas, 1771)

6. A. (A.) maculipennis, Meigen, 1818

7. A. (A.) melanoon Hackett, 1934

8. A. (A.) messeae Falleroni, 1926

9. A. (A.) plumbeus Stephens, 1828

10. A. (A.) sacharovi Favre, 1903

11. A. (A.) sinensis Wiedemann, 1828

Подрод Cellia

12. A. (C.) superpictus Grassi, 1899

Подсем. Culicinae Род Aedes Meigen, 1818 Подрод Aedes Meigen, 1818

13. Ae. (Ae.) aleksandrei Gornostaeva, 2005

14. Ae. (Ae.) cinereus Meigen, 1818

15. Ae. (Ae.) dahuricus Danilov, 1987

16. Ae. (Ae.) dmitryi Gornostaeva, 2005

17. Ae. (Ae.) esoensis Yamada, 1921

18. Ae. (Ae.) geminus Peus, 1921

19. Ae. (Ae.) nataliae Gornostaeva, 2005

20. Ae. (Ae.) rossicus Dolbeskin, Gorickaya et Mitrofanova, 1930

21. Ae. (Ae.) sasai Tanaka, Vazusawa et Saugstad, 1975

22. Ae. (Ae.) valeryi Gornostaeva, 2005

23. Ae. (Ae.) yamadai Sasa, Kano et Takahasi, 1950

Подрод Aedimorphus Theobald, 1903

24. Ae. (Ae.) vexans (Meigen, 1830)

25. Ae. v. vexans (Meigen, 1830)

26. Ae. v. nipponii (Theobald, 1907)

Подрод Bruceharrisonius Reinert, 2003

27. Ae. (B.) alektorovi Stackelberg, 1943

Подрод Downsiomyia Vargas, 1950

28. Ae. (D.) nipponicus La Casse et Yamaguti, 1948

Подрод Finlaya Theobald, 1903

29. Ae. (F.) geniculatus (Olivier, 1791)

Подрод Hulecoeteomyia Theobald, 1904

30. Ae. (H.) japonicus (Theobald, 1901)

31. Ae. (H.) koreicus (Edwards, 1917)

Подрод Ochlerotatus Lynch Arribalzaga, 1891

32. Ae. (O.) annulipes (Meigen, 1836)

33. Ae. (O.) behningi Martini, 1926

34. Ae. (O.) campestris (Dyar et Knab, 1907)

35. Ae. (O.) cantans (Meigen, 1818)

36. Ae. (O.) caspius (Pallas, 1771)

37. Ae. (O.) cataphylla Dyar, 1916

38. Ae. (O.) communis (De Geer, 1776)

39. Ae. (O.) cyprius Ludlow, 1920

40. Ae. (O.) cyprioides (Danilov et Stupin, 1982)

41. Ae. (O.) detritus (Haliday, 1833)

42. Ae. (O.) diantaeus Howard, Dyar et Knab, 1913

43. Ae. (O.) dorsalis (Meigen, 1830)

44. Ae. (O.) excrucians (Walker, 1856)

45. Ae. (O.) euedes Howard, Dyar et Knab, 1913

46. Ae. (O.) flavescens (Muller, 1764)

47. Ae. (O.) hexodontus Dyar, 1916

48. Ae. (O.) impiger (Walker, 1848)

49. Ae. (O.) implicatus (Vokeroth, 1954)

50. Ae. (O.) intermedius (Danilov et Gornostaeva, 1987)

51. Ae. (O.) intrudens Dyar, 1906

52. Ae. (O.) kasachstanicus (Gutsevich, 1962)

53. Ae. (O.) leucomelas (Meigen, 1804)

54. Ae. (O.) mercurator (Dyar, 1920)

55. Ae. (O.) monchadskyi (Dubitsky, 1968)

56. Ae. (O.) nigrinus (Eckstein, 1918)

57. Ae. (O.) nirgipes (Zetterstedt, 1838)

58. Ae. (O.) pionips Dyar, 1919

59. Ae. (O.) pulchritarsis (Rondani, 1872)

60. Ae. (O.) pullatus (Coquillett, 1904)

61. Ae. (O.) punctor (Kirby, 1837)

62. Ae. (O.) punctodes (Dyar, 1922)

63. Ae. (O.) rempeli ((Vokeroth, 1954)

64. Ae. (O.) riparius Dyar et Knab, 1907

65. Ae. (O.) sergievi (Danilov, Markovich et Proskuriakova, 1978)

66. Ae. (O.) sticticus (Meigen, 1838)

67. Ae. (O.) stramineus (Dubitsky, 1970)

Подрод Rusticoidus Shevehenko et Prudkina, 1973

68. Ae. (R.) albescens (Edvards, 1921)

69. Ae. (R.) krymmontanus (Alekseev, 1989)

70. Ae. (R.) rusticus (Rossi, 1790)

71. Ae. (R.) subdiversus Martini, 1926

Подрод Stegomyia Theobald, 1901

72. Ae. (S.) aegypti (Linnaeus, 1762)

73. Ae. (S.) albopictus (Scuse, 1895)

74. Ae. (S.) cretinus (Edwards, 1921)

75. Ae. (S.) flavopictus (Yamada, 1921)

76. Ae. (S.) galloisi (Yamada, 1921)

77. Ae. (S.) sibiricus (Danilov et Filippova, 1978)

Подрод Tanakaius Reinert, Harbach et Kitching, 2004

78. Ae. (T.) togoi (Theobald, 1907)

Род Culex Linnaeus, 1758 Подрод Barraudius Edwards, 1921

79. C. (B.) modestus Ficalbi, 1890

Подрод Culex Linnaeus, 1758

80. C. (C.) bitaeniorhinchus Giles, 1901

81. C. (C.) jacksoni Edwards, 1934

82. C. (C.) mimeticus Noe, 1915

83. C. (C.) orientalis Edwards, 1921

84. C. (C.) sinensis Theobald, 1903

85. C. (C.) theileri Theobald, 1903

86. C. (C.) torrentium Martini, 1925

87. C. (C.) tritaeniorhinchus Giles, 1901

88. C. (C.) vagans Wiedemann, 1828

89. C. (C.) pipiens Linnaeus, 1758

Подрод Maillotia Theobald, 1907

90. C. (M.) hortensis Ficalbi, 1889

Подрод Neoculex Dyar, 1905

91. C. (N.) territans Walker, 1856

Род. Culiseta Felt, 1904 Подрод Allotheobaldia Broelemann, 1919

92. C. (A.) longiareolata (Macquart, 1838)

Подрод Culicella Felt, 1904

93. C. (C.) morsitans (Theobald, 1904)

94. C. (C.) ochroptera (Peus, 1935)

Подрод Culiseta Felt, 1904

95. C. (C.) alaskaensis (Ludlow, 1906)

96. C. (C.) annulata (Schrank, 1776)

97. C. (C.) bergrothi (Edwards, 1921)

Род Coquillettidia Dyar, 1905 Подрод Coquillettidia Dyar, 1905

98. C. (C.) buxtoni (Edwards, 1923)

99. C. (C.) richiardii (Ficalbi, 1889)

100. Род Uranotaenia Lynch Arribalzaga, 1891 Подрод Pseudoficalbia Theobald, 1912

101. U. (P.) unguiculata Edwards, 1913

Род Orthopodomyia Theobald, 1904

102. O. pulchripalpis (Rondani, 1872)

103. Без определения

Слепни (сем. Tabanidae) (роды)

1. Pangonius Latreille, 1802

2. Stonemyia Brenner, 1872

3. Silvius Meigen, 1803

4. Chrysops Meigen, 1803

5. Dasyrhamphis Enderlein, 1922

6. Philipomyia Olsufiev, 1977

7. Nanorhynchus Olsufiev, 1977

8. Tabanus Linnaeus, 1758

9. Atylotus Osten-Saken, 1876

10. Therioplectes Zeller, 1872

11. Hybomitra Enderlein, 1922

12. Heptatoma Meigen, 1803

13. Haematopota Meigen, 1803

14. Без определения

Мошки (сем. Simuliidae) (роды)

1. Gymnopais Stone, 1949

2. Twinnia Stone et Jamnback, 1955

3. Prosimulium Roubaud, 1906

4. Helodon Enderlein, 1921

5. Stegopterna Enderlein, 1930

6. Greniera Doby et David, 1959

7. Cnephia Enderlein, 1921

8. Metacnephia Crosskey, 1969

9. Sulcicnephia Rubzov, 1971

10. Wilhelmia Enderlein, 1921

11. Hellichiella Rivosecchi et Cardinali, 1975

12. Byssodon Enderlein, 1925

13. Psilocnetha Enderlein, 1935

14. Gomphostilbia Enderlein, 1921

15. Montisimulium Rubzov, 1974

16. Cnetha Enderlein, 1921

17. Nevermannia Enderlein, 1921

18. Eusimulium Roubaud, 1906

19. Schoenbaueria Enderlein, 1921

20. Rubzovia Petrova, 1983

21. Boophthora Enderlein, 1921

22. Parabyssodon Rubzov, 1964

23. Psilozia Enderlein, 1936

24. Obuchovia Rubzov, 1947

25. Tetisimulium Rubzov, 1963

26. Paragnus Rubzov et Yankovsky, 1982

27. Cleitosimulium Seguy et Dorier, 1936

28. Gnus Rubzov, 1940

29. Odagmia Enderlein, 1921

30. Phoretodagmia Rubzov, 1972

31. Archesimulium Rubzov et Yankovsky, 1982

32. Argentisimulium Rubzov et Yankovsky, 1982

33. Striatosimulium Rubzov et Yankovsky, 1982

34. Simulium Latreille, 1802

35. Без определения

Москиты (сем. Psychodidae, подсем. Phlebotominae) (роды и виды)

Phlebotomus Rondani, 1840

1. Ph. papatasi Seopoli, 1786

2. Ph. neglectus Tonnoir, 1921

3. Ph. perfiliewi Parrot, 1930

4. Ph. longiductus Parrot, 1928

5. Ph. similis Nitzulescu, 1931

Sergentomyia Franca et Parrot, 1920

6. S. minuta Rondani, 1823

7. S. araklensis Perfiliew, 1933

8. S. dentate Sinton, 1933

9. S. grecovi Chodukin, 1929

10. Без определения

Мокрецы (сем. Ceratopogonidae) (роды)

Сем. Ceratopogonidae

1. Culicoides Latreille, 1809

2. Leptoconops Skuse, 1889

3. Forcipomyia Meigen, 1818 (подрод Lasiohelea Kieffer, 1921)

4. Без определения

Кровососущие мухи (семейства, роды и виды)

Сем. Muscidae Stomoxis Linneus, 1758

1. Stomoxis calcitrans (Linnaeus, 1758) — муха-жигалка

2. Stomoxis niger Maquart, 1851

3. Stomoxis sitiens Rondani, 1823

4. Без определения

Сем. Hippoboscidae, Linnaeus, 1758 Hippobosca Linneus, 1758

1. Hippobosca equina Linnaeus, 1758 — лошадиная кровососка

2. Hippobosca capensis Olfers — собачья кровососка

Lipoptena Nitzulescu, 1931

3. Lipoptena cervi Linnaeus, 1758 — оленья кровососка

Melophagus Latreille, 1802

4. Melophagus ovinus (Linnaeus, 1758) — рунец овечий или овечья кровососка

5. Без определения

Приложение 2 к МР 3.1.0322-23 (рекомендуемые образцы)

РЕКОМЕНДУЕМЫЕ ФОРМЫ УЧЕТА И ОТЧЕТНОСТИ

Форма 1 (рекомендуемый образец)

Этикетка для сбора эктопаразитов

<24> Приложение 1 МУ 3.1.3844-23; приложение № 4 к приказу Роспотребнадзора от 31.05.2022 № 296.

Форма 2 (рекомендуемый образец)

Этикетка для сбора иксодовых клещей

Форма 3 (рекомендуемый образец)

Карточка сбора (учета) иксодовых клещей в природных биотопах

«» _____________ 20 г.

Разовые сборы или стационарные учеты (указать) _____________

Структурное подразделение ___________________________________________

Административный район ____________________________________________

Ландшафтный район _________________________________________________

Энтомолог _________________ Подпись ___________ Дата ___________

<24> Приводится в соответствии с приложением 1 к настоящим МР.

Форма 4 (рекомендуемый образец)

Журнала учета сезонной динамики численности кровососущих членистоногих, имеющих эпидемиологическое значение

<25> Приводится в соответствии с приложением 1 к настоящим МР.

<26> Приведены основные методы учета, иные методы и единицы учета вносятся дополнительно в соответствии с гл. V.

Форма 5 (рекомендуемый образец)

Этикетка для отлова двукрылых насекомых

Форма 6 (рекомендуемый образец)

Таблица учета физиологического состояния блох

«» _____________ 20 г.

Структурное подразделение ____________________________________________

Административный район _____________________________________________

Ландшафтный район __________________________________________________

Вид прокормителя ____________________________________________________

Энтомолог _________________ Подпись ___________ Дата ___________

<27> Приводится в соответствии с приложением 1 к настоящим МР.

Форма 7 (рекомендуемый образец)

Протокол записи сбора эктопаразитов с различных объектов

«» ___________ 20 г.

Структурное подразделение ____________________________________________

Административный район ______________________________________________

Ландшафтный район ___________________________________________________

Форма 8 (рекомендуемый образец)

Карточка учета видового состава эктопаразитов <28>

«» ___________ 20 г.

Объект (вид животного, хозяин норы, гнезда) _________________________

Структурное подразделение ________________________________________

Административный район _________________________________________

Ландшафтный район ______________________________________________

Энтомолог _________________ Подпись ___________ Дата ___________

<28> Приводится в соответствии с приложением 1 к настоящим МР.

<29> Количество граф соответствует количеству видов эктопаразитов.

Форма 9 (лицевая сторона) (рекомендуемый образец)

Сводная таблица распределения эктопаразитов по объектам сбора <30>

«» ___________ 20 г.

Структурное подразделение ___________________________________________

Административный район ____________________________________________

Ландшафтный район _________________________________________________

Форма 9 (оборотная сторона) (рекомендуемый образец)

Сведения о численности (индекс обилия) и размножении блох <31>

Энтомолог _________________ Подпись ___________ Дата ___________

<30> Приводится в соответствии с приложением 1 к настоящим МР.

<31> Приводится в соответствии с приложением 1 к настоящим МР.

Форма 10 (рекомендуемый образец)

Карточка сбора (учета) иксодовых клещей с сельскохозяйственных животных

«» ___________ 20 г.

Разовые сборы или стационарные учеты (указать) __________________________

Структурное подразделение _____________________________________________

Административный район ______________________________________________

Ландшафтный район ___________________________________________________

Энтомолог _________________ Подпись ___________ Дата ___________

<33> Приводится в соответствии с приложением 1 к настоящим МР.

Форма 11 (рекомендуемый образец)

Карточка сбора (учета) двукрылых насекомых

«» ___________ 20 г.

Разовые сборы или стационарные учеты (указать) __________________________

Структурное подразделение ____________________________________________

Административный район ______________________________________________

Ландшафтный район ___________________________________________________

Энтомолог _________________ Подпись ___________ Дата ___________

<34> В соответствии с гл. V.

Форма 12 (рекомендуемый образец)

Ведомость обследования населенных пунктов на наличие эктопаразитов

«» ___________ 20 г.

Структурное подразделение _____________________________________________

Административный район ______________________________________________

Ландшафтный район ___________________________________________________

Энтомолог _________________ Подпись ___________ Дата ___________

Форма 13 (рекомендуемый образец)

Карточка учета видового состава и численности эктопаразитов мелких млекопитающих, отловленных в населенных пунктах

«» ___________ 20 г.

Структурное подразделение _____________________________________________

Административный район ______________________________________________

Ландшафтный район ___________________________________________________

Энтомолог _________________ Подпись ___________ Дата ___________

Форма 14 (рекомендуемый образец)

Инвентарный журнал коллекционных препаратов эктопаразитов

Типы препаратов (спиртовые, тотальные, суховоздушные) с N _____________ по N _____________

<35> Приводится в соответствии с приложением 1 к настоящим МР.

Приложение 3 к МР 3.1.0322-23

РЕКОМЕНДУЕМЫЕ ПРАВИЛА ПО ОБЕСПЕЧЕНИЮ БИОЛОГИЧЕСКОЙ БЕЗОПАСНОСТИ

1.1. Полевой материал считается потенциально опасным в отношении возможного содержания в нем возбудителей опасных трансмиссивных болезней, свойственных территории, где он был собран <36>. Вновь принятые работники, не имеющие дополнительной подготовки, направляются на подготовку в возможно короткие сроки с момента трудоустройства <37>.

<36> Пункт 473 СанПиН 3.3686-21.

<37> Пункт 149 СанПиН 3.3686-21.

Перед началом полевого сезона сотрудники, участвующие в эпизоотологическом обследовании, знакомятся с целями, задачами и характером планируемых работ, а также с требованиями биологической безопасности.

Руководитель полевого формирования (руководитель зоолого-энтомологической группы, начальник эпидотряда, эпизоотологического стационара, лаборатории, научной группы) следит за соблюдение требований биологической безопасности и соблюдением инструкций по охране труда.

Специалисты группы оснащаются имуществом, оборудованием, средствами передвижения (специально выделенным транспортом), запасом моющих и дезинфицирующих средств, репеллентов, инсектицидов и зооцидных препаратов, а также аптечкой экстренной профилактики (приложение 4 к настоящим МР).

1.2 При осуществлении полевых работ целесообразно:

• оборудовать стоянку группы с соблюдением требований биологической безопасности <38>;

<38> МР 3.1.0211-20.

• организовать специальное место для хранения, надевания и снятия защитной одежды, предусмотрев наличие обеззараживающих средств для рук;
• обеспечить личный состав группы полным комплектом подобранной по размеру защитной одежды в соответствии с сезоном и характером выполняемых работ в очагах с различными переносчиками (клещи, комары, блохи). В теплое время года используются светлый хлопчатобумажный (далее — х/б) костюм (брюки и куртка или комбинезон), защитный противоэнцефалитный костюм, комбинированный костюм по защите от гнуса и клещей, сапоги резиновые болотные (рыбацкие) при работе в пойменных биотопах, непромокаемую сезонную обувь (сапоги резиновые) при работе во влажных стациях или у водоема, высокие ботинки, брезентовые рукавицы, х/б перчатки, хирургические перчатки, головной убор. На одного работника выделяется по 2 комплекта костюма, 1 головной убор, 1 пара обуви, 2 пары рукавиц, 3 пары х/б перчаток, а по мере необходимости — одноразовые нестерильные хирургические перчатки. В холодное время защитную одежду составляют: утепленный х/б костюм, утепленная куртка с непромокаемым верхом и капюшоном, утепленные брюки, теплая обувь, брезентовые и утепленные рукавицы, теплая шапка. Костюм х/б выдается в виде двойного комплекта, остальная одежда — в одном комплекте <39>;

<39> Приложение 3 к СанПиН 3.3686-21.

• проводить все полевые работы с соблюдением принципа парности <40>;

<40> Пункт 204 СанПиН 3.3686-21, ПБ 08-37-2005 «Правила безопасности при геологоразведочных работах».

• прекращать полевые работы при экстремальных погодных условиях (например, гроза, ливень, пыльная буря);
• спецодежда перед выездом из очага, перевозится в закрытой таре и обеззараживается в стационарных условиях <41>;

<41> Приложение 2 к СанПиН 3.3686-21.

• перевозить полевое оборудование, соприкасающееся в процессе работы с кровососущими членистоногими (например, ленты, шланги, флаги, волокуши), в закрытой таре (например, клеенчатые мешки, отсадники различной модификации из материалов устойчивых к химической обработке);
• соблюдать условия транспортировки эктопаразитов и грызунов в изолирующих приспособлениях. Кровососущих членистоногих доставляют в лабораторию в стеклянных пробирках с ватно-марлевой пробкой или в пластиковых пробирках с завинчивающейся крышкой, упакованных в плотные тканевые мешочки и помещенных в металлический пенал. Мелких млекопитающих укладывают в плотные тканевые мешочки, а затем — в изолирующую тару (клеенчатые мешки, отсадники);
• проводить ежедневное двукратное (утром и вечером) измерение температуры всем членам группы с записью в журнале термометрирования;
• прекращать работу при нарушении целостности, загрязнении или намокании защитной одежды и возобновлять ее только после замены средств защиты;
• проводить само- и взаимоосмотры (при сборе иксодовых клещей каждые 10 — 15 мин) одежды, открытых частей тела и волос в процессе работы и по ее окончании, в случае обнаружения эктопаразитов (блох, клещей) снять их, обработать участок кожи дезинфицирующим раствором и проинформировать руководителя группы;
• прекратить работу в случае повреждения целостности кожных покровов, обработать руки имеющимся дезинфицирующим раствором, на место повреждения наложить компресс с дезинфицирующим средством на 4 — 5 минут, поставить в известность руководителя группы;
• изолировать заболевшего сотрудника в случае появления у него температуры и других симптомов болезни, в отдельном помещении (палатке), организовать его доставку в медицинское учреждение;
• провести уборку территории лагеря, мест общего пользования перед отъездом с места базирования.

1.3. При работе с кровососущими членистоногими в лабораторных условиях необходимо использовать защитную одежду в соответствии с санитарно-эпидемиологическими требованиями по безопасности работы с патогенными биологическими агентами (ПБА) I — IV групп патогенности <42>.

<42> Приложение 3 к СанПиН 3.3686-21.

Во избежание рассеивания эктопаразитов их иммобилизуют парами эфира или помещают на 3 — 5 минут в морозильную камеру. При работе с кровососущими комарами вместо эфира возможно применение табачного дыма, либо кратковременное шоковое охлаждение в морозильной камере. После окончания работы все инструменты и приборы, использовавшиеся во время работы, обрабатываются в соответствии с санитарно-эпидемиологическими требованиями <43>.

<43> Приложение 2 к СанПиН 3.3686-21.

Приложение 4 к МР 3.1.0322-23

СПИСОК ОСНОВНОГО РЕКОМЕНДОВАННОГО ОБОРУДОВАНИЯ ДЛЯ ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ ЭНТОМОЛОГИЧЕСКИХ НАБЛЮДЕНИЙ <44>

<44> Примечание: список основного рекомендованного оборудования для осуществления энтомологических наблюдений корректируется в зависимости от состава специалистов группы, целей и задач обследования, времени года, продолжительности эпизоотологического обследования.

<45> В соответствии с приложением 1 к МР 3.1.0211-20.

Нормативные и методические документы

1. Федеральный закон от 30.03.1999 № 52-ФЗ «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения».

2. Федеральный закон от 10.01.2002 № 7-ФЗ «Об охране окружающей среды».

3. Федеральный закон от 21.11.2011 № 323-ФЗ «Об основах охраны здоровья граждан в Российской Федерации».

4. Федеральный закон от 27.12.2018 № 498-ФЗ «Об ответственном обращении с животными и о внесении изменений в отдельные законодательные акты Российской Федерации».

5. Федеральный закон от 26.04.2008 № 52-ФЗ «О ратификации Соглашения о Международных стандартах на гуманный отлов диких животных между Европейским сообществом, Канадой и Российской Федерацией».

6. Постановление Правительства Российской Федерации от 22.06.2019 № 795 «Об утверждении перечня животных, запрещенных к содержанию».

7. Постановление Правительства Российской Федерации от 29.07.2019 № 974 «Об утверждении перечня потенциально опасных собак».

8. Постановление Правительства Российской Федерации от 23.11.2019 № 1504 «Об утверждении методических указаний по организации деятельности приютов для животных и установлению норм содержания животных в них».

9. СанПиН 3.3686-21 «Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней».

10. Постановление Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 14.04.2011 № 31 «О совершенствовании эпидемиологического надзора и профилактике лихорадки Западного Нила».

11. Постановление Главного государственного санитарного врача Российской Федерации от 12.05.2011 № 53 «Об усовершенствовании эпидемиологического надзора и профилактических мероприятий в отношении клещевого вирусного энцефалита».

12. Приказ Роспотребнадзора от 22.06.2010 № 267 «О совершенствовании эпидемиологического надзора и профилактике КВЭ в Российской Федерации».

13. Приказ Роспотребнадзора от 18.04.2011 № 385 «О совершенствовании эпидемиологического надзора и профилактике лихорадки Западного Нила в Российской Федерации».

14. Приказ Роспотребнадзора от 14.01.2013 № 6 «Об утверждении инструкции по оформлению обзора и прогноза численности мелких млекопитающих и членистоногих».

15. Приказ Роспотребнадзора от 01.04.2015 № 152 «Об организации деятельности системы противочумных учреждений Роспотребнадзора».

16. Приказ Роспотребнадзора от 01.04.2015 № 274 «Об организации деятельности системы противочумных учреждений Роспотребнадзора».

17. Приказ Роспотребнадзора от 01.12.2017 № 1116 «О совершенствовании системы мониторинга, лабораторной диагностики инфекционных и паразитарных болезней и индикации ПБА в Российской Федерации».

18. Приказ Роспотребнадзора от 13.05.2020 № 272 «Об утверждении формы отраслевого статистического наблюдения „Результаты зоолого-энтомологического, эпизоотологического мониторинга в природных очагах инфекционных болезней“.»

19. Приказ Роспотребнадзора от 31.05.2022 № 296 «О мониторинге за вирусными трансмиссивными зооантропонозными инфекциями на территории Российской Федерации на период до 2026 года».

20. ПБ 08-37-2005 «Правила безопасности при геологоразведочных работах».

21. Р 3.5.2.2487-09 «Руководство по медицинской дезинсекции».

22. МУ 3.1.7.1104-02 «Эпидемиология и профилактика листериоза».

23. МУ 3.1.1755-03 «Организация эпидемиологического надзора за клещевым риккетсиозом».

24. МУ 3.1.2007-05 «Эпидемиологический надзор за туляремией».

25. МУ 3.1.3.2355-08 «Организация и проведение эпидемиологического надзора в природных очагах чумы на территории Российской Федерации».

26. МУ 3.1.2565-09 «Проведение экстренных мероприятий по дезинсекции и дератизации в природных очагах чумы на территории Российской Федерации»

27. МУ 3.1.1.2488-09 «Организация и проведение профилактических и противоэпидемических мероприятий против Крымской геморрагической лихорадки».

28. МУ 3.2.2568-09 «Контроль численности кровососущих комаров рода Culex, места выплода которых находятся в населенных пунктах».

29. МУ 3.1.3.2600-10 «Мероприятия по борьбе с лихорадкой Западного Нила на территории Российской Федерации».

30. МУ 3.5.3011-12 «Неспецифическая профилактика клещевого вирусного энцефалита и иксодовых клещевых боррелиозов».

31. МУ 3.1.3.3395-16 «Паспортизация природных очагов чумы Российской Федерации».

32. МУ 3.1.3.3394-16 «Методические указания по прогнозированию эпизоотической активности природных очагов чумы Российской Федерации».

33. МУ 3.1.3844-23 «Эпидемиологический надзор, лабораторная диагностика и профилактика геморрагической лихорадки с почечным синдромом».

34. МУК 5.1.973-00 «Расчетные затраты времени на основные виды паразитологических исследований в центрах госсанэпиднадзора»

35. МР 3.1.0211-20 «Отлов, учет и прогноз численности мелких млекопитающих и птиц в природных очагах инфекций».

36. МР 3.1.0281-22 «Эпидемиологический надзор, лабораторная диагностика и профилактика лихорадки Ку».

37. МР 3.1.7.0250-21 «Тактика и объемы зоологических работ в природных очагах инфекционных болезней».

38. МР 3.5.0026-11 «Методические рекомендации по оценке эффективности и безопасности специальной одежды для защиты людей от членистоногих, вредящих здоровью человека».

39. МР 3.5.2.0110-16 «Организация и проведение мероприятий по энтомологическому мониторингу и регуляции численности кровососущих комаров Aedes aegypti и Aedes albopictus».

40. МР 3.1.0079/2-13 «Организация санитарно-противоэпидемического обеспечения массовых мероприятий с международным участием».

41. МР 01/8754-9-34 «Методические рекомендации по определению площадей эпизоотий в природных очагах чумы Российской Федерации».

Библиографические ссылки

1. Атлас природных очагов чумы России и зарубежных государств. Под редакцией А.Ю. Поповой, В.В. Кутырева. Калининград. РА Полиграфычъ. 2022. 348 с.

2. Барановский П.М., Коренберг Э.И. О полноте учета Ixodes persulcatus в зависимости от периодичности их вылова на площадках (Ixodidae). Паразитология. 1980. № 3. С. 273 — 275.

3. Баркалова Л.Д., Бахметьева Ю.О., Слынько Е.Е., Ромашова Н.Б. и др. Мониторинг членистоногих, имеющих эпидемиологическое и санитарно-гигиеническое значение на территории г. Воронежа. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2009. № 2. С. 33 — 38.

4. Баркалова Л.Д., Ромашова Н.Б., Транквилевский Д.В., Бахметьева Ю.О., Чубирко М.И. К вопросу распространения очагов иксодовых клещевых боррелиозов на территории Воронежской области. Здоровье населения и среда обитания. 2012. № 9. С. 30 — 34.

5. Беклемишев В.Н. Биоценологические основы сравнительной паразитологии. АН СССР. Москва. Наука. 1970. 501 с.

6. Беклемишев В.Н. Термины и понятия, необходимые при количественном изучении популяций эктопаразитов и индиколов. Зоологический журнал. 1961. № 2. С. 149 — 158.

7. Беклемишев В.Н. Экология малярийного комара. Медгиз. 1944. 300 с.

8. Беспалова Н.С., Возгорькова Е.О. Акарология для ветеринарных врачей. Санкт-Петербург. Издательство «Лань». 2017. 208 с.

9. Биологическая безопасность. Термины и определения. Под редакцией Г.Г. Онищенко, В.В. Кутырева. Москва. ОАО «Медицина». 2011. 152 с.

10. Богданова Е.Н. Медицинская дезинсекция. Москва. Издательство Спутник+. 2017. 282 с.

11. Вахрушева З.П., Горчаков А.Д., Садков Ю.А. Разработка методов абсолютного учета численности пастбищных иксодовых клещей открытых ландшафтов. Сообщение 2. Опыт прямого отлова голодных личинок и нимф Dermacentor nuttalli Olen. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1988. № 2. С. 68 — 71.

12. Вахрушева З.П., Коренберг Э.И., Горчаков А.Д. Разработка методов абсолютного учета численности пастбищных иксодовых клещей открытых ландшафтов. Сообщение 3. Учет голодных личинок и нимф Dermacentor nuttalli Olen., 1929 в степных районах Забайкалья. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1991. № 3. С. 45 — 49.

13. Вахрушева З.П., Коренберг Э.И., Горчаков А.Д., Пчелкин А.П. Разработка методов абсолютного учета численности пастбищных иксодовых клещей открытых ландшафтов. Сообщение 1. Абсолютный учет численности взрослых голодных Dermacentor nuttalli Olen., 1929 в степной зоне Забайкалья. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1988. № 1. С. 33 — 39.

14. Ващенок В.С. Блохи (Siphonaptera) — переносчики возбудителей болезней человека и животных. Ленинград. 1988. 161 с.

15. Волынкина А.С. Котенев Е.С., Малецкая О.В., Скударева О.Н. и др. Эпидемиологическая ситуация по Крымской геморрагической лихорадке в Российской Федерации в 2019 г. и прогноз на 2020 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2020. № 1. С. 14 — 20.

16. Высоцкая С.О. Краткий определитель блох. Москва. — Ленинград. Издательство академии наук СССР. 1956. 100 с.

17. Голуб В.Б., Цуриков М.Н., Прокин А.А. Коллекции насекомых: сбор, обработка и хранение материала. Москва. Товарищество научных изданий КМК. 2012. 339 с.

18. Горно-Алтайский природный очаг чумы. Ретроспективный анализ, эпизоотологический мониторинг, современное состояние. Под редакцией С.В. Балахонова, В.М. Корзуна. Новосибирск. Наука-Центр. 2014. 272 с.

19. Горностаева Р.М. К ревизии комаров подрода Aedes (Diptera, Culicidae) Палеарктики Паразитология. 2005. № 6. С. 457 — 507.

20. Гуцевич А.В., Глухова В.М. Методы сбора и изучения кровососущих мокрецов. Ленинград. Наука. 1970. 103 с.

21. Детинова Т.С. Методы установления возрастного состава двукрылых насекомых, имеющих медицинское значение. Всемирная организация здравоохранения. Женева. 1962. 220 с.

22. Заречная С.Н. Избранные лекции по медицинской энтомологии. Москва. Национальная организация дезинфекционистов. 2010. 168 с.

23. Зинич Л.С., Коваленко И.С., Пидченко Н.Н., Тихонов С.Н. Результаты изучения природных очагов туляремии в Крыму. Здоровье населения и среда обитания. 2019. № 7. С. 50 — 55.

24. Инфекционные болезни: национальное руководство. Под редакцией Н.Д. Ющука, Ю.Я. Венгерова. 3-е издание, переработанное и дополненное. Москва. ГЭОТАР-Медиа. 2023. 1104 с.

25. Иофф И.Г., Скалон О.И. Определитель блох Восточной Сибири, Дальнего Востока и прилегающих районов. Москва. Медгиз. 1954. 276 с.

26. Кассирский И.А. Клиника и терапия малярии. Москва. Медгиз. 1946. 320 с.

27. Ковалевский Ю.В., Коренберг Э.И. Оценка абсолютной численности взрослых Ixodes persulcatus Sch. по результатам учета на флаго-час (Ixodidae). Паразитология. 2002. № 1. С. 21 — 25.

28. Ковалевский Ю.В., Коренберг Э.И. Оценка возможности применения пропашника для учета иксодовых клещей (Ixodidae). Паразитология. 1980. № 1. С. 12 — 17.

29. Колосов Ю.М. Малярийный комар (популярный очерк). Свердловск. 1927. 27 с.

30. Коренберг Э.И., Ковалевский Ю.В. Общая схема циркуляции вируса клещевого энцефалита. Зоологический журнал. 1977. № 10. С. 1467 — 1478.

31. Коренберг Э.И. Биохорологическая структура вида (на примере таежного клеща). Москва. Наука. 1979. 172 с.

32. Коренберг Э.И. Пути совершенствования эпидемиологического надзора за природноочаговыми инфекциями. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2016. № 6. С. 18 — 29.

33. Коренберг Э.И. Сущность и значение понятия «лоймопотенциал». Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2010. № 4. С. 22 — 24.

34. Коренберг Э.И. Юбилей теории академика Е.Н. Павловского о природной очаговости болезней (1939 — 2014 гг.). Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2015. № 1. С. 9 — 16.

35. Коренберг Э.И., Барановский П.М., Винокурова Н.С. Оценка результатов однократного учета клещей Ixodes persulcatus на площадках и некоторые вопросы экологии этого вида (Ixodidae). Паразитология. 1981. № 5. 451 — 458.

36. Коренберг Э.И., Ковалевский Ю.В. Абсолютный учет взрослых голодных клещей Ixodes persulcatus методом пробных площадок (Ixodidae). Паразитология. 1982. № 3. С. 224 — 229.

37. Коренберг Э.И., Левин М.Л. К методике изучения особенностей размещения предимагинальных фаз таежного клеща (Ixodes persulcatus). Зоологический журнал. 1983. № 3. С. 431 — 436.

38. Коренберг Э.И., Помелова В.Г., Осин Н.С. Природноочаговые инфекции, передающиеся иксодовыми клещами. Москва. 2013. 463 с.

39. Коренберг Э.И., Сироткин М.Б., Ковалевский Ю.В. Общая схема циркуляции возбудителей иксодовых клещевых боррелиозов в природных очагах Евразии. Зоологический журнал. 2016. № 3. С. 283 — 299.

40. Корзиков В.А. Ловушка для сбора комаров в помещениях. Дезинфекционное дело. 2017. № 2. С. 38 — 41.

41. Кутырев В.В. Актуальные проблемы особо опасных инфекционных болезней и санитарная охрана территорий в современных условиях. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2008. № 1. С. 17 — 23.

42. Лабораторный практикум медицинской паразитологии. Под редакцией Е.Н. Павловского. Медгиз. Ленинградское отделение. 1959. 488 с.

43. Лебедева Н.Н., Коренберг Э.И. О соотношении показателей обилия имаго Ixodes persulcatus P. Sch. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1974. № 4. С. 407 — 410.

44. Левин М.Л. Оценка результатов однократного учета нимф таежного клеща (Ixodes persulcatus P. Sch.) на площадках. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 1988. № 2. С. 75 — 78.

45. Левин М.Л., Коренберг Э.И., Ковалевский Ю.В. О возможности сбора голодных личинок и нимф таежного клеща (Ixodes persulcatus) с растительности. Зоологический журнал. 1981. № 12. С. 1861 — 1865.

46. Левин М.Л., Коренберг Э.И., Ковалевский Ю.В. Результативность учета преимагинальных фаз таежного клеща (Ixodes persulcatus), основанного на их сборе с мелких млекопитающих. Зоологический журнал. 1988. № 5. С. 665 — 677.

47. Львов Д.К., Дерябин П.Г., Аристова В.А., Бутенко А.М. и др. Атлас распространения возбудителей природно-очаговых вирусных инфекций на территории Российской Федерации. Москва. Издательство НИЦ ТМГ МЗ РФ. 2001. 192 с.

48. Львов Д.К., Лебедев А.Д. Экология арбовирусов. Москва. «Медицина». 1974. 184 с.

49. Малецкая О.В., Прислегина Д.А., Таран Т.В., Платонов А.Е. и др. Природно-очаговые вирусные лихорадки на юге европейской части России. Лихорадка Западного Нила. Проблемы особо опасных инфекций. 2020. № 1. С. 109 — 114.

50. Матросов А.Н., Щучинов Л.В., Ермаков Н.М., Захаров К.С. и др. Эффективность дезинсекции и дератизации в Горно-Алтайском высокогорном природном очаге чумы. Проблемы особо опасных инфекций. 2018. № 3. С. 66 — 72.

51. Методы изучения природных очагов болезней человека. Под редакцией П.А. Петрищевой, Н.Г. Олсуфьева. Москва. Медицина. 1964. 208 с.

52. Никитин А.Я., Андаев Е.И., Яцменко Е.В., Трушина Ю.Н. и др. Эпидемиологическая ситуация по клещевому вирусному энцефалиту в Российской Федерации в 2019 г. и прогноз на 2020 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2020. № 1. С. 33 — 42.

53. Окулова Н.М. Биологические взаимосвязи в лесных экосистемах (на примере природных очагов клещевого энцефалита). Москва. Наука. 1986. 248 с.

54. Олсуфьев Н.Г. К экологии лугового клеща Dermacentor pictus Herm., происхождении его очагов и путях их ликвидации в средней полосе Европейской части РСФСР. Вопросы краевой, общей и экспериментальной паразитологии и медицинской зоологии. Том 8. Москва. Издательство АМН СССР. 1958. С. 49 — 98.

55. Переносчики возбудителей природноочаговых болезней. Под редакцией П.А. Петрищевой. Москва. Государственное издательство медицинской литературы. 1962. 343 с.

56. Покровский В.И., Онищенко Г.Г., Черкасский Б.Л. Эволюция инфекционных болезней в России в XX веке. М.: Медицина, 2003. 664 с.

57. Попов Н.В., Ерошенко Г.А., Карнаухов И.Г., Кузнецов А.А. и др. Эпидемиологическая и эпизоотическая обстановка по чуме в Российской Федерации и прогноз ее развития на 2020 — 2025 гг. Проблемы особо опасных инфекций. 2020. № 1. С. 43 — 50.

58. Попова А.Ю., Мефодьев В.В., Степанова Т.Ф., Ежлова Е.Б., Марченко А.Н. Эпидемиология и профилактика туляремии на эндемичных территориях России. Тюмень. Издательский центр ТГУ. 2016. 332 с.

59. Природная очаговость болезней: исследования института Гамалеи РАМН. Под редакцией Э.И. Коренберга. Москва. Русаки. 2003. 255 с.

60. Простаков Н.И., Голуб В.Б. Биоэкология. Воронеж. Издательский дом ВГУ. 2014. 438 с.

61. Путинцева Е.В., Алексейчик И.О., Чеснокова С.Н., Удовиченко С.К. и др. Результаты мониторинга возбудителя лихорадки Западного Нила в Российской Федерации в 2019 г. и прогноз развития эпидемической ситуации на 2020 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2020. № 1. С. 51 — 60.

62. Романенко В.Н. Медицинская арахноэнтомология. Томск. Издательский Дом Томского государственного университета. 2015. 284 с.

63. Рудакова С.А., Пеньевская Н.А., Блох А.И., Савельев Д.А. и др. Эпидемиологическая ситуация по иксодовым клещевым боррелиозам в Российской Федерации в 2019 г. в сравнении с периодом 2002 — 2018 гг. Проблемы особо опасных инфекций. 2020. № 3 С. 131 — 138.

64. Рудакова С.А., Теслова О.Е., Муталинова Н.Е., Кузьменко Ю.Ф. и др. Молекулярно-генетический надзор на основе индикации и идентификации боррелий в иксодовых клещах. Фундаментальная и клиническая медицина. 2023. № 1. С. 63 — 70.

65. Руководство по вирусологии. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. Под редакцией Д.К. Львова. Москва. ООО «Издательство „Медицинское информационное агентство“. 2013. 1200 с.»

66. Руководство по эпидемиологии инфекционных болезней: Руководство. Н.И. Брико, Г.Г. Онищенко, В.И. Покровский, в 2 т. Т. 1. Москва. ООО «Издательство „Медицинское информационное агентство“. 2019. 880 с.»

67. Руководство по эпидемиологии инфекционных болезней: Руководство. Н.И. Брико, Г.Г. Онищенко, В.И. Покровский, в 2 т. Т. 2. Москва. ООО «Издательство „Медицинское информационное агентство“. 2019. 768 с.»

68. Руководство по медицинской микробиологии. Частная медицинская микробиология и этиологическая диагностика инфекций. Книга II. Под редакцией Лабинской А.С., Костюковой Н.Н., Ивановой С.М. Москва. Издательство БИНОМ. 2022. 1152 с.

69. Салман Э.Р., Коренберг Э.И., Асатрян М.Н. Моделирование эпизоотического процесса облигатно-трансмиссивных инфекций, передающихся иксодовыми клещами. Успехи современной биологии. 2018. № 6. С. 583 — 601.

70. Сироткин М.Б., Коренберг Э.И. Влияние абиотических факторов на возбудителей инфекций, экологически связанных с иксодовыми клещами (на примере боррелий и вируса энцефалита). Успехи современной биологии. 2019. № 2. С. 126 — 146.

71. Сироткин М.Б., Коренберг Э.И. Влияние абиотических факторов на разные этапы развития таежного (Ixodes persulcatus) и европейского лесного (Ixodes ricinus) клещей. Зоологический журнал. 2018. № 4. С. 379 — 396.

72. Словарь-справочник энтомолога. Составители: Ю.А. Захваткин, В.В. Исаичев. Москва. Книжный дом «ЛИБРОКОМ». 2011. 368 с.

73. Таежный клещ Ixodes persulcatus Schulze (Acarina, Ixodidae): морфология, систематика, экология, медицинское значение. Под редакцией Н.А. Филипповой. Ленинград. Наука. 1985. 416 с.

74. Тарасов В.В. Медицинская энтомология. Москва. МГУ. 1996. 352 с.

75. Тарасов М.А. Эколого-эпизоотологический мониторинг в очагах опасных зоонозных инфекционных болезней. Саратов. Изд-во СГУ. 2016. 356 с.

76. Таратутина М.Н., Зубарева О.В., Ромасова Е.И., Мельникова Г.Ф. К вопросу борьбы с кровососущими двукрылыми при подготовке и проведении массового мероприятия в г. Волгограде. Здоровье населения и среда обитания. 2023. № 1. С. 60 — 66.

77. Транквилевский Д.В., Царенко В.А., Жуков В.И. Современное состояние эпизоотологического мониторинга за природными очагами инфекций в Российской Федерации. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2016. № 2. С. 19 — 24.

78. Трансграничный Сайлюгемский природный очаг чумы. Под редакцией С.В. Балахонова, В.М. Корзуна. Новосибирск. Наука. 2022. 248 с.

79. Тувинский природный очаг чумы. Под редакцией С.В. Балахонова, Д.Б. Вержуцкого, Иркутск. Изд-во ИГУ. 2019. 286 с.

80. Федоров Д.С., Леонович С.А. Анализ находок и паразито-хозяинные связи иксодового клеща Ixodes trianguliceps Birula, 1895 (Ixodidae, Ixodinae) на северо-западе России и в соседних европейских странах. Паразитология. 2021. № 3. С. 226 — 237.

81. Филиппова Н.А. Иксодовые клещи подсем. Ambliomminae. Фауна России и сопредельных стран. Паукообразные. Том 4. Вып. 5. Санкт-Петербург. Наука. 1997. 436 с.

82. Филиппова Н.А. Фауна СССР. Паукообразные. Аргасовые клещи (Argasidae). 1966. Том IV. Вып. 3. 256 с.

83. Филиппова Н.А. Фауна СССР. Паукообразные: Том 4. Вып. 4. Иксодовые клещи подсемейства Ixodinae. Москва. Книга по требованию. 2013. 412 с.

84. Халин А.В., Айбулатов С.В., Пржиборо А.А. Методы сбора двукрылых насекомых комплекса гнуса (Diptera: Culicidae, Simuliidae, Ceratopogonidae, Tabanidae). Паразитология. 2021. № 2. С. 134 — 173.

85. Халин А.В., Горностаева Р.М. К таксономическому составу кровососущих комаров (Diptera: Culicidae) мировой фауны и фауны России (критический обзор). Паразитология. 2008. № 5. С. 360 — 381.

86. Цапко Н.В. Список видов иксодовых клещей (Acari, Ixodidae) России. Паразитология. 2020. № 4. С. 341 — 352.

87. Шашина Н.И., Германт О.М. Современные методы и средства индивидуальной защиты людей от нападения иксодовых клещей. В книге: Современные вопросы дезинфектологии. Москва. ФБУН «НИИДезинфектологии» Роспотребнадзора. 2018. С. 295 — 308.

88. Шашина Н.И., Успенский И.В. Неспецифическая профилактика клещевого энцефалита. В книге: Клещевой энцефалит в XXI веке. Москва. Наука. 2021. С. 455 — 465.

89. Шкарин В.В., Благонравова А.С. Термины и определения в эпидемиологии. Словарь. 2-е издание, исправленное и дополненное. Нижний Новгород. Издательство Нижегородской государственной медицинской академии. 2015. 320 с.

90. Шпынов С.Н., Рудаков Н.В., Зеликман С.Ю., Транквилевский Д.В. Анализ геномов Coxiella burnetii при изучении эпидемии лихорадки Ку. Фундаментальная и клиническая медицина. 2022. Т. 7. № 2. С. 94 — 101.

91. Якименко В.В., Малькова М.Г. Иксодовые клещи: полевые исследования и дифференциальная диагностика: методическое пособие по учету численности, сбору и определению иксодовых клещей в полевых условиях. Омск. ИЦ «Омский научный вестник». 2011. 56 с.

92. Якименко В.В., Малькова М.Г., Шпынов С.Н. Иксодовые клещи Западной Сибири: фауна, экология, основные методы исследования. Омск. ООО ИЦ «Омский научный вестник». 2013. 240 с.