Инструкция по организации и проведению эпидемиологического надзора за внутрибольничными инфекциями в акушерских стационарах

(вместе с Инструкциями «По организации и проведению комплекса санитарно-противоэпидемических мероприятий в акушерских стационарах», «По бактериологическому контролю качества проведения противоэпидемических мероприятий в акушерских стационарах», «По профилактике омфалитов и гнойно-воспалительных заболеваний кожных покровов у новорожденных детей с помощью препарата „Лифузоль“ („Статизоль“)», «По применению бифидумбактерина у новорожденных в родильных домах (отделениях)», «По применению бифидумбактерина у новорожденных в родильных домах (отделениях)», «По переводу заболевших новорожденных и недоношенных детей в соответствующие отделения детских больниц», «О показаниях к приему и переводу беременных, рожениц и родильниц в обсервационное отделение родильного дома (отделения)»)

(утв. Приказом Минздрава СССР от 28.12.1989 № 691)

ИНСТРУКЦИЯ ПО ОРГАНИЗАЦИИ И ПРОВЕДЕНИЮ ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКОГО НАДЗОРА ЗА ВНУТРИБОЛЬНИЧНЫМИ ИНФЕКЦИЯМИ В АКУШЕРСКИХ СТАЦИОНАРАХ

Эпидемиологический надзор — это система постоянных комплексных наблюдений за динамикой эпидемического процесса внутрибольничных инфекций (заболеваемость, носительство, летальность и др.), факторами, влияющими на их распространение, анализ и обобщение полученной информации с целью разработки рекомендаций и проведения профилактических и противоэпидемических мероприятий.

Общее руководство за организацией и осуществлением эпиднадзора возлагается на руководителей санитарно-эпидемиологической и акушерско-гинекологической служб республик, краев, областей, городов и районов.

Поскольку внутрибольничные инфекции новорожденных и родильниц развиваются и выявляются не только в акушерских стационарах, но и после выписки, и характеризуются многообразием клинических проявлений, в эпидемиологическом надзоре принимают участие различные учреждения здравоохранения: акушерские стационары, детские поликлиники и стационары, женские консультации, гинекологические больницы, хирургические кабинеты и отделения, прозектура и др.

В рамках эпидемиологического надзора осуществляется:

1. Оперативное слежение за заболеваемостью внутрибольничными инфекциями, которое проводится в соответствии с методическими указаниями Минздрава СССР № 28-6/34 от 02.09.87 г. по эпидемиологическому надзору за внутрибольничными инфекциями и № 1339-у от 28.12.88 г. «Об учете и регистрации внутрибольничных инфекций».

2. Слежение за циркулирующими в акушерском стационаре госпитальными штаммами микроорганизмов проводится на основании данных этиологической структуры внутрибольничных заболеваний, результатов исследования на носительство медицинского персонала, определения распространенности условно-патогенных микроорганизмов в воздухе и на объектах окружающей среды <*>.

---

<*> Санитарно-бактериологический контроль объектов окружающей среды акушерского стационара проводится специалистами санэпидслужбы при осуществлении выборочного государственного санитарного надзора (Инструкция о порядке осуществления текущего государственного санитарного надзора за ЛПУ от 03.03.88 г. № 4560).

Для расшифровки этиологии внутрибольничных инфекций необходимо микробиологическое исследование патологического материала (кровь, ликвор, гной, кал, отделяемое цервикального канала, грудное молоко и др.) от больного с подозрением на внутрибольничное заболевание. В случае летального исхода микробиологическому исследованию подвергается секционный материал.

Бактериологическое обследование медицинского персонала акушерского стационара на наличие золотистого стафилококка проводится 2 раза в год при проведении периодических медицинских обследований и по эпидпоказаниям. Исследованию подлежит материал из передних отделов слизистой оболочки носа. Забор материала производится стерильным ватным тампоном, сухим или предварительно смоченным в физиологическом растворе (одним тампоном из обеих ноздрей). Тампоны доставляются в лабораторию в течение 2 часов с момента забора материала.

Обследованию подвергается медицинский персонал, имеющий непосредственное общение с новорожденными, беременными, роженицами и родильницами. Бактерионосители золотистого стафилококка подвергаются санации <*> (таблица 1). Бактериологическое исследование осуществляется бактериологическими лабораториями СЭС. Результаты исследования передаются в родильный дом, где они заносятся в личную санитарную книжку медицинского работника.

---

<*> Санации в плановом порядке подлежат постоянные и резидентные носители золотистого стафилококка. Ежедневная санация медицинского персонала запрещается.

3. В акушерских стационарах проводится обязательное обследование всех беременных, рожениц и родильниц (одновременно с взятием крови на реакцию Вассермана) на носительство вируса иммунодефицита человека в целях своевременного выявления и принятия неотложных мер по предупреждению распространения заболевания.

Таблица 1

СХЕМА САНАЦИИ НОСИТЕЛЕЙ ЗОЛОТИСТОГО СТАФИЛОКОККА:

NN пп	Препарат	Способы применения
1.	Хлорофиллипт (ХФ) 2% масляный раствор	Ватные турунды, смоченные препаратом ХФ, вводят в каждый носовой ход на 20 мин. 3 раза в сутки в течение 5 дней. Допустимо закапывание ХФ по 0,25 мл в каждый носовой ход по той же схеме
2.	Стафилококковый бактериофаг (БФ)	Ватные турунды, смоченные жидким БФ, вводят в каждый носовой ход на 15 мин. 1 раз в день в течение 5 дней. БФ на мазевой основе смазывают передние отделы носа 1 раз в день в течение 5 дней
3.	Фурацилин (Ф) раствор 1:5000	Ватные турунды, смоченные Ф, вводят в каждый носовой ход на 20 мин. 3 раза в день в течение 5 дней. Допустимо закапывание Ф в нос

Результаты бактериологических исследований, выполненных лабораторией больницы, также передаются в родильный дом и в СЭС.

Воздух исследуется на общую бактериальную обсемененность и наличие золотистого стафилококка; другие эпидемиологически значимые объекты — на наличие золотистого стафилококка, кишечной палочки и других условно патогенных микроорганизмов.

При нарушении санитарно-гигиенического и противоэпидемического режима акушерского стационара (выделение условно патогенных агентов со стерильного материала, из жидких лекарственных форм, нарушение работы ЦСО, перебои водоснабжения, а также при аварийных ситуациях и др.) главный врач в экстренном порядке должен принять меры и информировать СЭС.

Вся полученная информация используется для проведения ретроспективного и оперативного (текущего) анализа, который проводится эпидемиологом СЭС.

Ретроспективный анализ предусматривает изучение:

• годового помесячного уровня заболеваемости с учетом заболеваний, возникших во время пребывания в акушерском стационаре и после выписки из него. При анализе многолетней динамики заболеваемости определяются ее уровни, тенденции (роста, снижения, стабилизации), темпы роста или снижения.

Показатель заболеваемости внутрибольничными инфекциями исчисляется на 1000 родившихся живыми (для новорожденных детей) и 1000 родов (для родильниц);

• анализа летальности и смертности новорожденных и родильниц от внутрибольничных инфекций;
• удельного веса групповых заболеваний по месяцам и за год;
• распределение заболевших по клиническим формам заболеваний с определением их удельного веса и соотношения легких и тяжелых форм заболеваний, а также удельного веса детей с наличием сочетанных форм заболеваний (конъюнктивит + пиодермия и др.);
• распределения заболевших по срокам клинического проявления.

В текущем эпидемиологическом анализе следует выделить эпидемиологическое исследование с целью предвидения возможного ухудшения эпидемиологической обстановки в стационаре для проведения соответствующих мероприятий по профилактике внутрибольничных заболеваний.

Предвестниками эпидемиологического неблагополучия в родильном доме являются:

• появление среди новорожденных детей заболеваний одной клинической нозоформы;
• регистрация случая заболевания с тяжелым клиническим течением (сепсис, абсцесс, менингит и др.); при этом необходимо принимать во внимание не только дату заболевания, но и дату рождения новорожденного (родов), что позволит выявить эпидемиологическую связь заболевших по времени и месту инфицирования в акушерском стационаре;
• увеличение числа заболеваний среди новорожденных в первые 5 дней после рождения;
• случаи гнойно-воспалительных и других инфекционных заболеваний среди родильниц, медицинского персонала;
• возрастание частоты обнаружения условно патогенных микроорганизмов на предметах окружающей среды в родильном зале, детских палатах, операционных (более 15% из числа взятых смывов);
• превышение допустимых уровней бактериальной обсемененности воздуха в помещениях акушерского стационара;
• появление среди циркулирующих в акушерском стационаре штаммов определенных видов грамотрицательных микроорганизмов (синегнойная палочка, клебсиелла, протей, энтеробактер и др.), а также золотистых стафилококков с маркерами госпитальных штаммов;
• наличие аварийных ситуаций (перебои в водоснабжении, работе автоклавов, дезкамер и др.);
• перегрузка родильного дома (увеличение более чем на 30% ежедневного числа родов по сравнению с нормативными показателями).

Групповыми заболеваниями следует считать возникновение внутрибольничных заболеваний у 3-х и более новорожденных или родильниц, связанных едиными источниками и факторами передачи инфекции во время единомоментного пребывания в акушерском стационаре.

ИНСТРУКЦИЯ ПО ОРГАНИЗАЦИИ И ПРОВЕДЕНИЮ КОМПЛЕКСА САНИТАРНО-ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКИХ МЕРОПРИЯТИЙ В АКУШЕРСКИХ СТАЦИОНАРАХ

1. Организационные мероприятия

1.1. Ответственность за организацию и проведение комплекса санитарно-противоэпидемических мероприятий по борьбе с внутрибольничными инфекциями возлагается на главного врача родильного дома (отделения).

---

<*> Оснащение родильного дома, оборудование всех его структурных подразделений изложены в приказе Минздрава СССР № 55 от 09.01.86 г. «Об организации работы родильных домов (отделений)». При проведении санитарно-противоэпидемических мероприятий пользоваться настоящей инструкцией.

1.2. В акушерском стационаре создается комиссия, координирующая деятельность сотрудников учреждения по профилактике внутрибольничных инфекций во главе с главным врачом или заместителем главного врача по лечебной работе.

1.3. Непосредственно в отделениях организация конкретных санитарно-противоэпидемических мероприятий и контроль выполнения настоящей инструкции возлагается на заведующих отделениями и старших акушерок (сестер).

1.4. Заведующие отделениями проводят занятия с врачами, старшие акушерки (сестры) — со средним и младшим медицинским персоналом по изучению данной инструкции не реже 2-х раз в году, со сдачей зачета и фиксацией даты его в санитарной книжке сотрудника.

1.5. Лица, поступающие на работу в родильный дом, и в дальнейшем проходят полный медицинский осмотр в соответствии с приказом Минздрава СССР № 555 от 29.09.1989 г. «О совершенствовании системы медицинских осмотров трудящихся и водителей индивидуальных транспортных средств».

1.6. Весь работающий персонал должен быть взят на диспансерное наблюдение для своевременного выявления и лечения хронических воспалительных заболеваний носоглотки, кожи, изменения кариозных зубов. Медицинский персонал с воспалительными или гнойными процессами, недомоганием, лихорадкой не имеет права приступать к работе.

1.7. Персонал ежедневно перед началом работы надевает чистую санодежду.

1.8. Персонал необходимо обеспечить индивидуальными двухсекционными шкафчиками для хранения собственной одежды и обуви, платья для работы, сменной обуви.

1.9. В родильном зале медперсонал работает в масках, в отделениях новорожденных маски используют при проведении инвазивных манипуляций (операция заменного переливания крови, пункция магистральных сосудов, люмбальная пункция и т.д.). Ношение масок во всех отделениях обязательно в период эпидемического неблагополучия.

1.10. Акушерский стационар не реже 2 раз в год должен закрываться для проведения плановой дезинфекции, в том числе 1 раз для косметического ремонта помещений. Поэтажное закрытие стационара категорически запрещается. После косметического ремонта и дезинфекции обязателен бактериологический контроль.

1.11. Согласно инструктивному письму Минздрава СССР от 10.04.89 г. № 01-14/4-24 «О посещении родственниками акушерско-гинекологических и детских стационаров» там, где это возможно, разрешается посещение беременных, рожениц, родильниц и новорожденных детей. Порядок посещения акушерских стационаров устанавливается местными органами здравоохранения.

1.12. При наличии условий (индивидуальные родильные залы), желания супружеской пары и с учетом состояния здоровья роженицы и ее мужа разрешается присутствие мужа при родах. Перечень таких стационаров утверждается местными органами здравоохранения.

2. Правила содержания приемно-смотровых помещений

2.1. Один раз в сутки в помещении приемно-смотрового отделения проводят уборку с использованием дезинфицирующих средств (таблица 1) и дважды — влажную уборку с применением моющих средств (50 г на 10 л воды), указанных в примечании к таблице 1.

Обработку начинают с комнаты фильтра, затем выполняют уборку смотровой, душевой, в последнюю очередь — санитарного узла.

Для выполнения влажной уборки или дезинфекции необходимо иметь две емкости, которые маркируют «1» и «2». Емкость «1» наполняют моющим или дезинфицирующим раствором; емкость «2» — чистой водопроводной водой. Уборочную ветошь смачивают в растворе емкости «1» и тщательно протирают участок (2 — 3 кв. м) обрабатываемой поверхности. Затем ветошь прополаскивают в емкости «2», отжимают, вновь пропитывают в емкости «1» и моют новые участки поверхности. Воду в емкости «2» следует менять по мере загрязнения, а в емкости «1» — после уборки 60 кв. м поверхности.

2.2. После влажной уборки включают бактерицидные лампы на 30 минут. После дезинфекции, выполненной аэрозолем дезинфицирующего средства, обязательно включают бактерицидные лампы на 60 минут, затем поверхности протирают смоченной в водопроводной воде ветошью и вновь включают бактерицидные лампы на 30 минут, проветривают помещение.

Для бактерицидного облучения помещений используются потолочные облучатели ОБП-300 (из расчета 1 облучатель на 60 куб. м) или настенные БОН-150 (из расчета 1 облучатель на 30 куб. м).

Включение облучателей прямого и отраженного воздействия осуществляется раздельно. Выключатели светильников отраженного действия располагают в помещении, прямого — вне помещения. Возможно использование облучателя бактериологического передвижного ОБП-450 с шестью открытыми ультрафиолетовыми лампами <*> ДБ-30-1 (в отсутствии людей). Включение на 20 минут достаточно для снижения бактериальной обсемененности воздуха помещения объемом 100 куб. м на 90%.

---

<*> Срок службы ультрафиолетовой лампы типа ДБ-15 и ДБ-60 составляет 3000, ДБ-30-1 — 5000 часов, поэтому в каждом отделении необходимо регистрировать продолжительность их работы.

2.3. Стены и пол душевой после приема каждой роженицы обмывают горячей водой из шланга; резиновый коврик и унитаз обеззараживают (таблица 1).

2.4. Перед осмотром роженицы и после него врач и акушерка моют руки туалетным мылом, дважды их намыливая, после ополаскивания водой руки вытирают стерильной салфеткой.

2.5. После манипуляций, ведущих к загрязнению рук, или осмотра рожениц, поступающих в обсервационное отделение, руки обеззараживают стерильным тампоном, смоченным одним из следующих дезинфицирующих растворов:

• 0,5% раствор хлоргексидина биглюконата в 70 град. этиловом спирте или 0,5% водный его раствор;
• 1% (по активному йоду) раствор йодопирона;
• 0,5% раствора хлорамина.

2.6. После приема каждой роженицы клеенку, кушетку, стул, фартук акушерки протирают ветошью, смоченной в дезинфицирующем растворе, или орошают с помощью малогабаритного ручного опрыскивателя (типа «Росинка») из расчета 150 мл раствора на 1 кв. м.

2.7. Бумажные прокладки на унитаз после использования уничтожают, клеенчатые — обеззараживают, промывают и высушивают.

2.8. Использованное при приеме рожениц белье собирается в бак с крышкой, в который вложен полиэтиленовый или хлопчатобумажный мешок, и транспортируется в комнату сбора грязного белья.

2.9. Использованный при осмотре и обработке женщин инструментарий подвергают обеззараживанию одним из дезинфицирующих растворов (таблица 1).

2.10. Уборочный инвентарь после обработки помещения обеззараживают, после чего ветошь прополаскивают и сушат.

2.11. Собственные вещи роженицы возвращают родственникам. В случае необходимости вещи женщины хранятся в специальной комнате родильного дома (отделения) в полиэтиленовых мешках, уличная обувь — в отдельных мешках. Женщинам, поступающим в родильный дом, разрешается пользоваться собственной новой комнатной нематерчатой обувью (тапочки) и предметами личной гигиены.

3. Правила содержания родового отделения

В предродовых палатах:

3.1 Строго соблюдают цикличность заполнения палат.

3.2. Влажную уборку проводят не реже 2 раз в день с использованием моющих растворов (примечание к таблице 1), один раз в сутки уборку проводят с использованием дезинфицирующего средства способом «двух ведер». После окончания уборки включают бактерицидные лампы отраженного действия на 30 минут с последующим проветриванием палаты. Лампы прямого действия включают только в отсутствии рожениц.

3.3 Не менее 3-х раз в сутки осуществляют проветривание палат.

3.4. Каждой роженице выделяют индивидуальное судно, которое стоит на подставке, вмонтированной в кровать, или на скамеечке, окрашенной масляной краской или с гигиеническим покрытием. Судно, кровать и скамеечка имеют единый маркировочный номер. Судно после каждого использования промывают проточной водой, а после перевода роженицы в родильный зал обеззараживают.

3.5. После перевода роженицы в родильный зал ее постельное белье собирают в закрывающийся крышкой бак с вложенным в него клеенчатым, полиэтиленовым или хлопчатобумажным мешком, который сразу выносят в подсобное помещение.

В родильном зале:

3.6. При наличии одного родзала прием родов осуществляется поочередно на разных кроватях. После окончания родов и перевода родильниц в послеродовое отделение кровать для рожениц, матрац и подушка, обшитые клеенкой, другое использованное оборудование протирают ветошью, смоченной в дезинфицирующем растворе.

Уборку с использованием дезинфицирующих средств (обеззараживание пола, кранов и раковин, столов, кроватей для рожениц и т.п.) проводят 1 раз в сутки при отсутствии родов. Затем на 30 мин. включают бактерицидные лампы с последующим проветриванием помещения в течение 20 минут.

Не реже 1 раза в 3 дня проводят уборку по типу заключительной дезинфекции, обеззараживая все помещения и объекты в нем. После уборки на 60 мин. включают бактерицидные лампы и затем проветривают помещение. Дату проведения такой дезинфекции фиксируют в журнале, который хранится у старшей акушерки отделения.

3.7. При наличии двух родзалов прием родов осуществляется в каждом из них в течение суток поочередно. В свободном проводят уборку всего помещения с использованием дезинфицирующего средства (таблица 1). После уборки включают бактерицидные лампы на 60 мин., отмывают поверхности и вновь на 30 мин. включают бактерицидные лампы.

3.8. В боксированном родблоке каждые роды проводят в отдельном боксе. Прием родов проводят во всех боксах поочередно. После родов проводят уборку по типу заключительной дезинфекции и последующую обработку как в п. 3.7.

3.9. Акушерка перед приемом родов моет руки, как для хирургической операции, одним из способов, указанных в разделе II настоящей инструкции, надевает стерильный халат, шапочку, четырехслойную маску, перчатки.

3.10. Новорожденного принимают в обеззараженный, согретый и покрытый стерильной пеленкой лоток. Для первичной обработки новорожденного используют стерильный индивидуальный комплект.

Перед обработкой новорожденного акушерка моет руки, дважды намыливая их мылом. После пеленания, взвешивания новорожденного пеленальный стол и весы обеззараживаются.

3.11. После родов лотки для приема новорожденных и последа промывают горячей водой, обеззараживают, высушивают и складывают внутренней стороной друг к другу. Наркозные маски, баллоны для отсасывания слизи у новорожденных, грелки, пузыри для льда и другие предметы ухода промывают горячей водой с мылом и подвергают обеззараживанию.

3.12. Плацентарную кровь и пузыри со льдом хранят раздельно в специальных холодильниках, последы — в холодильных камерах.

3.13. Белье, использованное в процессе приема родов, собирают в бак с вложенным в него клеенчатым мешком; перевязочный материал сбрасывают в таз, завернутый в стерильную пеленку или клеенку; таз дезинфицируют и меняют после каждых родов.

3.14. В родовом отделении должна быть маркированная каталка для перевозки рожениц и родильниц. После каждого использования каталку протирают ветошью, смоченной в дезинфицирующем растворе.

3.15. Уборку вспомогательных помещений проводят не реже 1 раза в день с использованием дезинфицирующего раствора. 1 раз в неделю в этих помещениях проводят уборку по типу заключительной дезинфекции.

4. Правила содержания послеродового физиологического отделения

4.1. Палаты послеродового отделения заполняют циклично в соответствии с палатами (боксами) детского отделения в течение не более 3 суток.

4.2 За каждой родильницей закрепляют кровать, индивидуальное судно.

4.3. Очередную смену постельного и нательного белья родильницам производят перед влажной уборкой помещения.

4.4. Использованное белье собирают в бак с вложенным клеенчатым или полиэтиленовым мешком непосредственно у постели родильницы. Бак закрывают крышкой.

4.5. Ежедневно после третьего кормления новорожденных в палатах проводят уборку с использованием дезинфицирующих средств (таблица 1).

Утром и вечером в палатах проводят влажную уборку с использованием моющего средства. После уборки или дезинфекции палаты включают бактерицидные лампы на 30 минут, проветривают помещение.

4.6. Персонал, работающий в послеродовом отделении, после проведения любых манипуляций моет руки туалетным мылом, дважды намыливая их, и вытирает индивидуальным полотенцем. При необходимости медицинский персонал обрабатывает руки с использованием дезинфицирующих растворов (п. 2.5).

4.7. При переводе в обсервационное отделение, а также после выписки родильниц в освободившемся помещении проводят уборку по типу заключительной дезинфекции; постельные принадлежности подвергают камерной дезинфекции, в палате проводят обеззараживание всех объектов, протирая или орошая их дезинфицирующим раствором. После проведения уборки на 60 минут включают ультрафиолетовые лампы, а затем протирают все объекты смоченной в водопроводной воде ветошью и повторно включают на 30 мин. бактерицидные лампы, проветривают помещение.

5. Правила содержания отделения новорожденных

5.1. Палаты новорожденных заполняют строго циклически в течение не более 3 суток. Детские кроватки в палатах следует располагать на расстоянии не менее 0,5 м друг от друга.

5.2. В палате не реже 3 раз в сутки проводят влажную уборку помещения: 1 раз в сутки (после третьего кормления) с использованием дезинфицирующего средства; 2 раза (утром и вечером) — моющего раствора (п. 2.1). После уборки включают на 30 минут бактерицидные лампы и проветривают помещение.

5.3. Проветривание и облучение палат открытыми бактерицидными лампами проводят в отсутствие детей (во время их кормления). В присутствии детей можно использовать только экранированные бактерицидные лампы.

5.4. В течение всего периода пребывания детей в родильном доме при уходе за новорожденными используют только стерильное белье (пеленки, распашонки, кофточки и т.д.).

5.5. Использованные пеленки собирают в клеенчатый или полиэтиленовый мешок, вложенный в бак с закрывающейся крышкой. После окончания пеленания всех детей мешки с использованным бельем переносят в комнату сбора и хранения грязного белья. Бак протирают ветошью, смоченной дезинфицирующим раствором.

5.6. Баллончики, катетеры, газоотводные трубки, клизмы после каждого использования собирают в отдельные емкости и подвергают дезинфекции (таблица 1). Обеззараженные предметы ухода за новорожденными хранят в отдельной маркированной сухой стерильной таре.

5.7. Глазные пипетки, шпатели, другие инструменты подлежат стерилизации. При проведении манипуляции используют стерильные ватные тампоны, которые хранят в стерилизационной коробке, в отдельных укладках (по 20 — 25 шт.). Неиспользованные из укладки тампоны в стерилизационную коробку не возвращаются, они подлежат повторной стерилизации.

5.8. Стерильный пинцет (корнцанг), используемый для забора обеззараженных изделий медицинского назначения, во время каждого пеленания хранят в емкости с 0,5% раствором хлорамина или 1% раствором хлоргексидина биглюконата; пинцет (корнцанг) и дезраствор меняют один раз в сутки.

5.9. После выписки детей постельные принадлежности подвергают камерной дезинфекции. В палате (боксе) поводят заключительную дезинфекцию. После дезинфекции включают на 60 минут бактерицидные лампы, протирают все поверхности смоченной в водопроводной воде ветошью и вновь включают бактерицидные лампы на 60 минут, проветривают помещение.

5.10. Выписная комната (комнаты) находится вне детского отделения. Она должна иметь выход непосредственно в холл акушерского стационара.

При одной выписной комнате сначала производят выписку детей из физиологического отделения, а затем на другом пеленальном столе — из обсервационного отделения. После выписки всех детей в выписной комнате проводят дезинфекцию.

6. Правила содержания обсервационного отделения

6.1. Уборку палат отделения проводят не реже трех раз в сутки, при этом 1 раз (утром) — с использованием 0,5% моющего раствора, а после третьего и пятого кормления — с использованием дезинфицирующих растворов и последующим бактерицидным облучением. Один раз в 7 дней с использованием дезсредства проводят уборку помещений и всех объектов палаты и стен на высоту 2 м. Уборку помещений проводят способом, указанным в п. 4.7. После выписки родильницы производят заключительную дезинфекцию.

6.2. При наличии в родильном доме (больнице) централизованной стерилизационной использованные шприцы, иглы, другой инструментарий подвергается дезинфекции в отделении, а затем передается в централизованную стерилизационную.

6.3. При переходе в обсервационное отделение медицинский персонал меняет халат, обувь (или надевает бахилы). Для этого у входа имеется вешалка с чистыми халатами, емкости с обувью или бахилами.

6.4. Сцеженное родильницами молоко для докармливания новорожденных не используется.

7. Правила хранения чистого белья, сбора использованного белья и обработки транспорта

7.1. Чистое белье хранят в полках шкафов или на стеллажах в специально выделенном помещении в виде небольших комплектов (по 30 — 50 штук), завернутыми в простыни. Здесь же, в специально выделенном месте, хранят постельные принадлежности, доставленные после дезинфекции.

7.2. Перед забором и выдачей чистого белья сестра-хозяйка моет руки туалетным мылом, надевает чистый халат, передник или фартук.

7.3. При приеме белья из стирки наружный мешок снимают и белье поступает во втором внутреннем мешке в помещение для хранения чистого белья. Здесь из второго мешка вынимают комплекты и раскладывают на полки. Снятые мешки передают в помещение для разборки грязного белья, где их хранят в специальном месте и используют для транспортировки белья в прачечную.

7.4. Использованное белье собирают и сортируют в специально выделенном вне отделения помещении.

7.5. Разборку, пересчет и комплектование использованного белья производят в специальном халате, резиновых перчатках, шапочке, отдельной обуви, в 4-слойной марлевой маске. Разобранное белье складывают в хлопчатобумажный мешок, который в свою очередь помещают во второй мешок, завязывают его и в таком виде перевозят в прачечную.

7.6. После передачи использованного белья в комнате проводят уборку с использованием дезинфицирующих средств, а затем включают на 30 мин. бактерицидную лампу. Санитарная одежда сдается в стирку. Персонал принимает гигиенический душ.

7.7. При отсутствии отдельной прачечной родильного дома белье стирают в больничной прачечной, но отдельно от белья других отделений. Для этого выделяют специальные емкости для замачивания белья, а также отдельное оборудование для его стирки.

7.8. При стирке в коммунальной прачечной белье родильного дома стирают в специально выделенный день. В этом случае необходимо предусмотреть, чтобы в процессе обработки поток чистого и грязного белья не перекрещивался.

7.9. Транспортировку чистого и использованного белья производят на разных, выделенных для этой цели машинах. При отсутствии такой возможности автотранспорт после перевозки использованного белья из родильного дома (отделения) подвергают дезинфекции, которую проводит персонал родильного дома.

7.10. Для обработки транспорта необходимо иметь ветошь, дезинфицирующие средства (взвешенные и упакованные порциями), опрыскиватель, тару для приготовления рабочего раствора, спецодежду, средства индивидуальной защиты.

8. Обработка обуви

После выписки женщины из родильного дома или перевода ее в другое отделение обувь (тапочки), выданную ей при поступлении, подвергают обязательной дезинфекции в дезинфекционной камере по пароформалиновому способу. В камере ее загружают свободно, не допуская соприкосновения со стенками камеры и между собой.

Варианты дезинфекции	Норма загрузки на 1 кв. м полезной площади камеры (пар обуви)	Температура дезинфекции, град. C	Расход формалина на 1 м камеры, мл	Экспозиция, мин.	Время обработки не считая загрузки и выгрузки
Обычный	35	55 — 57	120	90	135
Щадящий	18	49 — 51	300	240	285

При невозможности камерной обработки тапочки обеззараживают следующим образом. В носок закладывают вату или ветошь, смоченную 10% раствором формалина. Обувь помещают в клеенчатый или полиэтиленовый мешок, завязывают его и выдерживают в течение двух часов. Через 2 часа вынимают ветошь и мягкой щеткой или тампоном, смоченным в 10% растворе аммиака (нашатырного спирта), пропитывают внутреннюю поверхность обуви. Затем ее накрывают тканью и выдерживают в течение 30 минут. После этого тапочки проветривают до исчезновения запаха формалина. Обработанную обувь хранят в специально выделенном закрытом шкафу или тумбочке.

Обувь, принесенная из дома, выдается при выписке без обработки.

9. Обработка операционного поля, родовых путей рожениц, рук врачей-акушеров, акушерок, резиновых перчаток в ходе операции или родов

9.1. Обязательной является обработка рук всех лиц (акушерок, врачей, операционных сестер и т.д.), участвующих в приеме родов, а также при различных оперативных вмешательствах.

9.2. Для обработки рук используют различные препараты, разрешенные фармакологическим комитетом Министерства здравоохранения СССР: рецептура С-4, хлоргексидин биглюконат (гибитан), дегмин, дегмицид, йодопирон.

9.3. Перед обработкой рук рекомендуемыми кожными антисептиками руки моют проточной водой щеткой (рецептура С-4 без щетки) с мылом в течение 1 минуты. После этого руки насухо вытирают стерильной салфеткой.

9.4. Рецептуру С-4 (первомур) готовят из перекиси водорода и муравьиной кислоты (таблица 3), которые смешивают в стеклянной посуде, последнюю помещают в холодную воду на 1 — 1,5 часа и периодически встряхивают. Полученный раствор хранят не более суток в стеклянной посуде с герметической пробкой в прохладном месте. Раствор готовят и используют только в день операции. Для обработки рук используют 2,4% раствор рецептуры С-4.

Обработку рук проводят в течение 1 минуты, полностью погружая их в эмалированный таз с раствором рецептуры С-4, после чего вытирают стерильной салфеткой и надевают стерильные перчатки.

Кол-во рабочего раствора (л)	Количество ингредиентов
	30 — 33% перекись водорода (мл)	Муравьиная кислота		Вода (л)
		100% (мл)	85% (мл)
1	17,1	6,9	8,1	до 1
2	34,2	13,8	16,2	до 2
5	85,6	35,5	40,5	до 5
10	171,0	69,0	81,0	до 10

9.5. Хлоргексидин биглюконат (гибитан) выпускается в виде 20% раствора. Для получения раствора препарат разводят в 70% спирте в соотношении 1:40. Для обработки рук используют 0,5% спиртовой раствор препарата. Обработку рук производят ватным тампоном, смоченным 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина, в течение 5 минут.

9.6. Дегмин — твердое воскообразное вещество, хорошо растворимое в воде. Растворы дегмина слегка опалесцируют и устойчивы при хранении. Дегмицид — жидкость, содержит 30% дегмина.

Дегмин и дегмицид рекомендованы в 1% концентрации для обработки рук. Обработку рук проводят путем последовательного протирания двумя тампонами, обильно смоченными раствором препарата, по 3 минуты. При повторной обработке руки протирают одним тампоном 2 — 3 минуты.

9.7. Йодопирон — йодофор, представляет смесь комплекса поливинилпирролидона — йодо с йодидом калия. Содержит 6 — 8% активного йода. Для обработки рук используют 0,1% раствор (по активному йоду) йодопирона, которым в течение 4 минут моют руки стерильной салфеткой в эмалированном тазу, после чего руки вытирают стерильной марлевой салфеткой.

9.8. Для обработки кожи операционного поля и родовых путей рожениц применяют йоданат, йодопирон, хлоргексидин биглюконат (гибитан) или спиртовую настойку йода.

9.9. Рабочие растворы йодоната готовят путем разбавления исходного раствора в 5 раз кипяченой или стерильной водой. Кожу операционного поля, наружные половые органы и внутреннюю поверхность бедер обрабатывают двукратным смазыванием стерильными тампонами, смоченными раствором йодоната 1% концентрации по свободному йоду.

9.10. Для приготовления 1% водного раствора йодопирона 150 г порошка йодопирона (готовая расфасовка) растворяют в 800 мл дистиллированной воды. Во флакон емкостью 1 л к навеске порошка сначала прибавляют около 200 мл воды и встряхивают или перемешивают стеклянной палочкой для образования однородной вязкой массы, не содержащей комков сухого вещества. Полученную массу оставляют стоять на 30 минут (желательно время от времени ее встряхивать или перемешивать стеклянной палочкой). Затем добавляют оставшуюся часть расчетного количества воды (около 600 мл) и смесь встряхивают. После 10 — 15 минутной выдержки обычно раствор гомогенизируется и готов к употреблению. Процесс приготовления раствора можно значительно ускорить непрерывным встряхиванием смеси до полного растворения всех комочков. 1% водный раствор йодопирона представляет собой темно-коричневую жидкость без запаха.

Кожу операционного поля без предварительного мытья обрабатывают двукратным смазыванием с помощью стерильного марлевого тампона, смоченного в 1% растворе йодопирона (по активному йоду).

9.11. Хлоргексидин биглюконат (гибитан) применяют в виде спиртового раствора в 0,5% концентрации. Обработку кожных покровов проводят двукратным смазыванием стерильными тампонами, смоченными в растворе препарата.

9.12. Спиртовую настойку йода применяют 5%-концентрации. Методика обработки аналогична указанной в предыдущем пункте.

NN пп	Наименование обеззараживаемого объекта	Дезинфицирующий агент	Режим дезинфекции		Способ обработки
			концентрация раствора в %	время выдержки в мин.
1	2	3	4	5	6
1.	Инструменты из металла, применяемые для осмотра; изделия из стекла	Дистиллированная вода, 100 град. C		30	Кипячение
		Дистиллированная вода с 2% натрия двууглекислого (питьевая сода), 100 град. C		15	Кипячение
		Сухой горячий воздух 120 град. C +/- 4		45	В воздушных стерилизаторах
2.	Инструменты и узлы приборов и аппаратов из коррозионностойких металлов	Хлорамин Б	1,0	30	Полное погружение в раствор с последующим промыванием в воде
		Хлорамин Б с 0,5% моющего средства	0,75	30
		Формалин	3,0	30
		Дезоксон-1	0,1	15
		Дезоксон-1 с 0,5% моющего средства	0,05	15
		Хлоргексидин биглюконат	2,5	30
		Хлороцин	0,5		Двукратное протирание с интервалом 15 минут
		Сульфохлорантин	0,1
		Перекись водорода с 0,5% моющего средства Гипохлорит натрия <*>	3,0
3.	Изделия из полимерных материалов	Хлорамин Б	0,25	30	Погружение в раствор с последующим промыванием в воде
		Хлорамин Б с 0,5% моющего средства	0,25	15
		Хлоргексидин биглюконат	1,0	30
		Гипохлорит натрия	0,25	30
		Калиевая соль ДХЦК	0,05	30
		Сульфохлорантин	0,1	30
		Перекись водорода с 0,5% моющего средства	3,0	30
		Дезоксон-1	0,025	30
		Дезоксон-1 с 0,5% моющего средства	0,01	30
		Амфолан	0,5	30
4.	Изделия из пенополиуретана (поролон)	Дистиллированная вода, 100 град. C		5	Кипячение в емкости, закрытой крышкой
5.	Поверхности помещения, обстановки	Хлорамин Б с 0,5% моющего средства	0,75		Двукратное протирание с интервалом 15 минут или орошение с последующим временем воздействия в течение 60 минут
		Перекись водорода	3,0
		Перекись водорода с 0,5% моющего средства	3,0
		Амфолан	1,0
		Хлорцин	0,5
		Хлоргексидин биглюконат	1,0
		Нейтральный гипохлорит кальция	0,25
		Гипохлорит натрия	0,25
		ДП-2	0,1
		Сульфохлорантин	0,2
6.	Резиновая грелка, пузурь для льда, резиновые трубки приборов и аппаратов	Хлорамин Б	1,0		Двукратное протирание ветошью, смоченной в растворе, с интервалом 15 мин. и последующим промыванием водой
		Хлорамин Б с 0,5% моющего средства	0,75
		Перекись водорода с 0,5% моющего средства	3,0
		Дезоксон-1	0,1
		Сульфохлорантин	0,2
		Амфолан	1,0
		Хлоргексидин биглюконат	1,0
		Гипохлорит натрия	0,25
7.	Зонд, баллон для отсасывания слизи, соски	Дистиллированная вода, 100 град. C		30	Кипячение
		Дистиллированная вода с 2% натрия двууглекислого 100 град. C		15	Кипячение
		Водяной насыщенный пар под давлением 110 С +/-2		20	Автоклавирование
8.	Аппараты, медицинские приборы, оборудование с лакокрасочным, гальваническим или полимерным покрытием	Хлорамин Б	1,0		Двукратное протирание с интервалом 15 мин. и последующим временем воздействия в течение 60 мин.
		Хлорамин Б с 0,5% моющего средства	0,75
		Перекись водорода с 0,5% моющего средства	3,0
		Дезоксон-1 с 0,5% моющего средства	0,05
		Сульфохлорантин	0,2
		Амфолан	1,0
		Хлорцин	0,5
		ДП-2	0,1
		Хлоргексидин биглюконат	1,0
9.	Кислородные маски, рожок от кислородной подушки	Перекись водорода	3,0		Двукратное протирание с интервалом 15 мин. и последующим временем воздействия в течение 60 мин.
		Хлоргексидин биглюконат	1,0
10.	Мешок «Амбу»	Хлоргексидин биглюконат	1,0		Двукратное протирание с интервалом 15 мин. и последующим временем воздействия в течение 60 мин.
11.	Стетофонендоскоп, сантиметровая лента	Хлорамин Б	0,5		Двукратное протирание с интервалом 15 мин. и последующим временем воздействия 30 мин.
		Амфолан	1,0
		Хлоргексидин биглюконат	1,0
12.	Термометр медицинский	Хлорамин Б	0,5	30	Полное погружение в раствор с последующим промыванием
		Хлорамин Б	2,0	5
		Перекись водорода	3,0	80
		Дезоксон-1	0,1	15
		Сульфохлорантин	0,1	30
		Хлоргексидин биглюконат	0,5	30
13.	Фартук, нарукавники, мешок, чехол матраца из клеенки или полимерной клеенки	Хлорамин Б	1,0		Протирание или орошение
		Хлорамин Б с 0,5% моющего средства	0,75
		Сульфохлорантин	0,2
		Хлоргексидин биглюконат	1,0
		Гипохлорит натрия	0,25
14.	Тазик эмалированный почкообразный, таз для использования перевязочного материала, прокладных клеенок, бумаги и т.п.	Хлорамин Б	1,0		Промывание с последующим временем воздействия в течение 60 минут
		Перекись водорода с 0,5% моющего средства	3,0
		Сульфохлорантин	0,2
		Гипохлорит натрия	0,25
		Хлорцин	0,5
		Дезам	0,25
		ДП-2	0,1
15.	Кувез	Хлорамин Б с 0,5% моющего средства	1,0		Двукратное протирание с последующим временем воздействия в течение 60 мин. и последующим протиранием стерильной ветошью, смоченной в стерильной дистиллированной воде, проветриванием, облучением ультрафиолетовой лампой в течение 30 минут
		Перекись водорода с 0,5% моющего средства	3,0
		Сульфохлорантин	0,2
		Амфолан	1,0
16.	Подушка для кислорода, манжетка для измерения артериального давления	Перекись водорода	3,0		Двукратное протирание с интервалом 15 минут
		Сульфохлорантин	0,1
17.	Ножницы для стрижки ногтей, бритвенный прибор металлический	Дистиллированная вода, 100 град. C		30	Кипячение
		Дистиллированная вода с 2% натрия двууглекислого 100 град. C		15	Кипячение
		Формалин	10,0	15	Погружение с последующим промыванием в водопроводной воде
18.	Наконечники для клизм, резиновые клизмы	Дистиллированная вода, 100 град. C		30	Кипячение
19.	Сетка для градуированных бутылок	Хлорамин Б	1,0		Двукратное протирание с интервалом 15 мин. и последующим временем воздействия 60 минут
		Хлорамин Б с 0,5% моющего средства	0,75
		Сульфохлорантин	0,2
		Хлордезин	1,0
		Хлорцин	0,5
		Хлоргексидин биглюконат	1,0
		Хлорамин	1,0
20.	Холодильник (внутренние поверхности)	Хлорамин Б	1,0		Двукратное протирание с интервалом 15 мин. с последующим временем воздействия 30 мин. и затем промывание водой
		Хлорамин Б с 0,5% моющего средства	0,75
		Перекись водорода с 0,5% моющего средства	3,0
		Сульфохлорантин	0,2
		Ниртан	3,0
		Амфолан	1,0
		Гипохлорит натрия	0,25
		Хлоргексидин биглюконат	1,0
		Аэрозольный баллон «Синильга»			Согласно тексту этикетки
21.	Подкладные клеенки	Хлорамин Б	1,0	30	Погружение в раствор с последующим промыванием и высушиванием
		Сульфохлорантин	0,2	30
		Хлорцин	0,5	15
		Нейтральный гипохлорит кальция	0,5	15
		Хлоргексидин биглюконат	1,0	60
		ДП-2	0,1	15
		Гипохлорит натрия	0,25	15
22.	Посуда без остатков пищи	Дистиллированная вода, 100 град. C		30	Кипячение
		Хлорамин Б	0,5	30	Погружение в раствор и последующее промывание в проточной водопроводной воде
		Перекись водорода	3,0	30
		Дезоксон-1	0,05	30
		Сульфохлорантин	0,1	30
		Гипохлорит натрия	0,125	15
		ДП-2	0,1	30
23.	Баночки для сбора молока, молокоотсосы, стеклянные воронки	Дистиллированная вода, 100 град. C		30	Кипячение
		Дистиллированная вода с 2% натрия двууглекислого		15	Кипячение
		Сухой горячий воздух 120 град. C +/- 4		45	В воздушном стерилизаторе
24.	Постельные принадлежности (матрац, подушка, одеяло)	Паровоздушная смесь Пар			Камерная дезинфекция (таблица 6)
25.	Нательное и постельное белье				Стирка в прачечной с кипячением
26.	Марлевые маски	Водопроводная вода 100 C		30	Кипячение
		Водяной насыщенный пар под давлением 110 C +/- 2		20	Автоклавирование
27.	Подкладные судна	Хлорамин Б	1,0	120	Погружение в раствор после освобождения от содержимого
		Сульфохлорантин	0,2	120
		Нейтральный гипохлорит кальция	0,5	60
		Хлорцин	0,5	120
		Гипохлорит натрия	0,25	60
		ДП-2	0,2	120
28.	Резиновые коврики	Хлорамин	1,0		Двукратное протирание с интервалом 15 мин. или орошением с последующим временем воздействия 60 мин.
		Сульфохлорантин	0,2
		Хлорцин	0,5
		Нейтральный гипохлорит кальция	0,5
		Гипохлорит натрия	0,25
		ДП-2	0,2
29.	Санитарно-техническое оборудование	Хлорамин Б	1,0		Двукратное протирание с интервалом 15 мин. увлажненной ветошью или орошение с последующим временем воздействия 60 минут
		Гипохлорит натрия	0,25
		Нейтральный гипохлорит кальция	0,5
		ДП-2	0,2

---

<*> Гипохлорит натрия получают в малогабаритной установке ЭЛМА-1 из раствора поваренной соли.

Примечание:

1. Концентрация дезинфицирующего агента: формалина — по формальдегиду, остальных средств — по препарату; для ЭХПГН дан по активному хлору.

2. После дезинфекции способом погружения изделие должно быть промыто в проточной водопроводной воде до полного удаления запаха, при использовании препаратов, не имеющих запаха, изделие промывают в воде в течение 3-х минут.

3. Дезинфицирующий раствор должен применяться однократно.

4. При дезинфекции кипячением и паровым методом изделия из резины, латекса, полимерных материалов должны быть упакованы в марлю.

5. Дезинфекцию помещений аэрозолем выполняют в отсутствии родильниц, рожениц, новорожденных, при плотно закрытой двери и окнах.

6. В качестве моющих средств рекомендуется использовать мыльно-содовый раствор, «Астру», «Лотос», «Прогресс», «Айну».

7. Средство ДП-2 применять при отсутствии других дезинфицирующих средств.

8. Для проведения дезинфекции в стационаре рекомендуется централизованное приготовление дезинфицирующих растворов.

---

<*> При выявлении различий в описании дезинфекционных мероприятий в данной инструкции с приказом Министерства здравоохранения СССР от 09.01.86 г. № 55 «Об организации работы родильных домов (отделений)» руководствоваться положениями, утвержденными настоящей инструкцией.

---

<*> К пункту 24 таблицы 1.

Вид дезинфекции	Норма загрузки (кг) на 1 кв. м площади пола камеры (тележки)	Температура дезинфекции, град. C	Время дезинфекционной выдержки, мин.	Ориентировочное время дезинфекции, не считая загрузки и выгрузки объектов, мин.
Паровоздушная	60	60 — 90	20	35
Паровая	50	100	0	60
	50	104 — 111	0,2 — 0,5	40

10. Стерилизационные мероприятия

Стерилизационные мероприятия в акушерском стационаре осуществляются в соответствии с приказом Минздрава СССР № 408 от 27.07.89 г. «Об усилении мероприятий по снижению заболеваемости вирусными гепатитами» и отраслевого стандарта «Стабилизация и дезинфекция изделий медицинского назначения», методы, средства и режимы ОСТ 42-21-2-85. Строжайшее соблюдение правил стерилизации одновременно является профилактической мерой на пути предупреждения распространения вируса иммунодефицита человека (ВИЧ) среди новорожденных и родильниц в условиях акушерского стационара.

ИНСТРУКЦИЯ ПО БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОМУ КОНТРОЛЮ КАЧЕСТВА ПРОВЕДЕНИЯ ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКИХ МЕРОПРИЯТИЙ В АКУШЕРСКИХ СТАЦИОНАРАХ

1. Общие положения

1.1. Бактериологический контроль за качеством проведения противоэпидемического режима осуществляют санитарно-эпидемиологические, дезинфекционные станции и лечебно-профилактические учреждения.

1.2. В акушерских стационарах бактериологический контроль проводят санитарно-эпидемиологические и дезинфекционные станции, бактериологические лаборатории лечебных учреждений в порядке текущего надзора не менее 1 раза в квартал.

Внеочередной санитарно-бактериологический контроль проводят по эпидемическим показаниям, а также с целью оценки качества выполненных профилактических мероприятий после закрытия родильного дома.

1.3. Бактериологический контроль при текущем саннадзоре осуществляется в родильных залах, операционном блоке, процедурных, детских палатах и палатах интенсивной терапии, в комнатах сбора, пастеризации и хранения грудного молока, в палатах послеродового отделения.

1.4 Объектами исследования являются:

• воздушная среда;
• медицинский инструментарий;
• руки и одежда медперсонала;
• грудное молоко и питьевые растворы;
• лекарственные средства.

1.5. Ориентировочный перечень объектов, подлежащих бактериологическому контролю.

Родильный зал: польстер, кровать (металлические части) для рожениц; лоток, подготовленный к приему новорожденного; баллон и катетер для отсоса слизи у новорожденного; шланг вакуум-экстрактора, таз для мытья рук, щетки для мытья рук, набор первичной и вторичной обработки новорожденного (на стерильность), индивидуальный комплект для рожениц (на стерильность), комплект для акушерки (на стерильность), руки акушерки, фартук акушерки, шланг и маска наркозного аппарата, аппарат искусственной вентиляции легких, насадка и шланг кислородной подводки, пеленальный стол, весы, детская кроватка, матрац или гамачок, кран раковины и раковина, глазные капли, масло для обработки новорожденного, поверхность инструментального стола, полки шкафа для медикаментов и инструментов.

Палаты новорожденных: пеленальный стол, весы, металлические части детской кроватки, поверхность медицинского стола, матрац или гамачок, глазные пипетки, кран раковины для подмывания детей, раковины для подмывания детей (слив), кювез (внутренняя поверхность), градусники, зонды и баллоны для отсоса слизи, руки детской сестры, фартук детской сестры, масло для обработки новорожденных, детское белье, щетки для мытья рук, насадка и шланг кислородной подводки, молоко и питьевые растворы, стерильные ватные шарики и марлевые салфетки, глазные капли, каталки для перевоза детей.

Комната для вторичной обработки новорожденных: весы; клеенка детского пеленального столика, детская кровать, аппарат искусственной вентиляции легких, насадка и шланг кислородной подводки.

Предоперационная и операционная: тазы для обработки рук хирургов; чистые щетки для мытья рук; фартуки; кран раковины и раковина; каталка для перевозки больных: ветошь для уборки; полки, шкафы для медикаментов; операционный стол; рабочий стол анестезиологов; маска и шланг наркозного аппарата; шланг вакуум-насоса; шланг кислородной подводки; поверхность инструментальных столов; осветительная аппаратура; внутренняя поверхность холодильника; шовный материал, подготовленный для оперативных вмешательств (на стерильность); шприцы, иглы, стерильные растворы (на стерильность); операционное поле; руки хирурга после обработки; стерильные перчатки членов операционной бригады (на стерильность).

Комната сбора, пастеризации и хранения грудного молока: грудное молоко пастеризованное; руки медицинской сестры; рабочий стол для чистой посуды; внутренняя поверхность холодильника для хранения молока; емкость для сцеживания молока; молокоотсосы; ватные тампоны, марлевые салфетки для укупорки подготовленных бутылочек (на стерильность); воронки; соски, внутренняя поверхность кастрюли для пастеризации молока; стерильные бутылочки для грудного молока и питьевых растворов.

Послеродовая палата: клеенка или пеленка, используемая родильницей при кормлении новорожденного; комплект чистого постельного и нательного белья; емкость для сцеживания грудного молока; грудные железы и руки родильницы перед кормлением новорожденного.

Приемное отделение: клеенка на кушетке; руки акушерки; мочалки чистые; бритвы.

2. Методы санитарно-бактериологического контроля

2.1. Исследования микробной обсемененности воздуха

2.1.1. Бактериологические исследования воздуха предусматривают определение общего содержания микроорганизмов в 1 куб. м воздуха и определение содержания золотистого стафилококка в 1 куб. м воздуха.

2.1.2. Пробы воздуха отбирают аспирационным методом с помощью аппарата Кротова (прибор для бактериологического анализа воздуха, модель 818). Скорость протягивания воздуха — 25 л/мин. Количество пропущенного воздуха — 100 л для определения общего содержания микроорганизмов (4 мин.) и 250 л для определения наличия золотистого стафилококка (10 мин.).

Примечание: При наличии в лаборатории прибора ПАБ-1 (пробоотборник аэрозольный бактериологический) пробы воздуха на те же показатели отбирают с помощью этого аппарата.

2.1.3. Для определения общего содержания микроорганизмов в 1 куб. м воздуха отбор проводят на 2% питательный агар. Посевы инкубируют при 37 град. C в течение 24 часов, после чего подсчитывают количество выросших колоний и производят пересчет на 1 куб. м воздуха.

2.1.4. Для определения золотистого стафилококка отбор проб производят на желточно-солевой агар (ЖСА). Чашки с посевами инкубируют при 37 град. C в течение 24 часов и 24 часа при комнатной температуре. Подозрительные колонии подлежат дальнейшему исследованию.

2.1.5. Критерии оценки микробной обсемененности воздуха в родильных домах: (таблица 1).

Место отбора проб	Условия работы	Допустимое общее количество КОЕ в 1 куб. м воздуха	Допустимое количество колоний золотистого стафилококка в 1 куб. м воздуха
Комнаты сбора и пастеризации грудного молока	во время работы	не выше 1000	не более 4
Детские палаты	подготовленные к приему детей во время работы	не выше 500	не должно быть
		не выше 750	не более 4
Операционные и родильные комнаты	до начала работы	не выше 500	не должно быть
	во время работы	не выше 1000	не более 4
Палаты для недоношенных и травмированных детей	подготовленные к приему детей во время работы	не выше 500	не должно быть
		не выше 750	не должно быть

2.2. Исследование микробной обсемененности предметов окружающей среды

2.2.1. Бактериологическое исследование микробной обсемененности предметов окружающей среды в акушерских стационарах при текущем саннадзоре предусматривает выявление микроорганизмов семейства Enterobacteriaceae, золотистого стафилококка и псевдомонас аеругиноза с чистых и бывших в употреблении предметов.

2.2.2. Отбор проб с поверхностей осуществляют методом смывов. Взятие смывов производят стерильным ватным тампоном на палочках, вмонтированных в пробирки с 5 мл стерильной 1% пептонной водой. Тампон увлажняют питательной средой, делают смыв с объекта и помещают в ту же пробирку, погружая в пептонную воду.

2.2.3. При контроле мелких предметов смывы отбирают с поверхности всего предмета; при контроле предметов с большой поверхностью смывы проводят с площади не менее 100 кв. см, тщательно протирая поверхность. Необходимо обращать внимание на места, труднодоступные для мытья и дезинфекции. Одним тампоном можно производить смыв с нескольких однородных мелких предметов.

2.2.4. Из каждой отобранной пробы производят посев непосредственно ватным тампоном на чашку Петри с желточно-солевым агаром; 0,5 — смывной жидкости засевают в 5 мл бульона с 6,5% хлорида натрия для выделения золотистого стафилококка. Чашка с посевами на желточно-солевом агаре, засеянные пробирки с солевым бульоном и пептонной водой с ватными тампонами выдерживают в термостате при 37 град. C в течение 18 — 24 часов. Дальнейшее изучение проводят по схеме.

2.2.5. Схема бактериологического исследования на микроорганизмы семейства Enterobacteriaceae, Псевдомонас аеругиноза.

Для выявления Энтеробактерий и Псевдомонас аеругиноза посев производят из пробирок с 1% пептонной водой после инкубации при 37 град. C в течение 18 — 20 часов на среду Эндо. Посевы на среде Эндо выдерживают при 37 град. C 18 — 24 часа. Чашки с посевами на среде Эндо просматривают. При наличии на среде Эндо колоний характерных для условно-патогенных энтеробактерий — красных с металлическим блеском или без него, розовых с темным центром, розовых, слизистых, бледно-розовых, готовят мазки, окрашивают по Граму и микроскопируют (окраску по Граму можно заменить пробой с 3% водным раствором КОН). Лактозоотрицательные колонии подвергают дальнейшему изучению для установления из возможной принадлежности к патогенным энтеробактериям и псевдомонас аеругиноза.

Идентификацию энтеробактерий проводят в соответствии с «Методическими указаниями по микробиологической диагностике заболеваний, вызываемых энтеробактериями» Минздрава СССР № 04-723/3 от 17.12.84 г.

Псевдомонас аеругиноза на среде Эндо образует колонии с ровными или слегка волнистыми краями, гладкой блестящей поверхностью с характерным запахом и пигментом. Запах и пигмент могут сильно варьировать или вообще отсутствовать. Для идентификации отбирают со среды Эндо не менее 2-х колоний и засевают на ряд дифференциально-диагностических сред (таблица 2).

	Тесты	Подвижность	О/Ф тест	Оксидаза	Пиоцианин	Рост при 42 град. C	Желатиназа	Нитратаза	Лизин декарбоксилаза
Вид псевдомонад
P.aeruginosa		+	+/-	+	+	+	+	+	-
P.fluorescens		+	+/-	+	-	-	+	-	-
P. putida		+	+/-	+	-	-	-	-	-
P. cepacia		+	+/-	+	-	+/-	-	-	+
P. stutzezi		+	+/-	+	-	+/-	-	+	-
P. maltophilia		+	+/-	-	-	+/-	+	-	-

Псевдомонас аеругиноза — грамотрицательные, подвижные, оксидазоположительные палочки, оксидирующие, но не ферментирующие глюкозу, образующие нитратазу, пиоцианин на среде Кинг А, дающие рост при 42 град. C.

При целенаправленных исследованиях на Псевдомонас аеругиноза допускается высев с 1% пептонной воды на среду с ЦПХ-агаром Дагестанского НИИ питательных сред.

Дальнейшую идентификацию псевдомонад и приготовление питательных сред проводят согласно «Методических рекомендаций по определению грамотрицательных потенциально-патогенных бактерий — возбудителей внутрибольничных инфекций» Минздрава РСФСР от 03.06.86 г.

2.2.6 Схема бактериологического исследования на стафилококк.

Для выявления золотистого стафилококка делают посев на одну из сред: желточно-солевой, молочно-солевой или молочно-желточно-солевой агар. В качестве среды накопления используют бульон с 6,5% натрия хлорида, разлитый в пробирки по 5,0 мл, в который засевают по 0,5 мл смывной жидкости. Засеянные пробирки инкубируют при 37 град. C в течение 20 — 24 часов, после чего производят посев на питательный агар или молочный агар.

Засеянные плотные питательные среды выдерживают в термостате при 37 град. C в течение 2 суток или одни сутки в термостате и дополнительно 24 часа на свету при комнатной температуре. Затем проводят просмотр чашек, фиксируя в журнале характер и массивность роста колоний.

На вышеуказанных средах стафилококк растет в виде круглых, блестящих, маслянистых колоний, часто пигментированных. На среде, содержащей желток, золотистый стафилококк, выделенный от человека, в 60 — 70% случаев образует радужный венчик вокруг колоний.

С плотных солевых сред на скошенный питательный или молочный агар снимают, в первую очередь, колонии стафилококков, образующие радужный венчик и пигментированние колонии. При отсутствии на чашках пигментированных колоний и колоний с положительной лецитовителлазной активностью для исследования снимают беспигментные колонии и колонии с отсутствием лецитовителлазной активности, похожие по морфологии на стафилококк. Следует отбирать не менее двух колоний различного вида. Пробирки с посевами помещают в термостат при 37 град. C на 18 — 20 часов. После суточной инкубации, у выделенных штаммов проверяют морфологию, тинкториальные свойства (окраску по Граму) и наличие плазмокоагулирующей активности и хлопьеобразующего фактора.

Окраску по Граму проводят общепринятым методом. Под микроскопом стафилококки имеют вид фиолетово-синих кокков, располагающихся гроздьями или небольшими кучками.

Если культура обладает плазмокоагулирующей активностью, пигментом, хлопьеобразующим фактором и в 70 — 75% лецитовителлазной активностью, типичная по морфологии — она относится к виду S. aureus.

Если культура обладает типичной морфологией, плазмокоагулирующей активностью при отсутствии пигмента и хлопьеобразования, то принадлежность к виду коагулазоположительных стафилококков определяют по таблице 3. Для идентификации используют 2 — 3 доступных теста помимо реакции плазмокоагуляции.

	Тесты	Коагулаза	Пигмент	Реакция Фогес-Проскауера	Продукция кислоты в аэробных условиях из:		Хлопьеобразование	Гемолиз
Вид стафилококка					Маннита	Мальтозы
S. aureus		+	+	+	+	+	+	+
S. intermedius		+	-	-	+/-	+/-	+/-	+
S. hyicus		+	-	-	-	-	-	-

Примечание: +/- — от 11% до 89% положительных результатов.

Выделенные культуры золотистого стафилококка подлежат обязательному фаготипированию.

Если культура коагулазоотрицательная, типична по морфологии для стафилококков, то принадлежность ее к коагулазонегативным стафилококкам определяют по таблице 4. Для идентификации используют 2 — 3 доступных теста помимо реакции плазмокоагуляции.

	Тесты	Коагулаза	Фосфатаза	Аэробное расщепление
Виды стафилококков				Маннит	Манноза	Трегалоза	Галактоза
S. aureus		+	+	+	+	-	+
S. epidermidis		-	+	-	+	-	+/-
S. warneri		-	-	+	-	+	+/-
S. haemolyticus		-	-	+/-	-	+	+/-
S. hominis		-	-	-	-	+/-	+/-
S. saprophyticus		-	-	+	-	+	-

Примечание: +/- от 11% до 89% положительных результатов.

2.2.7 Обследование родильных домов по эпидемическим показаниям.

При обследовании родильных домов по эпидемическим показаниям проводят отбор проб совместно с эпидемиологом.

При обследовании по эпидемическим показаниям смывы с объектов и предметов проводят как с чистых, так и бывших в употреблении.

Учитывая, что внутрибольничные инфекции в акушерских стационарах могут быть вызваны различными микроорганизмами, при обследовании по эпидемическим показаниям, в зависимости от конкретного случая, бактериологические исследования проводят не только на вышеприведенные микроорганизмы (раздел 2), но и на другие бактерии, вызвавшие вспышку (эпидермальный стафилококк, псевдомонады по п. 2.2.5 и 2.2.6 и другие.).

2.2.8 Определение чувствительности микроорганизмов к антибиотикам.

Определение чувствительности микроорганизмов к антибиотикам проводят при текущем надзоре (выборочно, при повторных случаях выявления микроорганизмов) и по эпидемическим показаниям.

Определение чувствительности, выделенных штаммов к антибиотикам изучают в соответствии с «Методическими указаниями по определению чувствительности микроорганизмов к антибиотикам методом их диффузии в агар с использованием дисков» Минздрава СССР № 2675-83 от 10.03.83 г.

2.3. Исследование грудного молока, растворов для питья новорожденных, лекарственных форм

2.3.1. Исследование грудного молока, подвергнутого пастеризации, растворов для питья новорожденных проводят с целью установления общей бактериальной обсемененности, титра бактерий группы кишечных палочек, золотистого стафилококка.

Для исследования берут пробы грудного молока и растворов для питья новорожденных как из комнаты для сбора, пастеризации и хранения грудного молока, так и непосредственно из детских палат.

Для определения титра бактерий группы кишечных палочек в грудном молоке и растворах засевают их на среде Кесслера в следующих объемах: 10,0 куб. см, 1,0 куб. см, и по 1,0 куб. см из разведений 1:10 и 1:100. Посевы инкубируют при температуре 37 град. C в течение 18 — 24 часов, после чего проводят высев на среду Эндо. При росте характерных колоний для бактерий группы кишечных палочек осуществляют постановку 2-ой бродильной пробы на глюкозу с поплавком.

Среду выдерживают 24 часа при 37 град. C. При выявлении бактерий группы кишечной палочки проводят идентификацию выделенных культур.

Для определения общего микробного числа в растворах засевают параллельно на две чашки Петри по 1,0 куб. см, при исследовании грудного молока засевают по 1,0 куб. см из разведений 1:10 на две чашки. Посев производят глубинным методом. После инкубации посевов при температуре 30 град. в течение 48 часов производят подсчет выросших колоний.

2.3.2. Исследование масла, используемого для обработки кожи новорожденного.

Исследование масла проводят на наличие золотистого стафилококка и бактерий группы кишечных палочек. Посев проводят в 5 куб. см 6,5% солевого бульона в количестве 0,5 куб. см для определения золотистого стафилококка. Дальнейший ход исследований по п. 2.2.6.

На наличие бактерий группы кишечных палочек посев проводят в количестве 1 куб. см на 9 куб. см среды Кесслера, дальнейший ход исследования по п. 2.3.1.

2.3.3 Лекарственные формы.

Различные лекарственные формы исследуются в соответствии с «Методическими указаниями по микробиологическому контролю в аптеках» № 3182-84 от 29.12.84 г.

Кроме вышеперечисленного ориентировочного перечня предметов, подлежащих бактериологическому контролю, целесообразно проводить исследование (выборочно) посуды пищеблока и буфетов — раздаточных отделений.

3. Исследование отделяемого верхних дыхательных путей

3.1. Обязательному бактериологическому исследованию подвергают слизь передних отделов носа; исследование слизи из зева проводят только по показаниям, прежде всего при наличии воспалительных процессов в зеве.

3.2. Забор материала из передних отделов носа осуществляют одним стерильным ватным тампоном из обеих половин носа. Сбор материала из зева производят с поверхности миндалин стерильным ватным тампоном. Материал из зева собирают натощак или не ранее чем через 2 — 3 часа после приема пищи.

3.3. Посев исследуемого материала на питательные среды проводят не позже чем через 2 часа после его забора.

3.4. Для первичного посева используют одну из питательных сред: желточно-солевой, молочно-солевой, молочно-желточно-солевой агар.

3.5 Посев проводят одним из предлагаемых способов.

3.5.1. Посев проводят непосредственно тампоном, которым забирали материал. Тампон следует многократно поворачивать, чтобы перенести на питательную среду максимальное количество взятого материала.

3.5.2. Взятый тампоном материал в лаборатории помещают в пробирку с 5,0 мл стерильного физиологического раствора. Тампон ополаскивают в жидкости встряхиванием пробирки в течение 10 минут. Жидкость многократно перемешивают пипеткой, наносят 0,1 мл на одну из вышеуказанных питательных сред и тщательно растирают шпателем.

4. Определение массивности обсеменения верхних дыхательных путей

4.1. Обсемененность, выражающаяся показателем 10 куб. и более колониеобразующих единиц (КОЕ), снимаемых на тампон, является показателем высокой обсемененности, при которой происходит выделение возбудителя во внешнюю среду при спокойном дыхании.

4.2. Для определения массивности обсеменения верхних дыхательных путей стафилококками при прямом методе посева тампоном, можно пользоваться оценкой роста колоний на чашках, обозначая в крестах + + + + сливной рост <> + + + сплошной рост изолированных колоний <> + + значительный рост (до 100 колоний) + единичные колонии (10 — 25)

---

Примечание: <*> сливной и сплошной рост соответствует, как правило, массивности обсеменения 10 куб. КОЕ, снимаемых на тампон.

4.3. Для определения массивности обсеменения верхних дыхательных путей стафилококками при посеве 0,1 мл смывной жидкости подсчитывают число выросших на чашке однородных колоний, идентичных по морфологии и пигменту, затем подсчитывают количество КОЕ, снимаемых на тампон.

Пример расчета: на чашке выросло 15 колоний, значит в 0,1 мл содержалось 15 КОЕ, во всем объеме смыва будет 15 х 10 х 5 = 750 или 7,5 х 10 кв. КОЕ.

Схему бактериологического исследования см. в разделе 2.2.6.

5. Питательные среды и тесты для выделения и идентификации стафилококков

5.1. Реакция плазмокоагуляции ставится в соответствии с «Наставлением по применению плазмы кроличьей», выпускаемой предприятиями по производству бактерийных препаратов.

5.2 Реакция хлопьеобразования.

На предметное стекло наносят каплю исследуемой культуры. Параллельно для контроля культуру растирают также в капле физиологического раствора. При наличии в контроле равномерной мути, а в плазме — хлопьев, реакцию считают положительной. Хлопьеобразование можно наблюдать при постановке реакции коагуляции.

5.3 Фосфотазная активность.

К 2% питательному агару добавляют паранитрофенолфосфат (0,05%). Среду разливают в чашки, подсушивают и исследуемую культуру засевают бляшками. Реакция считается положительной при появлении желтого окрашивания среды вокруг колонии через 24 часа инкубации при 37 град.С. Вместо паранитрофенолфосфата можно использовать фенолфталеинфосфат (0,05%). Через 24 часа инкубации при 37 град. C выросшие культуры обрабатывают парами аммиака. Реакция считается положительной при окрашивании выросших колоний в малиновый цвет.

5.4. Расщепление углеводов в аэробных условиях (маннита, мальтозы, трегалозы, галактозы, маннозы).

Посевы испытуемых культур производят на поверхность среды бляшками или небольшими полосами. Среда имеет следующий состав: 2% питательный агар — 100 мл, углевод (химически чистый) — 1%, 1,6% бромтимолблау (спиртовый раствор) — 0,3 мл. Среду стерилизуют и разливают в стерильные чашки Петри. Готовая среда должна быть сине-зеленоватого цвета (pH — 7,2 — 7,4). Всего на чашку засевают не более 6 культур.

Учет результатов через 24 часа после инкубации при 37 град. C. Пожелтение среды вокруг полосы свидетельствует о ферментации углевода. Желтое окрашивание самой полосы расценивают как слабая или сомнительная реакция (+). Это пожелтение не следует путать с пигментообразованием культуры. Реакцию проще учитывать, подложив под чашку белый лист бумаги.

6. Бактериологический контроль эффективности обработки кожи операционного поля и рук хирургов

6.1. Смывы с кожи операционного поля и рук хирургов производят стерильными марлевыми салфетками размером 5 x 5 см, смоченными в растворе нейтрализатора или физиологическом растворе. Марлевой салфеткой тщательно протирают ладони, околоногтевые и межпальцевые пространства обеих рук. После забора проб марлевую салфетку помещают в широкогорлые пробирки или колбы с раствором нейтрализатора (воды или физиологического раствора) и стеклянными бусами встряхивают в течение 10 минут, производят отмыв марлевой салфетки. Отмывную жидкость засевают по 0,5 мл в 2 пробирки с 5 мл тиогликолевой среды, марлевую салфетку помещают в пробирку с тиогликолевой средой. Посевы инкубируют при температуре 37 град. C в течение 48 часов.

6.2 Учет результатов.

Обработка кожи операционного поля и рук хирургов эффективна при отсутствии роста микроорганизмов в питательной среде.

7. Бактериологический контроль качества дезинфекции

В акушерских стационарах об эффективности дезинфекции судят по отсутствию в смывах золотистого стафилококка, энтеробактерий, синегнойной палочки, а также патогенных микроорганизмов.

Отбор смывов с предметов после дезинфекции производят стерильным ватным тампоном на палочке (проволоке), вставленной в пробирку, или марлевой салфеткой 5 x 5 см, простерилизованной в бумажном пакете или чашке Петри. Пробирки заполняются 1% раствором пептонной воды. После смыва тампон помещают на 10 — 15 минут в раствор нейтрализатора. Нейтрализатор — это вещество, которое устраняет действие дезинфицирующего агента на микробную клетку, что позволяет микроорганизмам, сохранившим жизнеспособность, развиваться в питательных средах. Для нейтрализации дезинфицирующих агентов используют следующие химические вещества:

• тиосульфат натрия (0,5% раствор при выделении вегетативных форм микроорганизмов и 1%-спорообразующих) при использовании для дезинфекции хлоросодержащих, перекисных, йодосодержащих препаратов; препарат может быть добавлен в 1% р-р пептонной воды;
• сульфонол с молоком (на 1 л раствора используют 200 г сульфонола, 100 мл обезжиренного молока и 700 мл дистиллированной воды) при использовании четвертичных аммониевых соединений;
• мыло банное (0,5% раствор) — при использовании препаратов на основе анионных поверхностно-активных веществ, гибитана;
• водопроводная вода — при использовании препаратов на основе фенола, глютарового альдегида;
• аммиак (0,5% раствор) — при использовании формальдегида или препаратов на его основе.

В качестве нейтрализатора используют стерильные растворы указанных веществ.

По истечении необходимого для нейтрализации дезинфицирующего агента времени тампон (салфетку) переносят в пробирку с питательной средой для дальнейшего исследования (п. п. 2.2.5 - 2.2.6).

8. Бактериологический контроль качества обработки кожи рук

Контроль качества обработки кожи рук осуществляют методом смыва. Смыв отбирают ватным тампоном, который предварительно увлажняют в 1% р-ре пептонной воды и затем протирают поверхность ладони. После этого тампон помещают в пробирку с 1% р-ром пептонной воды. При обработке рук дезинфицирующим препаратом тампон первоначально помещают в нейтрализатор на 10 — 15 минут и только после этого — в питательную среду. Кожа рук считается обеззараженной, если в отобранных смывах не регистрируется рост золотистого стафилококка, энтеробактерий, синегнойной палочки.

Бактериологический контроль стерильности изделий медицинского назначения в акушерских стационарах осуществляется в соответствии с приказом Минздрава СССР № 60 от 17.01.79 г. «О мерах по дальнейшему укреплению и развитию дезинфекционного дела» <*>.

---

<*> В настоящее время для контроля стерильности используют две среды: тиогликолевую и среду Сабуро. Посевы в тиогликолевую среду выдерживают в термостате при температуре 30 — 35 град. C, в среду Сабуро — при температуре 20 — 25 град. C.

ИНСТРУКЦИЯ ПО ПРОФИЛАКТИКЕ ОМФАЛИТОВ И ГНОЙНО-ВОСПАЛИТЕЛЬНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ КОЖНЫХ ПОКРОВОВ У НОВОРОЖДЕННЫХ ДЕТЕЙ С ПОМОЩЬЮ ПРЕПАРАТА «ЛИФУЗОЛЬ» («СТАТИЗОЛЬ»)

Использование в родильных домах пленкообразующего препарата «Лифузоль» (Статизоль») для обработки пуповины и пупочной ранки новорожденного снижает частоту омфалитов, упрощает уход за пуповиной, уменьшает расход перевязочного материала и медикаментов.

Обработка «Лифузолем» хирургических ран и нарушений целостности кожных покровов у новорожденных, мест введения катетера в периферические сосуды и сосуды пуповины способствует снижению частоты гнойно-воспалительных осложнений.

Действующим началом препарата «Лифузоль» является фурацилин, активный в отношении грамотрицательных и грамположительных микробов (стафилококков, стрептококков, кишечной палочки, возбудителя газовой гангрены и т.д.). Препарат «Статизоль» имеет добавку облепихового масла.

При нанесении препаратов на кожные покровы через 1 — 2 минуты образуется тонкая, блестящая, непроницаемая для микроорганизмов пленка, защищающая поверхность от загрязнения и инфицирования. Пленка остается на кожных покровах до 6 — 8 дней и может быть удалена спиртом.

После вторичной обработки пуповины новорожденного и наложения скобки Роговина поверхность среза, основание пуповины и кожу вокруг пупочного кольца вторично обрабатывают спиртом 96 град. и дают возможность поверхности высохнуть. Затем, акушерка, прикрывая лицо ребенка пеленкой для исключения попадания препарата «Лифузоль» («Статизоль») в глаза и дыхательные пути новорожденного, берет в правую руку аэрозольный баллон, встряхивает его и, нажимая на распылительную головку указательным пальцем, наносит препарат на остаток пуповины и кожные покровы вокруг пупка с расстояния 10 — 15 см от обрабатываемой поверхности, нажимая на головку клапана в течение 1 — 2 сек. (3-кратно, с паузами 30 — 40 сек. для подсыхания пленки).

При наложении на пуповину шелковой лигатуры «Лифузоль» («Статизоль») наносят после наложения лигатуры и обработки поверхности пуповины и кожных покровов вокруг пупочного кольца спиртом этиловым 96 град.

При необходимости использования сосудов пуповины для инфузионной терапии пленку снимают спиртом этиловым 96 град. После окончания инфузионной терапии, при необходимости, наносят препарат на культю пуповины повторно.

В последующие дни сестра и врач-неонатолог, работающие в палатах новорожденных детей, ежедневно осматривают обработанные зоны. Если пленка отслоилась, препарат наносят на этот участок дополнительно.

При отпадении пуповины пупочную ранку и кожные покровы вокруг нее обрабатывают спиртом этиловым 96 град. После подсушивания пупочную ранку (при отсутствии мокнущей поверхности и отделяемого) вновь 3-кратно обрабатывают «Лифузолем» («Статизолем»).

При выписке новорожденного ребенка домой обрабатывают пупочную ранку так, чтобы она была полностью закрыта пленкой препарата. При использовании «Лифузоля» («Статизоля») для обработки пупочной ранки режим купания новорожденного ребенка не меняется.

Противопоказания к применению препарата «Лифузоль» («Статизоль»)

1. Длительный безводный промежуток в родах (18 часов и более), субфебрилитет у матери.

2. Кровоточащие, мокнущие и инфицированные пупочные ранки.

3. Гнойно-воспалительные заболевания кожных покровов у новорожденных детей, врожденный везикулез.

4. Мокнущие, инфицированные ссадины.

Условия хранения препарата

Баллон аэрозольного препарата «Лифузоль» («Статизоль») содержит 200 мл (на 20 обработок). Хранят баллон при температуре не выше 40 град. C, используют с осторожностью, оберегая его от ударов. Перед использованием баллон подвергают 3-кратному протиранию пеленкой, смоченной в 1,0% растворе хлорамина или другого антисептика. В последующем в рабочие часы баллон находится в пеленке, смоченной раствором 1,0% хлорамина.

Не допускается разборка как наполненного, так и пустого баллона.

ИНСТРУКЦИЯ ПО ПРИМЕНЕНИЮ БИФИДУМБАКТЕРИНА У НОВОРОЖДЕННЫХ В РОДИЛЬНЫХ ДОМАХ (ОТДЕЛЕНИЯХ)

Бифидумбактерин — препарат, повышающий широкий спектр неспецифических реакций организма. Представляет собой микробную массу штамма B. bifidum № 1 или № 791, лиофильно высушенную во флаконах. Она имеет вид пористой или слегка кристаллообразной сухой массы беловато-серого или светло-коричневого цвета; при растворении образует непрозрачную, гомогенную взвесь.

Показания к применению:

1. Недоношенные дети.

2. Новорожденные дети, находящиеся в отделении (палате) интенсивной терапии и реанимации.

3. Новорожденные дети, матери которых перенесли во время беременности и в послеродовом периоде гнойно-воспалительные заболевания.

Бифидумбактерин назначают внутрь перед кормлением по 5 — 10 доз в сутки в два — три приема, разводя содержимое флакона питьевыми растворами для новорожденных детей, подогретыми до 36 — 37 град. C.

Недопустимо применение горячей воды, так как при этом гибнет действующее начало препарата — живые бифидумбактерии. Растворенный препарат нельзя оставлять до следующего приема, так как при контакте с кислородом бифидумбактерии погибают.

ИНСТРУКЦИЯ ПО ПЕРЕВОДУ ЗАБОЛЕВШИХ НОВОРОЖДЕННЫХ И НЕДОНОШЕННЫХ ДЕТЕЙ В СООТВЕТСТВУЮЩИЕ ОТДЕЛЕНИЯ ДЕТСКИХ БОЛЬНИЦ

Показания к переводу	Сроки перевода
1. Новорожденные, имеющие инфекционные заболевания любой этиологии.	в день установления диагноза
2. Новорожденные, имеющие заболевания неинфекционной этиологии:
- хирургическая патология, требующая экстренной помощи (атрезия пищевода, атрезия ануса, диафрагмальная грыжа и др);	-«-»
- гемолитическая болезнь новорожденного (при отсутствии круглосуточного дежурства врачей-неонатологов в акушерском стационаре);	-«-»
- критические состояния, обусловленные дыхательной, сердечно-сосудистой, надпочечниковой недостаточностью, поражением центральной нервной системы, метаболическими нарушениями.	по согласованию с зав. отделением реанимации и консультации врача-реаниматолога при условии транспортабельности.
3. Недоношенные новорожденные, глубокая незрелость:
- с массой тела менее 1000 гр.	в возрасте не менее 168 часов
- с массой тела от 1500 до 2500 гр.	в возрасте не менее 48 часов

Противопоказания к переводу:

• грубые пороки развития;
• наследственные и хромосомные заболевания, не нуждающиеся в срочном лечении;
• острый период внутричерепного кровоизлияния.

• дети, родившиеся в этом отделении;
• новорожденные, матери которых переведены из физиологического послеродового отделения в обсервационное;
• дети, родившиеся вне родильного дома (роды в машине скорой помощи, роды на дому и т.д.);
• новорожденные, переведенные из родильного блока с клиникой врожденного везикулопустулеза;
• родившиеся с видимыми врожденными аномалиями развития, не нуждающиеся в срочном хирургическом лечении;
• «отказные» дети, подлежащие усыновлению или переводу в лечебные стационары и дома ребенка.

ИНСТРУКЦИЯ О ПОКАЗАНИЯХ К ПРИЕМУ И ПЕРЕВОДУ БЕРЕМЕННЫХ, РОЖЕНИЦ И РОДИЛЬНИЦ В ОБСЕРВАЦИОННОЕ ОТДЕЛЕНИЕ РОДИЛЬНОГО ДОМА (ОТДЕЛЕНИЯ)

Приему в обсервационное отделение родильного дома подлежат беременные и роженицы, имеющие <*>:

---

<*> Госпитализация осуществляется только при отсутствии в городе специализированного стационара.

• лихорадочное состояние (температура тела 37,6 град. C и выше без клинически выраженных других симптомов);
• длительный безводный промежуток (излитие околоплодных вод за 12 часов и более до поступления в стационар);
• тромбофлебит любой локализации острый или хронический в стадии обострения;
• воспалительные заболевания почек и мочевыводящих путей (острая стадия, обострение хронического процесса во время беременности, бессимптомная бактериурия — 10 в 5 степени КОЕ/мл мочи и более;
• проявление инфекции родовых путей (кольпит, цервицит, кондиломы, хориоамнионит);
• клиническое или лабораторное подтверждение инфекции с высоким риском внутриутробного заражения плода (токсоплазмоз, листериоз, цитомегалия, краснуха, венерические заболевания);
• внутриутробную гибель плода;
• острое респираторное заболевание (грипп, ангина и др.), проявления экстрагенитальных воспалительных заболеваний (пневмония, отит и др.);
• кожные заболевания инфекционной этиологии;
• туберкулез (закрытая форма любой локализации при отсутствии специализированного стационара) <*>.

---

<*> Беременных и рожениц с открытой формой туберкулеза госпитализируют в специализированные родильные дома (отделения); при отсутствии таковых госпитализируют в боксы или изоляторы обсервационного отделения с последующим переводом после родов в туберкулезный диспансер.

Кроме того, госпитализируют в обсервационные отделения беременных и рожениц, имеющих:

• кожные заболевания неинфекционной этиологии;
• при отсутствии у них медицинской документации;
• для прерывания беременности по медицинским и социальным показаниям во II триместре беременности;
• при выявлении злокачественных новообразований;
• имеющих аномалии развития плода, выявленные во время беременности (при отсутствии специализированного стационара);
• родильницы (в течение 24 часов после родов) в случае родов вне лечебного учреждения.

Переводу в обсервационное отделение из других отделений родильного дома (отделения) подлежат беременные, роженицы и родильницы, имеющие:

• повышение температуры тела в родах до 38 град. C и выше (при трехкратном измерении через каждый час);
• лихорадку неясного генеза (температура тела до 37,5 град.С), продолжающуюся более 1 суток;
• установленный диагноз послеродового воспалительного заболевания (эндометрит, мастит, раневая инфекция и др.);
• проявления экстрагенитальных воспалительных заболеваний, не требующих перевода в специализированный стационар (ОРВИ, ангина, герпес и др.).

Примечание: в случае перевода новорожденного в обсервационное отделение вместе с ним переводят родильницу (бокс, отдельная палата или изоляция по заболеваниям).

Беременные, роженицы и родильницы, страдающие инфекционными заболеваниями, подлежат госпитализации и переводу в соответствующие инфекционные больницы.

При выявлении у беременной, роженицы или родильницы гнойно-воспалительного процесса, в связи с которым ее дальнейшее пребывание в акушерском стационаре представляет эпидемиологическую опасность, женщина подлежит переводу в специализированный стационар соответствующего профиля.

В отделении женщин размещают в палаты по нозологическим формам заболеваний, беременных отдельно от родильниц.

---