ГОСТ Р 54005-2010. Национальный стандарт Российской Федерации. Продукты пищевые. Методы выявления и определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae

(утв. и введен в действие Приказом Росстандарта от 30.11.2010 № 598-ст)

ИСТОРИЯ ИЗМЕНЕНИЙ НОРМАТИВНО-ТЕХНИЧЕСКИХ АКТОВ

flowchart LR
  n0["ГОСТ 29184-91"]:::rst
  click n0 "https://bukva.ai/docs/gost-29184-91" "ГОСТ 29184-91. Государственный стандарт Союза ССР. Продукты пищевые. Методы выявления и определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae (утв. и введен в действие Поста"
  n1["ГОСТ Р 54005-2010"]:::rst
  click n1 "https://bukva.ai/docs/gost-r-54005-2010" "ГОСТ Р 54005-2010. Национальный стандарт Российской Федерации. Продукты пищевые. Методы выявления и определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae (утв. и введен в де"
  n2["ГОСТ 32064-2013"]:::doc
  click n2 "https://bukva.ai/docs/gost-32064-2013" "ГОСТ 32064-2013. Межгосударственный стандарт. Продукты пищевые. Методы выявления и определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae (введен в действие Приказом Росстанд"
  n1 --> n2
  n0 --> n1
classDef rst fill:#FFEBEB,stroke:#8B0000,color:#000;
classDef doc fill:#EBFFEB,stroke:#006400,color:#000;
classDef notEnt fill:#FFFFEB,stroke:#FF8C00,color:#000;

НАЦИОНАЛЬНЫЙ СТАНДАРТ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

ПРОДУКТЫ ПИЩЕВЫЕ

МЕТОДЫ ВЫЯВЛЕНИЯ И ОПРЕДЕЛЕНИЯ КОЛИЧЕСТВА БАКТЕРИЙ СЕМЕЙСТВА ENTEROBACTERIACEAE

Food products. Methods for detection and quantity determination of family Enterobacteriaceae

ISO 21528-1:2004 Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal methods for the detection and enumeration of Enterobacteriaceae — Part 1: Determination and enumeration by MPN technique with pre-enrichment (MOD)

ISO 21528-2:2004 Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal methods for the detection and enumeration of Enterobacteriaceae — Part 2: Colony-count method (MOD)

Предисловие

Цели и принципы стандартизации в Российской Федерации установлены Федеральным законом от 27 декабря 2002 года № 184-ФЗ «О техническом регулировании», а правила применения национальных стандартов Российской Федерации — ГОСТ Р 1.0-2004 «Стандартизация в Российской Федерации. Основные положения».

Сведения о стандарте

1. Подготовлен Государственным научным учреждением Всероссийским научно-исследовательским институтом консервной и овощесушильной промышленности Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИКОП Россельхозакадемии) на основе аутентичных переводов на русский язык стандартов, указанных в пункте 4.

2. Внесен Техническим комитетом по стандартизации ТК 335 «Методы испытания агропромышленной продукции на безопасность».

3. Утвержден и введен в действие Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 30 ноября 2010 г. № 598-ст.

4. Настоящий стандарт включает в себя модифицированные основные положения следующих международных стандартов:

• ИСО 21528-1:2004 «Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Горизонтальные методы для обнаружения и подсчета бактерий Enterobacteriaceae. Часть 1. Обнаружение и подсчет методом MPN с предварительным обогащением» (ISO 21528-1:2004 «Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal methods for the detection and enumeration of Enterobacteriaceae — Part 1: Determination and enumeration by MPN technique with pre-enrichment»);
• ИСО 21528-2:2004 «Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Горизонтальные методы для обнаружения и подсчета бактерий Enterobacteriaceae. Часть 2. Метод подсчета колоний» (ISO 21528-2:2004 «Microbiology of food and animal feeding stuffs — Horizontal methods for the detection and enumeration of Enterobacteriaceae — Part 2: Colony-count method») путем изменения содержания отдельных структурных элементов, которые выделены курсивом. Оригинальный текст русской версии этих структурных элементов примененных международных стандартов и объяснения причин внесения дополнений приведены в тексте в виде примечаний.

Сравнение структуры настоящего стандарта со структурой указанных международных стандартов приведено в дополнительном Приложении ДВ.

Наименование настоящего стандарта изменено относительно наименования указанных международных стандартов для приведения в соответствие с ГОСТ Р 1.5-2004 <*> (подраздел 3.5).

<*> Заменен на ГОСТ Р 1.7-2008 в части разд. 8 и Приложений Ж, И, К.

5. Введен впервые.

6. Переиздание. Март 2012 г.

Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется в ежегодно издаваемом информационном указателе «Национальные стандарты», а текст изменений и поправок — в ежемесячно издаваемых информационных указателях «Национальные стандарты». В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ежемесячно издаваемом указателе «Национальные стандарты». Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет.

Введение

В настоящий стандарт включены дополнительные по отношению к международным стандартам ИСО 21528-1 и ИСО 21528-2 требования, отражающие потребности национальной экономики Российской Федерации, а именно:

• введен дополнительный метод посева на поверхность агаризованной среды для твердых пищевых продуктов, содержащих в 1 г не менее 1500 КОЕ бактерий семейства Enterobacteriaceae, и для жидких пищевых продуктов, содержащих в 1 см3 не менее 150 КОЕ бактерий семейства Enterobacteriaceae. Рост факультативно-анаэробных бактерий возможен на поверхности среды, и этот поверхностный рост облегчает дальнейшую идентификацию бактерий, метод посева на поверхность агаризованной среды предусмотрен ГОСТ 26670. Также с использованием этого метода предусмотрено выявление бактерий семейства Enterobacteriaceae, при условии, что пробу продукта для анализа, в которой предусмотрено выявление, возможно посеять по этому методу;
• включен метод посева мембранных фильтров, который также является разновидностью посева на поверхность агаризованной питательной среды;
• в раздел 2 «Нормативные ссылки» введены ссылки на национальные стандарты Российской Федерации;
• предусмотрен, при выявлении или при определении количества по методу НВЧ бактерий семейства Enterobacteriaceae, непосредственный посев в селективные питательные среды для пищевых продуктов, в которых микроорганизмы не подвергнуты каким-либо сублетальным воздействиям;
• для увеличения объема или массы пробы продукта для анализа предусмотрено использование для посева питательных сред двойной концентрации;
• при испытании высококислотных продуктов для создания оптимальных условий роста микроорганизмов предусмотрено доведение pH до нейтрального значения в самих продуктах или в посевах;
• предусмотрено использование дополнительных питательных сред и реактивов, традиционно используемых в Российской Федерации для выявления бактерий семейства Enterobacteriaceae;
• в подтверждающие тесты введен метод окраски по Граму, так как бактерии семейства Enterobacteriaceae это, прежде всего, грамотрицательные бактерии, а при идентификации переходят от общих признаков к частным;
• дополнительное Приложение ДА «Схемы методов выявления и определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae по методу НВЧ»;
• дополнительное Приложение ДБ «Расчет наиболее вероятного числа микроорганизмов»;
• дополнительное Приложение ДВ «Сопоставление структуры настоящего стандарта со структурой примененных в нем международных стандартов ИСО 21528-1 и ИСО 21528-2»;
• не включены в национальный стандарт:
• ссылки на ИСО 6887 (четыре части) и ИСО 8261, касающиеся требований к подготовке проб для проведения испытания, так как подготовку проб проводят по ГОСТ 26669;
• ссылки на ИСО/ТУ 11133 (две части), касающийся требований по обеспечению качества подготовки культуральных сред, так как эти требования включены в национальный стандарт;
• Приложение А (нормативное) «Схема методики обнаружения» и Приложение В «Схема процедуры для метода НВЧ» (ИСО 21528-1), которые для удобства пользования объединены в справочном Приложении ДА национального стандарта;
• Приложение А (нормативное) «Доверительные пределы для оценки небольших количеств колоний» (ИСО 21528-2), т.к. эта информация содержится в ГОСТ 26670;
• структурный элемент «Библиография», так как соответствующая ссылка отсутствует в национальном стандарте.

1. Область применения

Настоящий стандарт распространяется на пищевые продукты, а также корма для животных, пробы окружающей среды в сфере производства и обработки пищевых продуктов и устанавливает:

• качественный метод выявления бактерий семейства Enterobacteriaceae;
• количественный метод наиболее вероятного числа (НВЧ);
• количественные методы посева в &или на& агаризованные селективно-диагностические среды.

Метод НВЧ применяют для пищевых продуктов, содержащих в 1 г твердого продукта не более 150 или в 1 см3 жидкого продукта не более 15 клеток бактерий семейства Enterobacteriaceae.

Метод посева в агаризованные селективно-диагностические среды применяют для пищевых продуктов, содержащих в 1 г твердого продукта не менее 150 или в 1 см3 жидкого продукта не менее 15 колониеобразующих единиц (КОЕ) бактерий семейства Enterobacteriaceae.

&Метод посева на агаризованные селективно-диагностические среды применяют для пищевых продуктов, содержащих в 1 г твердого продукта не менее 1500 или в 1 см3 жидкого продукта не менее 150 КОЕ бактерий семейства Enterobacteriaceae.&

Примечание. Метод посева на поверхность агаризованной среды предусмотрен ГОСТ 26670 и введен дополнительно в связи с тем, что рост факультативно-анаэробных бактерий возможен на поверхности среды и этот поверхностный рост облегчает дальнейшую идентификацию бактерий.

2. Нормативные ссылки

В настоящем стандарте использованы нормативные ссылки на следующие стандарты:

ГОСТ Р ИСО 7218-2008 Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Общие требования и рекомендации по микробиологическим исследованиям

&ГОСТ Р 51426-99 (ИСО 6887-83) Микробиология. Корма, комбикорма, комбинированное сырье. Общее руководство по приготовлению разведений для микробиологических исследований

ГОСТ Р 54004-2010 Продукты пищевые. Методы отбора проб для микробиологических испытаний

ГОСТ 3622-68 <*> Молоко и молочные продукты. Отбор проб и подготовка их к испытанию&

<*> Заменен на ГОСТ 26809-86 в части правил приемки, методов отбора и подготовки проб к анализу.

&ГОСТ 6672-75 Стекла покровные для микропрепаратов. Технические условия

ГОСТ 9284-75 Стекла предметные для микропрепаратов. Технические условия

ГОСТ 10444.1-84 Консервы. Приготовление растворов реактивов, красок, индикаторов и питательных сред, применяемых в микробиологическом анализе

ГОСТ 13496.0-80 Комбикорма, сырье. Методы отбора проб

ГОСТ 25336-82 Посуда и оборудование лабораторные стеклянные. Типы, основные параметры и размеры

ГОСТ 26669-85 Продукты пищевые и вкусовые. Подготовка проб для микробиологических анализов

ГОСТ 26670-91 Продукты пищевые. Методы культивирования микроорганизмов

ГОСТ 30425-97 Консервы. Метод определения промышленной стерильности&

Примечание. При пользовании настоящим стандартом целесообразно проверить действие ссылочных стандартов в информационной системе общего пользования — на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет или по ежегодно издаваемому информационному указателю «Национальные стандарты», который опубликован по состоянию на 1 января текущего года, и по соответствующим ежемесячно издаваемым информационным указателям, опубликованным в текущем году. Если ссылочный стандарт заменен (изменен), то при пользовании настоящим стандартом следует руководствоваться заменяющим (измененным) стандартом. Если ссылочный стандарт отменен без замены, то положение, в котором дана ссылка на него, применяется в части, не затрагивающей эту ссылку.

3. Термины и определения

&В настоящем стандарте применены следующие термины с соответствующими определениями:&

3.1. бактерии семейства Enterobacteriaceae: &Факультативно-анаэробные грамотрицательные бактерии&, которые образуют типичные колонии на агаризованных селективно-диагностических средах, сбраживают глюкозу, &с образованием или без образования газа&, и дают отрицательную реакцию на оксидазу.

3.2. выявление бактерий семейства Enterobacteriaceae: Определение присутствия или отсутствия бактерий семейства Enterobacteriaceae в определенной массе или объеме продукта.

3.3. определение количества бактерий семейства Enterobacteriaceae:

&3.3.1. Количество бактерий, содержащееся в 1 см3 или 1 г продукта, определенное путем посева продукта и/или его разведений в или на агаризованную селективно-диагностическую среду.

3.3.2 Количество бактерий, содержащееся в 1 см3 или 1 г продукта, определенное по методу НВЧ.&

3.4. Выявление и определение количества бактерий семейства Enterobacteriaceae проводят по методам, приведенным в настоящем стандарте.

семейства Enterobacteriaceae по методу НВЧ

&Метод выявления и определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae по методу НВЧ основан на высеве определенного количества продукта и/или разведений пробы для анализа в жидкую неселективную среду, инкубировании посевов, пересеве культуральной жидкости в жидкую селективную среду, учете положительных пробирок, и пересева культуральной жидкости на поверхность агаризованной селективно-диагностической среды для подтверждения по биохимическим и культуральным признакам роста принадлежности выделенных типичных колоний к бактериям семейства Enterobacteriaceae.&

4.1 Выявление бактерий семейства Enterobacteriaceae

4.1.1 Предварительное обогащение в неселективной среде

В забуференную пептонную воду высевают пробу для анализа, предназначенную для испытания, затем инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (18 +/- 2) ч.

4.1.2 Обогащение в селективной жидкой среде

Пробирку с селективной средой инокулируют 1 см3 из пробирки, полученной по 4.1.1, и инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

4.1.3 Выделение типичных колоний

На поверхность селективно-диагностической агаризованной среды высевают культуру, полученную по 4.1.2, посевы инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C.

Посевы просматривают через (24 +/- 2) ч для определения наличия типичных для бактерий семейства Enterobacteriaceae колоний.

4.1.4 Подтверждение принадлежности выделенных типичных колоний к бактериям семейства Enterobacteriaceae

Типичные колонии, полученные по 4.1.3, пересевают на поверхность питательного агара для дальнейшего подтверждения принадлежности выделенных культур к бактериям семейства Enterobacteriaceae.

&4.1.5. Схема выявления бактерий семейства Enterobacteriaceae приведена в справочном Приложении ДА.&

4.2 Определение количества бактерий семейства Enterobacteriaceae (метод НЧВ)

4.2.1 Предварительное обогащение в неселективной среде

Для посева используют не менее трех последовательных проб для анализа, отличающихся между собой в 10 раз по массе или объему. Каждой пробой для анализа засевают три повторности. Выбираемая последовательность разведений для посева зависит от предполагаемого уровня обсемененности продукта бактериями семейства Enterobacteriaceae или от нормативных значений.

Предварительное неселективное обогащение проводят путем посева продукта и/или его разведений в забуференную пептонную воду.

Посевы инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (18 +/- 2) ч.

4.2.2 Обогащение в селективной жидкой среде

Пробирки с селективной средой инокулируют 1 см3 из каждого посева, полученного по 4.2.1, и инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

4.2.3. Выделение типичных колоний, подтверждение принадлежности выделенных типичных колоний к бактериям семейства Enterobacteriaceae

Выделение типичных колоний, подтверждение принадлежности выделенных типичных колоний к бактериям семейства Enterobacteriaceae проводят по 4.1.3 и 4.1.4.

4.2.4. Схема &определения количества бактерий& семейства Enterobacteriaceae &по методу НВЧ с предварительным обогащением& приведена &в справочном Приложении ДА&.

4.2.5. Наиболее вероятное число бактерий семейства Enterobacteriaceae в 1 см3 или 1 г пробы продукта (НВЧ) рассчитывают исходя из числа посевов, в которых подтверждено присутствие этих бактерий. &Определение наиболее вероятного числа — в соответствии с таблицей Приложения ДБ.

4.3. При выявлении бактерий семейства Enterobacteriaceae и определения их количества по методу НВЧ в свежих продуктах, не содержащих сублетально поврежденных микроорганизмов, подвергнутых каким-либо воздействиям, например сушке, заморозке и т.д., допускается высевать пробу продукта для анализа и/или его разведения непосредственно в селективные среды, минуя этап неселективного обогащения.

Количество высеваемого продукта или его разведения и среды должно быть в соотношении не менее чем 1:10.

Для увеличения массы или объема высеваемой пробы продукта допускается использование селективных жидких сред двойной концентрации.

При непосредственном посеве продукта в селективную среду посевы инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение 48 ч.&

Примечание. 4.3 введен в связи с тем, что непосредственный посев в селективные питательные среды для пищевых продуктов, в которых микроорганизмы не подвергнуты каким-либо сублетальным воздействиям, предусмотрен для упрощения испытания и сокращения его продолжительности.

семейства Enterobacteriaceae (подсчет колоний)

&Методы определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae посевом в или на агаризованные селективно-диагностические среды основаны на посеве определенного количества продукта и/или его разведений в или на агаризованную селективно-диагностическую среду, инкубировании посевов, подсчете типичных колоний, подтверждении по биохимическим и культуральным признакам принадлежности выделенных типичных колоний к бактериям семейства Enterobacteriaceae.&

5.1 Метод посева в агаризованную селективно-диагностическую среду

5.1.1. Для определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae по 1 см3 продукта, если продукт жидкий, или по 1 см3 исходного разведения в случае нежидкого продукта вносят в каждую из двух стерильных чашек Петри.

Другую пару чашек используют для более разведенного высеваемого продукта — исходной суспензии и/или десятикратных разведений продукта.

Чашки с внесенным в них продуктом и/или его разведением заливают селективно-диагностической агаризованной питательной средой.

Посевы в чашках инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

5.1.2. После инкубирования посевов отбирают чашки, на которых выросло от 15 до 150 типичных колоний. Подсчитывают на отобранных чашках количество выросших типичных колоний.

&При посеве методом мембранных фильтров на них подсчитывают колонии в том случае, если их менее 15.&

Примечание. Дополнение введено в связи с тем, что поверхность мембранного фильтра намного меньше, чем чашки Петри.

Выбирают по три типичных колонии каждого типа для пересева на поверхность питательного агара для дальнейшего подтверждения принадлежности выросших культур к бактериям семейства Enterobacteriaceae.

&5.2. Метод посева на агаризованную селективно-диагностическую среду

5.2.1. На подсушенную поверхность агаризованной селективно-диагностической среды двух чашек Петри наносят по 0,1 — 0,2 см3 продукта, если продукт жидкий, или исходной суспензии в случае нежидкого продукта.

Другую пару чашек используют для других количеств высеваемого продукта — исходной суспензии и/или десятикратных разведений продукта.

Внесенный в чашки продукт или его разведения распределяют по поверхности селективно-диагностической агаризованной питательной среды стерильным шпателем.

Посевы в чашках инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

5.2.2. Подсчет и отбор типичных колоний для дальнейшего подтверждения их принадлежности к бактериям семейства Enterobacteriaceae проводят по 5.1.2.&

Примечание. 5.2 введен дополнительно в связи с включением в настоящий стандарт метода посева на поверхность питательных сред.

5.3. Количество продукта и/или его разведений для посева в &или на& агаризованную селективно-диагностическую среду зависит от предполагаемого уровня обсемененности продукта бактериями семейства Enterobacteriaceae или от нормативных значений.

5.4. &Количество& бактерий семейства Enterobacteriaceae на 1 см3 или на 1 г анализируемого продукта &пересчитывают по ГОСТ 26670&, исходя из числа подтвержденных типичных колоний, выросших на чашках Петри при посеве в &или на& агаризованные селективно-диагностические среды.

&6. Питательные среды и растворы реактивов&

Химические вещества, используемые для приготовления питательных сред и реактивов, должны быть аналитического качества, а вода дистиллированной.

6.1 Селективная среда обогащения: глюкозный бульон с желчью и бриллиантовым зеленым

6.1.1 Состав

    ферментативный гидролизат животных тканей, г                   10,0
    глюкоза, г                                                      5,0

натрий фосфорнокислый двузамещенный безводный (Na_{2}HPO_{4}) , г 6,45

калий фосфорнокислый однозамещенный безводный (KH_{2}PO_{4}) , г 2,0

    говяжья желчь для бактериологического использования, г         20,0
    бриллиантовый зеленый, г                                        0,0125

&(или 2,5 см3 раствора, приготовленного по 6.1.3, в случае приготовления среды из отдельных компонентов);&

вода, см3 1000

6.1.2 Приготовление

Растворяют компоненты или дегидратированную основу среды в воде. Нагревают среду на слабом огне до кипения, кипятят 1 — 2 мин, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, доводят объем до 1 дм3, охлаждают до температуры 45 °C — 55 °C. Устанавливают pH так, чтобы он составлял (7,2 +/- 0,2) при температуре 25 °C, после чего среду доводят до кипения.

Среду не стерилизуют.

&Среду разливают в стерильную посуду:

• по 10 см3 в пробирки размером приблизительно 16 x 160 мм при использовании среды нормальной концентрации;
• по 10 см3 в пробирки размером приблизительно 20 x 200 мм при использовании среды двойной концентрации;
• по 90 см3 в колбы.&

Примечание. Дополнение введено в связи с тем, что использование сред двойной концентрации предусматривает добавление количества продукта или его разведения по объему, равному количеству среды, для этого должны использоваться пробирки большей вместимости.

Среду хранят при температуре (5 +/- 3) °C не более 1 мес.

6.1.3 Раствор бриллиантового зеленого

&6.1.3.1. Состав:

    бриллиантовый зеленый, г                                       0,5
    Вода, см3                                                    100

6.1.3.2 Приготовление

Бриллиантовый зеленый переносят в фарфоровую ступку и постепенно растворяют в воде. Раствор переливают в мерную колбу вместимостью 100 см3 и доводят водой до метки.&

Примечание. Пункт 6.1.3 введен дополнительно в связи с тем, что в стандартах ИСО предусмотрено внесение красок в дегидратированную основу среды в сухом виде, а при приготовлении среды из отдельных компонентов краски вносятся в виде растворов (см. также 6.2.3, 6.2.4, 6.4.3)

6.2 Глюкозный агар с желчью и фиолетовым красным (VRBG)

6.2.1 Состав:

    ферментативный гидролизат животных тканей, г                   7,0
    экстракт дрожжей, г                                            3,0
    говяжья желчь для бактериологического использования, г         1,5
    глюкоза, г                                                    10,0
    натрий хлористый, г                                            5,0
    нейтральный красный, г                                         0,03

&(или 1 см3 раствора, приготовленного по 6.2.3, в случае приготовления среды из отдельных компонентов);&

кристаллический фиолетовый, г 0,002 &(или 0,2 см3 раствора, приготовленного по 6.2.4, в случае приготовления среды из отдельных компонентов);&

агар, г 9 — 18 (зависит от желирующей способности агара);

вода, см3 1000

6.2.2 Приготовление

Растворяют компоненты или дегидратированную основу среды в воде. Нагревают среду на слабом огне до кипения, кипятят 1 — 2 мин, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, доводят объем до 1 дм3, охлаждают до температуры 45 °C — 55 °C. Устанавливают pH так, чтобы он составлял (7,4 +/- 0,2) при температуре 25 °C, после чего среду доводят до кипения, разливают в стерильные колбы. Среду не стерилизуют.

Расплавленную среду с момента ее приготовления хранят не более 4 ч.

&6.2.3. Раствор нейтрального красного

6.2.3.1 Состав:

    нейтральный красный, г                                         3,0
    вода, см3                                                    100

6.2.3.2 Приготовление

Нейтральный красный переносят в фарфоровую ступку и постепенно растворяют в воде. Раствор переливают в мерную колбу вместимостью 100 см3 и доводят водой до метки.

6.2.4 Раствор кристаллического фиолетового

6.2.4.1 Состав:

    кристаллический фиолетовый, г                                  1,0
    вода, см3                                                    100

6.2.4.2 Приготовление

Кристаллический фиолетовый переносят в фарфоровую ступку и постепенно растворяют в воде. Раствор переливают в мерную колбу вместимостью 100 см3 и доводят водой до метки.&

Примечание. Пункты 6.2.3 - 6.2.4 введены дополнительно в соответствии с 6.1.2.

6.2.5 Приготовления чашек Петри с агаром

Приблизительно по 15 см3 агаризованной среды, охлажденной до температуры 44 °C — 47 °C, разливают в стерильные чашки Петри и дают затвердеть.

Непосредственно перед использованием подсушивают поверхность среды в чашках Петри, предпочтительно при снятых крышках и поверхностью агара, смотрящей вниз, в сушильном шкафу до тех пор (около 30 мин), пока на поверхности агара не останется влаги.

Если среда приготовлена заранее, то не подсушенную среду в чашках Петри можно хранить в условиях, которые не приведут к изменению химического состава среды, до двух недель при температуре (5 +/- 3) °C.

6.3 Питательный агар

6.3.1 Состав

    мясной экстракт, г                                             3,0
    ферментативного гидролизат животных тканей, г                  5,0
    натрий хлористый, г                                            5,0
    агар, г                                                      9 - 18

(зависит от желирующей способности агара)

вода, см3 1000

6.3.2 Приготовление

Растворяют компоненты или дегидратированную основу среды в воде. Нагревают среду на слабом огне до кипения, кипятят 1 — 2 мин, доводят объем до 1 дм3, охлаждают до температуры 45 °C — 55 °C. Устанавливают pH так, чтобы после стерилизации он составлял (7,3 +/- 0,2) при температуре 25 °C. Разливают среду по колбам или пробиркам и стерилизуют в автоклаве при температуре (121 +/- 1) °C в течение 15 мин.

6.4 Глюкозный агар

6.4.1 Состав

    ферментативный гидролизат казеина, г                           10,0
    экстракт дрожжей, г                                             1,5
    глюкоза, г                                                     10,0
    натрий хлористый, г                                             5,0
    бромкрезоловый пурпуровый, г                                    0,015

&(или 1,5 см3 раствора, приготовленного по 6.4.3, в случае приготовления среды из отдельных компонентов);&

агар, г 9 — 18 (зависит от желирующей способности агара)

Вода, см3 1000

6.4.2 Приготовление

Растворяют компоненты или дегидратированную основу среды в воде. Нагревают среду на слабом огне до кипения, кипятят 1 — 2 мин, доводят объем до 1 дм3, охлаждают до температуры 45 °C — 55 °C. Устанавливают pH так, чтобы он составлял (7,0 +/- 0,2) при температуре 25 °C. Разливают среду по 5 см3 в пробирки и стерилизуют в автоклаве при температуре (112 +/- 1) °C в течение 20 мин.

Примечание. Изменение режима стерилизации среды введено в связи с тем, что среды Гисса с углеводами для предотвращения разложения углеводов стерилизуют при 112 °C.

Пробирки после стерилизации оставляют в вертикальном положении. Приготовленную среду можно хранить при температуре (5 +/- 3) °C не более 1 нед. Если среда хранилась при температуре (5 +/- 3) °C, то для удаления кислорода воздуха, непосредственно перед использованием, среду прогревают (регенерируют) в кипящей водяной бане или текучим паром в автоклаве в течение 15 мин, затем быстро охлаждают до температуры инкубации посевов.

&6.4.3. Раствор бромкрезолового пурпурового

6.4.3.1 Состав:

    бромкрезоловый пурпуровый, г                                    1
    раствор гидроокиси натрия молярной концентрацией               19

с (NaOH) = 0,1 моль/дм3, см3

вода, см3 80

6.4.3.2 Приготовление

Бромкрезоловый пурпуровый переносят в фарфоровую ступку с 19 см3 раствора гидроокиси натрия молярной концентрацией с (NaOH) = 0,1 моль/дм3 и после растворения добавляют воду.&

Примечание. Пункт 6.4.3 введен дополнительно в соответствии с 6.1.2.

&6.5. Селективная обогатительная среда (среда Кесслера)

6.5.1 Состав:

    пептон, г                                                     10,0
    глюкоза, г                                                     2,5
    желчь, г                                                       5,0
    раствор кристаллического фиолетового, приготовленный           2,0

по 6.2.4, см3

вода, см3 1000

6.5.2 Приготовление

При нагревании растворяют компоненты в воде. Нагревают на слабом огне до кипения, кипятят 1 — 2 мин, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, доводят объем до 1 дм3, охлаждают до температуры 45 °C — 55 °C и устанавливают pH так, чтобы после стерилизации он составлял (7,2 +/- 0,1) при температуре 25 °C.

Среду разливают по 6.1.2.

Стерилизуют среду в автоклаве при температуре (115 +/- 1) °C в течение 20 мин.

6.6 Селективная обогатительная среда (бульон Мак-Конки)

6.6.1 Состав:

    пептон, г                                                      20,0
    глюкоза, г                                                     10,0
    желчь, г                                                        5,0
    раствор бромкрезолового пурпурового, приготовленный             1,0

по 6.4.3, см3

    натрий хлористый, г                                             5,0
    вода, см3                                                    1000

6.6.2 Приготовление

При нагревании все компоненты растворяют в воде. Нагревают на слабом огне до кипения, кипятят 1 — 2 мин, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, доводят объем до 1 дм3, охлаждают до температуры 45 °C — 55 °C и устанавливают pH так, чтобы после стерилизации он составлял (7,2 +/- 0,1) при температуре 25 °C. Разливают среду по 6.5.2 и стерилизуют в автоклаве при температуре (121 +/- 1) °C в течение 15 мин.

6.7 Агар Эндо

Среду готовят в соответствии с рекомендациями, указанными на этикетке.

6.8 Среда Гисса с глюкозой

Среду готовят по ГОСТ 10444.1 или используют сухую среду с глюкозой, среду готовят в соответствии с рекомендациями, указанными на этикетке.

6.9 ГРМ-агар (сухой питательный агар на основе гидролизата рыбной муки для культивирования микроорганизмов)

Среду готовят в соответствии с рекомендациями, указанными на этикетке.

6.10 Мясо-пептонный агар

Среду готовят по ГОСТ Р 51426 и ГОСТ 10444.1.&

Примечание. 6.5 - 6.10 введены дополнительно для отражения потребностей национальной экономики. Предусмотрено использование дополнительных питательных сред и реактивов, традиционно применяемых в Российской Федерации для выявления бактерий семейства Enterobacteriaceae.

6.11 Реактив для определения оксидазы

6.11.1 Состав:

    N,N,N',N'-тетраметил-n-фенилендиаминдигидрохлорид, г           1,0;
    вода, см3                                                    100

6.11.2 Приготовление

Растворяют компонент в воде температурой 10 °C — 15 °C. Реактив готовят непосредственно перед использованием.

&Для определения оксидазы допускается использование дисков и растворов отечественного и импортного (зарегистрированных в Российской Федерации) промышленного производства. Для контроля качества дисков и растворов используют музейные оксидазоположительные и оксидазоотрицательные культуры.

6.12. При приготовлении селективных жидких сред двойной концентрации количество ингредиентов или дегидратированной основы среды увеличивается в два раза, а количество воды остается без изменения.

6.13. Растворы и реактивы для окраски по Граму готовят по ГОСТ Р 51426 и ГОСТ 10444.1.

Растворы и реактивы для окраски по Граму, а также растворы, приготовленные по 6.1.3, 6.2.3, 6.2.4, 6.4.3, хранят в закрытых сосудах из темного стекла при комнатной температуре не более 3 мес.

6.14. Допускается использование готовых и дегидратированных питательных сред, в т.ч. хромогенных, отечественного и импортного производства, зарегистрированных в Российской Федерации.&

Примечание. 6.12 - 6.14 введены дополнительно для отражения потребностей национальной экономики Российской Федерации.

&7. Аппаратура, посуда, вспомогательные материалы, реактивы&

Приемлемой альтернативой посуды многоразового применения является одноразовая посуда, если она отвечает соответствующим требованиям.

7.1. &Оборудование лабораторное для микробиологических исследований — по ГОСТ Р ИСО 7218 и ГОСТ 10444.1.

7.2.& Аппарат для сухой стерилизации (стерилизационный сушильный шкаф) или влажной стерилизации (автоклав), &с регулирующими устройствами для поддержания заданной температуры, с допустимой погрешностью не более +/- 1 °C&.

7.3 Термостат, поддерживающий температуру (37 +/- 1) °C.

7.4. Баня водяная, поддерживающая заданную температуру от 44 °C до 47 °C с погрешностью +/- 0,5 °C.

7.5. &Прибор для мембранной фильтрации растворов.&

7.6. &Весы лабораторные для взвешивания реактивов с пределами допускаемой абсолютной погрешности однократного взвешивания +/- 0,01 мг и +/- 10 мг.&

7.7. Пробирки и колбы &разной вместимости по ГОСТ 25336. Допускается использование флаконов или бутылок с нетоксичными металлическими или пластиковыми завинчивающимися крышками&.

7.8. &Микроскоп биологический, обеспечивающий просмотр в проходящем свете, с увеличением 900 - 1000^{x} .&

7.9 Петля бактериологическая, с размером диаметра петли около 3 мм.

7.10. pH-метр с диапазоном &измерений pH от 2 до 18, погрешность измерений +/- 0,01 ед. pH& при температуре 20 °C — 25 °C.

7.11. &Стекла предметные по ГОСТ 9284.&

7.12. &Стекла покровные по ГОСТ 6672.&

7.13. Пипетки градуированные или автоматические, вместимостью от &1 до 10 см3 по ГОСТ 29228&.

7.14. Чашки Петри &нормального размера& (диаметр 100 мм) &и/или большого размера (диаметр 150 мм) по ГОСТ 25336&.

7.15. &Бриллиантовый зеленый.&

7.16. &Желчь говяжья сухая.&

7.17. &Экстракт мясной.&

7.18. &Нейтральный красный.&

7.19. &Гидролизат животных тканей ферментативный.&

7.20. &Гидролизат казеина ферментативный.

Допускается применение других средств измерений, вспомогательного оборудования с аналогичными метрологическими и техническими характеристиками, а также материалов по качеству не хуже указанных в разделе 7.

8. Отбор и подготовка проб

8.1. Отбор проб — по ГОСТ Р 54004, 3622 и ГОСТ 13496.0.

Для испытания должна быть отобрана и направлена представительная проба, не поврежденная и не измененная в ходе транспортирования или хранения.

8.2 Подготовка проб — по ГОСТ Р 51426 и ГОСТ 26669.&

Примечание. Раздел 8 введен дополнительно в соответствии с требованиями национальной стандартизации.

&9. Проведение испытания&

9.1 Метод выявления бактерий семейства Enterobacteriaceae

9.1.1. Приготовление исходного и десятикратных разведений — &по ГОСТ Р 51426 и ГОСТ 26669&.

9.1.2 Предварительное обогащение в неселективной среде

В зависимости от предполагаемой обсемененности продукта бактериями семейства Enterobacteriaceae или нормативных значений x см3 жидкой пробы или x см3 исходной суспензии при испытании не жидких продуктов и/или их разведений переносят в пробирку, содержащую забуференную пептонную воду. Соотношение количества высеваемого продукта и забуференной пептонной воды соответственно 1:10.

Посевы инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (18 +/- 2) ч.

9.1.3 Обогащение в селективной жидкой среде

Пробирку с селективной средой инокулируют 1 см3 из пробирки, полученной по 9.1.2, и инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

&При непосредственном посеве продукта в селективную среду в зависимости от требуемых пределов выявления x см3 жидкой пробы или x см3 исходной суспензии при использовании других продуктов переносят в пробирку, содержащую 10 см3 обогатительной селективной среды двойной концентрации для 1 см3 < x <= 10 см3, или в пробирку, содержащую 10 см3 обогатительной селективной среды нормальной концентрации для x <= 1 см3.

При испытании высококислотных продуктов для предотвращения резкого снижения pH (на 0,5 и более) питательных сред pH питательных сред после внесения в них продукта или его разведения доводят до допустимых значений с помощью стерильного раствора гидроокиси натрия, приготовленного по ГОСТ 10444.1, или при приготовлении питательных сред pH устанавливают выше заданного с учетом его последующего снижения при внесении продукта. Количество добавляемого стерильного раствора гидроокиси натрия или величину, на которую необходимо увеличить pH при приготовлении питательных сред, устанавливают опытным путем.

Допускается доводить pH до нейтрального значения с помощью стерильного раствора гидроокиси натрия непосредственно в высококислотном продукте.

Посевы непосредственно в селективную среду инкубируют в течение 24 — 48 ч, через 24 ч проводят предварительный учет роста бактерий в среде, а через 48 ч — окончательный.&

Примечание. Дополнение введено в связи с тем, что подкисление сред в Российской Федерации проводят для создания оптимальных условий для роста микроорганизмов.

9.1.4 Выделение типичных колоний

Используя петлю, пересевают культуры с селективной питательной среды с признаками роста на поверхность одной из селективно-диагностических сред, приготовленных по 6.2 или 6.7.

Посевы инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

9.1.5 Выбор колоний для подтверждения

После инкубирования посевов по 9.1.4 отмечают рост типичных колоний.

На глюкозном агаре с желчью и фиолетовым красным бактерии семейства Enterobacteriaceae образуют колонии розовые, красные или пурпурные (с ореолом или без него).

На среде Эндо бактерии семейства Enterobacteriaceae образуют колонии темно-красные с металлическим блеском или без него, розовые, прозрачные.

Из каждой инкубированной чашки (см. 9.1.4), на которой обнаружены типичные колонии, выбирают по три хорошо изолированные колонии каждого типа и пересевают каждую отобранную колонию отдельно на поверхность питательного агара.

Посевы инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

9.1.6 Подтверждение принадлежности типичных колоний к бактериям семейства Enterobacteriaceae

Принадлежность выросших культур к бактериям семейства Enterobacteriaceae подтверждают по отношению &к окраске по Граму&, отсутствию оксидазы и по ферментации глюкозы.

&9.1.6.1. Окраска по Граму

Приготовление мазков из культур, выросших на скошенной поверхности питательного агара, и окраску их по Граму проводят по ГОСТ 30425.

Бактерии семейства Enterobacteriaceae — грамотрицательные палочки.

Допускается окраску по Граму заменять тестом Грегорсена, для этого на предметном стекле в капле 3%-ного водного раствора калия гидроокиси эмульгируют культуру микроорганизмов, взятую из колонии с агаризованной среды. Если через несколько секунд взвесь ослизняется и за петлей тянутся слизистые нити, то это указывает на принадлежность испытуемой культуры к грамотрицательному виду. У грамположительных бактерий слизистых нитей не образуется.&

Примечание. Пункт 9.1.6.1 введен дополнительно в связи с тем, что бактерии семейства Enterobacteriaceae — это, прежде всего, грамотрицательные бактерии, а при идентификации переходят от общих признаков к частным, поэтому прежде всего необходимо определить отношение выявленных бактерий к окраске по Граму.

9.1.6.2 Определение отсутствия оксидазы

Используя платиново-иридиевую петлю (проволоку) &или& никель-хромовую или стеклянную палочку, отбирают культуры, выросшие на поверхности питательного агара &(см. 9.1.5)& и наносят штрихами на фильтровальную бумагу, смоченную реактивом для определения оксидазы &(6.11)&.

Результат испытания считают отрицательным, если фильтровальная бумага на месте нанесения штрихов не посинела в течение 10 с.

9.1.6.3 Определение ферментации глюкозы

Для определения ферментации глюкозы испытуемую культуру высевают уколом в глюкозный агар (6.4) или среду Гисса с глюкозой (6.8). Посевы термостатируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

&Бактерии семейства Enterobacteriaceae ферментируют глюкозу с образованием только кислоты (цвет среды меняется) или кислоты и газа.

9.1.7. По результатам дополнительного подтверждения к бактериям семейства Enterobacteriaceae относят факультативно-анаэробные,& не образующие спор грамотрицательные оксидазоотрицательные палочки, сбраживающие глюкозу с образованием кислоты или кислоты и газа.

9.2 Метод НВЧ-определение количества бактерий семейства Enterobacteriaceae

9.2.1. Приготовление исходного разведения и десятикратных разведений — &по ГОСТ Р 51426 и ГОСТ 26669&.

Готовят достаточное число разведений &по ГОСТ 26669&, гарантируя, что все пробирки, соответствующие конечному разведению, покажут отрицательный результат.

9.2.2 Инокуляция и инкубация

9.2.2.1. Используют по три пробирки для каждой пробы продукта для анализа и/или его разведения.

9.2.3 Предварительное обогащение в неселективной среде

Посевы для предварительного обогащения проводят с учетом требований 4.2.1.

Например, в каждую из трех пробирок с 9 см3 забуференной пептонной воды &вносят по& 1 см3 продукта, &если анализируемый продукт жидкий, или& вносят по 10 см3 исходного разведения нежидкого продукта в колбу с 90 см3 забуференной пептонной воды.

В каждую из трех пробирок с 9 см3 забуференной пептонной воды вносят &по& 1 см3 первого десятикратного разведения продукта, &если исходный продукт жидкий, или& вносят по 1 см3 исходного разведения продукта, &в случае нежидкого продукта&.

В каждую из трех пробирок с 9 см3 забуференной пептонной воды вносят по 1 см3 второго десятикратного разведения продукта, &если исходный продукт жидкий, или& вносят по 1 см3 первого десятикратного исходного разведения продукта &в случае нежидкого продукта&.

Каждое последующее разведение высевают, используя новую стерильную пипетку. Осторожно перемешивают инокулум и среду.

Посевы инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (18 +/- 2) ч.

9.2.4 Обогащение в селективной жидкой среде

&Пробирки с селективной средой инокулируют 1 см3 из каждого посева, полученного по 9.2.3, и инкубируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

Посев непосредственно в селективную питательную среду проводят в соответствии с 9.1.3.&

9.2.5. Выделение типичных колоний, подтверждение принадлежности выделенных колоний к бактериям семейства Enterobacteriaceae

Выделение типичных колоний, подтверждение принадлежности выделенных колоний к бактериям семейства Enterobacteriaceae проводят по 9.1.4 - 9.1.6.

9.2.6. Наиболее вероятное число бактерий семейства Enterobacteriaceae в 1 см3 или 1 г пробы продукта (НВЧ) рассчитывают исходя из числа посевов, в которых подтверждено присутствие этих бактерий. Для определения наиболее вероятного числа пользуются таблицей ДБ.1 &Приложения ДБ. Для примера, приведенного в 9.2.3, полученные табличные значения делят на десять, так как высевали 1 г (10°), 0,1 г (10^{- 1}) и 0,01 г (10^{- 2}) , а масса (объемы) проб для анализа, выбранные для посева, отличаются от табличных значений в десять раз&.

9.3 Метод определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae — (подсчет колоний)

9.3.1. Приготовление исходного и десятикратных разведений — &по ГОСТ Р 51426 и ГОСТ 26669&.

9.3.2 Метод определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae посевом в агаризованную среду

9.3.2.1. Для посева жидкого продукта или исходного разведения нежидкого продукта или их разведений используют по две чашки Петри для продукта и каждого его разведения. Переносят стерильной пипеткой 1 см3 продукта или разведения в центр каждой чашки. Для посева в чашку Петри продукта и каждого его разведения используют отдельную стерильную пипетку.

9.3.2.2. В каждую чашку Петри (9.3.2.1) наливают около 15 см3 одной из сред (6.2, &6.7&), охлажденной до температуры 44 °C — 47 °C. Время, прошедшее между посевом продукта и/или его разведения в чашку Петри и заливкой среды, не должно превышать 15 мин.

Аккуратно перемешивают инокулят со средой и оставляют смесь для застывания, для этого чашки Петри помещают на холодную горизонтальную поверхность.

&В качестве арбитражной среды используют VRBG-агар.

Одновременно& для контроля стерильности агаризованной среды в стерильную чашку Петри наливают приблизительно 15 см3 среды и инкубируют вместе с посевами.

9.3.2.3. В случае ожидаемого ползучего роста допускается наслаивание второго слоя среды. Для этого после застывания среды в чашках Петри на ее поверхность наливают около 4 см3 использованной агаризованной среды (6.2, &6.7&) температурой 44 °C — 47 °C. Добавленная среда должна затвердеть.

9.3.3. &Метод определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae посевом на агаризованную среду

9.3.3.1. При определении количества бактерий семейства Enterobacteriaceae посевом на агаризованные селективно-диагностические среды (6.2, 6.7) по 0,1 или 0,2 см3 продукта или его разведения наносят на поверхность одной из этих сред, разлитых в чашки Петри по две для каждой пробы продукта для анализа или ее разведения. Подготовку чашек Петри со средой к посеву и посев проводят по ГОСТ 26670.

При применении метода мембранных фильтров фильтры после фильтрации переносят на поверхность агаризованной селективно-диагностической среды, избегая образования пузырьков воздуха между средой и фильтром. Поверхность фильтра с осевшими на ней бактериями должна быть обращена вверх.&

Примечание. Пункт 9.3.3 введен дополнительно в связи с включением в настоящий стандарт метода посева на поверхность питательных сред (раздел 1).

9.3.3.2. Переворачивают крышкой вниз чашки Петри с посевами по 9.3.2.3 и &9.3.3.1& и инкубируют в термостате при температуре (37 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

9.3.4 Подсчет количества колоний

После инкубации по 9.3.3.2 отбирают чашки, на которых выросло от 15 до 150 колоний. Посевы просматривают, отмечают рост типичных колоний и подсчитывают их количество.

Характеристика типичных колоний — по 9.1.5.

9.3.5 Подтверждение принадлежности бактерий из типичных колоний к бактериям семейства Enterobacteriaceae

Отбирают не менее чем по три типичные колонии. Каждую отобранную колонию пересевают на поверхность питательного агара. Посевы термостатируют при температуре (37 +/- 1) °C в течение (24 +/- 2) ч.

Подтверждение принадлежности выделенных типичных колоний к бактериям семейства Enterobacteriaceae &проводят& по 9.1.6.

&9.3.6. Допускается также выявление бактерий семейства Enterobacteriaceae проводить посевом в или на агаризованную среду при условии, что навеску продукта, в которой предусматривается выявление, возможно посеять по этому методу.

При выявлении бактерий семейства Enterobacteriaceae посевом в или на агаризованную среду подсчета количества выросших колоний не проводят.&

Примечание. Пункт 9.3.6 введен дополнительно в связи с тем, что выявление бактерий семейства Enterobacteriaceae в определенной пробе для анализа возможно проводить в Российской Федерации путем посева этой пробы в или на агаризованные среды.

9.3.7 Подсчет и выражение результатов

&Если при подтверждении типичных колоний в двух из трех или трех из трех отобранных колоний подтвержден рост бактерий семейства Enterobacteriaceae, то считают, что все колонии, выросшие на чашке Петри (см. 9.3.4), принадлежат к бактериям семейства Enterobacteriaceae. Если в одной из трех колоний подтвержден рост бактерий семейства Enterobacteriaceae, то количество бактерий семейства Enterobacteriaceae определяют, исходя из процентного отношения подтвержденных колоний к общему количеству колоний, взятых для подтверждения.

Пересчет количества бактерий семейства Enterobacteriaceae, определенного посевом в или на агаризованные среды, на 1 г (см3) продукта проводят по ГОСТ 26670.

Результаты определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae и выявления их в определенной пробе продукта для анализа выражают по ГОСТ 26670.&

Примечание. Пункт 9.3.7 введен дополнительно в связи с тем, что обработка и выражение результатов микробиологических испытаний приведены в ГОСТ 26670.

10. Протокол испытания

&Результаты оценивают по каждой пробе для анализа отдельно.&

Протокол испытания должен включать:

• всю информацию, необходимую для полной идентификации продукта;
• используемый метод в соответствии с настоящим стандартом;
• все детали испытания, не установленные настоящим стандартом;
• полученный(е) результат(ы).

(справочное)

СЕМЕЙСТВА ENTEROBACTERIACEAE ПО МЕТОДУ НВЧ&

ДА.1. Схема определения количества бактерий семейства Enterobacteriaceae по методу НВЧ с предварительным обогащением приведена на рисунке ДА.1.

ДА.2. Схема выявления бактерий семейства Enterobacteriaceae с предварительным обогащением и без предварительного обогащения приведена на рисунке ДА.2.

(справочное)

&РАСЧЕТ НАИБОЛЕЕ ВЕРОЯТНОГО ЧИСЛА МИКРООРГАНИЗМОВ&

Расчет наиболее вероятного числа микроорганизмов приведен в таблице ДБ.1

Таблица ДБ.1

Описание метода НВЧ и разъяснение по его применению

1. Из пробы продукта для анализа готовят исходное и ряд десятикратных разведений до такой степени, чтобы можно было определить предполагаемое НВЧ бактерий семейства Enterobacteriaceae.

Высеваемые объемы продукта и его разведения выбирают следующим образом:

а) по 1 см3 из разведения 10^{- 1} и последующих более высоких разведений, если необходимо определить количество бактерий семейства Enterobacteriaceae, превышающее 3 клетки в 1 г (см3) продукта;

б) по 10 см3 из разведения 10^{- 1} или 1 см3 неразведенного продукта и по 1 см3 из разведения 10^{- 1} и последующего более высокого разведения, если необходимо определить количество бактерий семейства Enterobacteriaceae, превышающее 3 клетки в 10 г (см3) продукта;

в) по 10 и 1 см3 неразведенного продукта и ряда его разведений, если необходимо определить количество бактерий семейства Enterobacteriaceae, превышающее 3 клетки в 100 г (см3) продукта.

2. Разведения и неразведенный продукт высевают параллельно в три колбы (пробирки) с питательной средой. Инокулум объемом 1 см3 высевают в 10 см3 среды нормальной концентрации, инокулумы объемом 10 см3 высевают в 10 см3 среды двойной концентрации.

3. Посевы инкубируют в условиях, указанных в настоящем стандарте.

4. НВЧ бактерий семейства Enterobacteriaceae определяют, исходя из количества положительных пробирок с посевами по таблице.

5. Для определения НВЧ выбирают три самых высоких последовательных разведений, в первом из которых все три повторности положительные, а в последнем и в последующем уже не оцениваемом разведении все три повторности отрицательные (например: 3, 2, 0 или 3, 2, 1, 0).

6. Если после разведения, в котором все три пробирки были отрицательными, одна из пробирок большего (то есть следующего за ним) разведения окажется положительной (например: 3, 2, 0, 1), то для определения НВЧ учитывают три разведения, начиная с того, в котором количество положительных пробирок было меньше трех (то есть 2, 0, 1).

7. Если после наибольшего разведения с тремя положительными пробирками было посеяно лишь одно разведение, в котором оказались положительными одна или две пробирки, то НВЧ бактерий семейства Enterobacteriaceae записывают как «более чем», так как в последующих разведениях могли бы быть положительные пробирки. Например, при посеве число положительных пробирок соответствовало 3, 3, 1 или 3, 3, 2, то согласно таблице НВЧ будет более 460 или более 1100.

8. Если ни в одном из разведений не было трех положительных пробирок, то для определения НВЧ учитывают три последовательных разведения (например, 2, 2, 1, 0 или 2, 1, 0, 0).

9. Если все пробирки посеянных разведений будут отрицательными (то есть 0, 0, 0), то НВЧ бактерий семейства Enterobacteriaceae ниже числа, выявляемого посеянными разведениями (например, «ниже чем 3 в 10 г») и наоборот, если все пробирки посеянных разведений будут положительными (то есть 3, 3, 3), то НВЧ будет выше его максимального значения, определяемого посеянными разведениями (например, «выше чем 1100 в 1 г»).

При необходимости определения конечного числа бактерий исследование повторяют.

10. Если три десятикратных разведения были более низкими или более высокими по сравнению с приведенными в таблице, то НВЧ бактерий семейства Enterobacteriaceae в продукте будет на столько разрядов ниже или выше, на сколько разрядов посеянные разведения отличаются от табличных.

Например, для комбинации чисел 3, 2, 1 НВЧ составляет 150 микроорганизмов в 1 г продукта, в случае, если посеяны по 1 см3 разведения 10^{- 1} , 10^{- 2} , 10^{- 3} . Если для посева использованы разведения 10^{- 2} , 10^{- 3} , 10^{- 4} , то найденное НВЧ равно 150 · 10 = 1500 микроорганизмов в 1 г (см3). Если для посева использовались 10 и 1 см3 неразведенного продукта и 1 см3 разведения 10^{- 1} , то НВЧ равно 150 : 100 = 1,5 в 1 г (см3) или 15 микроорганизмов в 10 см3 продукта.

11. Из значений НВЧ учитывают те, которые отвечают наиболее вероятным комбинациям трехзначного числа первой категории. Если НВЧ, соответствующего комбинации трехзначного числа первой категории, не получено, то его определяют комбинациями трехзначного числа, соответствующего второй категории.

Приведенные в таблице наиболее вероятные числа соответствуют случаям, когда высевали по 1 см3 из 10^{- 1} , 10^{- 2} , 10^{- 3} разведений, то есть 0,1, 0,01 и 0,001 г (см3) продукта.

Категория 1 — наиболее часто встречаемые комбинации положительных пробирок, вероятность получения которых равна 95%.

Категория 2 — комбинации положительных пробирок, вероятность получения которых равна 4%.

Категория 3 или 0 — комбинации положительных пробирок, вероятность получения которых для нормальных продуктов равна нулю для категории 0 либо маловероятна для категории 3. Комбинации этих категорий могут быть следствием ошибки опыта или присутствия в продукте бактериостатических веществ.

С увеличением числа испытуемых проб от одной и той же партии продукта точность НВЧ повышается на одну, а иногда и на две категории.

Разъяснение к методу определения НВЧ в нежидких продуктах

При определении НВЧ в нежидких продуктах исходное разведение не всегда может быть десятикратным. При испытании нежидких продуктов следует иметь в виду, растворяются ли эти продукты или нет (в этом случае получается смыв с продукта). Если исходное разведение не десятикратное, то оно берется за основу и из него готовят десятикратные разведения.

НВЧ определяют сначала в 1 см3 исходного разведения, а затем это значение пересчитывается на 1 г продукта.

&Пример 1. Испытание растворимых продуктов (сахар, соль, пасты и т.д.)&

Для приготовления исходного разведения 20 г продукта внесли в 50 см3 раствора для приготовления разведений.

20 г + 50 см3 = 70 см3 раствора, который берется за основу для приготовления десятикратных разведений.

Для подсчета по методу НВЧ выбираем 3 последовательных разведения, например:

10 см3 исходного разведения;

1 см3 исходного разведения;

1 см3 первого десятикратного исходного разведения.

Выбранные разведения посеяли в 3-кратной повторности.

Предположим, получены в конце испытания следующие результаты:

    10 см3 исходного разведения          +       +       +       т.е. 3;
    1 см3 исходного разведения           +       -       -       т.е. 1;

1 см3 первого десятикратного

исходного разведения — - - т.е. 0.

По таблице НВЧ для числа 310 находим количество равное 43, это число необходимо разделить на 100, т.к. выбранные для посева разведения отличаются от табличных в 100 раз. Табличные 10^{- 1} , 10^{- 2} , 10^{- 3} , а посеянные 10^{1} , 10^{0} , 10^{- 1} .

43 : 100 = 0,43 клетки — это количество в 1 см3 исходного раствора, принятого за основу.

Пересчитаем это количество на 1 г испытуемого продукта:

0,43 · 70 : 20 = 0,805 клетки в 1 г продукта или приблизительно 8 клеток в 10 г продукта.

&Пример 2. Испытание нерастворимых продуктов (морковь, специи и т.д.)&

При испытании нерастворимых продуктов получается смыв микроорганизмов с продукта. Расчет НВЧ — аналогичный указанному в п. 1, за исключением того, что в расчет берут не 70 см3 (20 г + 50 см3), а 50 см3.

0,43 · 50 : 20 = 1,07 клетки в 1 г или 11 клеток в 10 г.

Таблица ДВ.1

Таблица ДВ.2