---
title: "\"Временные методические указания по лабораторной диагностике гемофилезного полисерозита свиней\""
issuer: "Министерство сельского хозяйства СССР"
status: действует
canonical: "https://bukva.ai/docs/vremennye-metodicheskie-ukazaniya-po-minselhoz-sssr-ministerstvo-4"
---
## "Временные методические указания по лабораторной диагностике гемофилезного полисерозита свиней"
# "Временные методические указания по лабораторной диагностике гемофилезного полисерозита свиней"
(утв. Минсельхозом СССР 17.10.1978)
> [!IMPORTANT]
> Документ включен в Перечень нормативной документации, разрешенной для использования в государственных ветеринарных лабораториях при диагностике болезней животных, рыб, пчел, а также контроля безопасности сырья животного и растительного происхождения (утв. Россельхознадзором 30.07.2009 N 02-03-48/563).
Утверждены
Главным управлением ветеринарии
Минсельхоза СССР
17 октября 1978 года
## ВРЕМЕННЫЕ МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКЕ ГЕМОФИЛЕЗНОГО ПОЛИСЕРОЗИТА СВИНЕЙ
**1. Общие положения.**
1.1. Гемофилезный полисерозит - инфекционное, септическое заболевание поросят послеотъемного периода, характеризующееся серозно-фибринозным воспалением плевры, перикарда, брюшины и суставов.
1.2. Возбудитель болезни - капсулообразующие штаммы Haemophilus parasuis (сем. Brucellaceae, род Haemophilus; Bergey, 1974). Это мелкая (0,2x0,5 мкм), грамотрицательная, неподвижная, не образующая спор, полиморфная палочка, обладающая резко выраженным тропизмом к серозным оболочкам. Для роста на искусственных питательных средах нуждается в специфическом ростовом факторе - дифосфопиридиннуклеотиде (У-фактор), который содержится в крови, дрожжевом экстракте и в продуктах жизнедеятельности некоторых бактерий.
1.3. Лабораторный диагноз на гемофилезный полисерозит устанавливают на основании результатов бактериологического исследования патологического материала от павших или вынужденно убитых животных, а также и биологической пробы.
**2. Бактериологическое исследование.**
2.1. Материал для лабораторного исследования берут не позднее 4 - 6 ч после смерти от 2 - 3 трупов поросят, павших с признаками острого полисерозита и не подвергавшихся антибиотикотерапии. Поверхность кожи в области разреза обрабатывают дезинфицирующим раствором и стерильным инструментом вскрывают брюшную и грудную полости. Затем стерильным шприцем или пастеровской пипеткой набирают экссудат из перитонеальной, плевральной, перикардиальной полостей и переносят в одну стерильную пробирку или флакон. В эту же пробирку (флакон) вносят соскобы, сделанные стерильным скальпелем с поверхности пораженных серозных оболочек (плевра, перикард, перитонеум). От каждого животного патологический материал помещают в отдельную пробирку (флакон), закрывают резиновой пробкой, маркируют и в термосе со льдом нарочным отправляют в ветеринарную лабораторию.
2.2. Исследование патологического материала заключается в выделении чистой культуры H. parasuis и складывается из микроскопии мазков из патологического материала, выделения культур возбудителя на специальных средах, их идентификации и определения патогенности на морских свинках.
2.3. Микроскопическое исследование. Доставленный патологический материал суспендируют непосредственно в пробирке (флаконе). Из суспензии готовят мазки, высушивают их на воздухе, фиксируют над пламенем горелки, окрашивают по Граму и микроскопируют. В мазках возбудитель имеет вид мелких, полиморфных, грамотрицательных палочек, диплобактерий, нитей или коротких цепочек.
2.4. Бактериологическое исследование. Высевы на питательные среды должны быть проведены не позднее 24 ч после взятия патологического материала.
2.4.1. Две-три капли суспензии из экссудата и соскобов с серозных оболочек наносят на поверхность предварительно подсушенного кровяного мясо-пептонного агара в чашке Петри. Стерильным стеклянным шпателем материал распределяют по всей поверхности агара, а затем дробно рассевают на 3 чашки с указанной питательной средой. После 20 - 30-минутного подсушивания бактериологической петлей делают крестообразный посев штрихом по диаметру чашки культуры негемолитического штамма белого стафилококка или кишечной палочки ("баккормилка"). Посевы инкубируют в аэробных условиях при 37 - 38 °C в течение 24 ч.
Субкультуры негемолитических штаммов белого стафилококка или эшерихий поддерживают в лаборатории. Для исследований используют агаровую или бульонную культуры, которые хранят в холодильнике при 4 - 8 °C не более 10 дн.
2.4.2. На кровяном МПА рост гемофильных бактерий наблюдается в зоне, прилегающей к культуре "баккормилки", в виде мелких (0,1 - 0,2 мм), правильной круглой формы негемолитических колоний с гладкой, выпуклой, блестящей поверхностью, слизистой консистенции. Сателлитный рост гемофильных бактерий около "баккормилки" обусловлен диффузией в агаровую среду У-фактора, выделяемого культурой кишечной палочки или стафилококка. Микроскопически видимые колонии гемофильных бактерий растут не далее 1 - 2 см от штриха "баккормилки".
2.4.3. При обнаружении в посевах сателлитных негемолитических колоний из них делают мазки, которые окрашивают по Граму и Гинсу. В мазках из культуры H. parasuis имеет вид мелких (0,2x0,5 мкм) грамотрицательных палочек и нитей различной длины. При окраске по методу Гинса в мазке на темном фоне находят мелкие, палочковидные (нитевидные) бактерии красного цвета, окруженные узкой светлой зоной (капсула).
2.4.4. Из 3 - 4 сателлитных негемолитических колоний бактерий, имеющих типичную для H. parasuis морфологию, делают пересевы в чашки Петри на шоколадный агар, на 10%-ный сывороточный МПА с последующим посевом бактерии-"кормилки". Одновременно делают высев культур на тот же сывороточный МПА без бактерии-"кормилки" (рецепты питательных сред см. в [приложении](#p100024)). Посевы инкубируют 24 ч при 37 - 38 °C.
Культуры, которые не обладают гемолитическими свойствами, не растут на сывороточном МПА, но дают рост на шоколадном и на сывороточном МПА с бактерией-"кормилкой", относят к виду H. parasuis.
2.5. Биологическое исследование для определения патогенных свойств H. parasuis проводят на морских свинках. Для этой цели исследуемую культуру высевают на шоколадный агар и выращивают при 37 - 38 °C в течение 24 ч. Выращенную культуру смывают стерильным 0,85%-ным раствором поваренной соли и доводят концентрацию бактериальной суспензии до 20 ед. мутности по оптическому стандарту. Эту суспензию в дозе 1 мл вводят внутрибрюшинно трем морским свинкам массой 300 - 350 г.
Наблюдение за зараженными животными ведут в течение 5 сут.
Культуру признают патогенной в случае гибели одной или более морских свинок. Из перитонеального и плеврального экссудатов, а также из печени, селезенки и крови сердца каждой павшей морской свинки делают посевы на кровяной или сывороточный МПА в чашках Петри с "баккормилкой". Наличие в посевах роста сателлитных колоний бактерий с типичными морфологическими и тинкториальными свойствами свидетельствует о выделении исходной культуры H. parasuis.
2.6. Лабораторный диагноз на гемофилезный полисерозит считают установленным при выделении из патологического материала культуры H. parasuis, патогенной для морских свинок.
#### 2.7 Срок лабораторного исследования - 8 сут.
2.8. Диагноз на гемофилезный полисерозит устанавливают на основании анализа эпизоотологических, клинических и патологоанатомических данных с обязательным учетом результатов бактериологического исследования материала от павших или вынужденно убитых животных.
## Приложение
**I. Этапы проведения бактериологического исследования:**
1-й день - посев патологического материала на питательные среды. Микроскопия мазков из патологического материала;
2-й день - просмотр посевов, микроскопия культур из колоний, типичных для гемофильных бактерий. Отвивка субкультур;
3-й день - учет роста субкультур на питательных средах. Заражение морских свинок;
4 - 8-й дни - учет результатов биопробы.
**II. Рецепты питательных сред.**
1. Шоколадный агар. К расплавленному 2%-ному МПА (pH 7,2) при температуре 80 - 90 °C добавляют 10% (по объему) стерильной дефибринированной крови лошади или барана. Питательную среду тщательно перемешивают и после охлаждения до 50 - 60 °C разливают в чашки Петри. Среда пригодна для употребления в течение 10 дн. при условии хранения в темноте при 5 - 8 °C.
2. Для культивирования H. parasuis с "баккормилками" используют кровяной МПА (pH 7,2), содержащий 5% крови овцы, и сывороточный МПА (pH 7,2) с добавлением 10% сыворотки крови крупного рогатого скота, лошади или овцы, которые готовят обычным способом.
В качестве питающей бактериальной культуры ("баккормилки") используют любой негемолитический штамм эшерихий или белого стафилококка. Культуру стафилококка легко получить посевом смыва кожных покровов рук на кровяной МПА.
**III. Окраска по методу Гинса.**
К одному объему черной туши добавляют 3 объема дистиллированной воды. Разведенную тушь центрифугируют 15 - 20 мин при 2 - 3 тыс. об/мин для осаждения крупных частиц. Надосадочную жидкость используют для работы.
На предметном стекле в капле туши суспендируют петлю исследуемой агаровой культуры, делают мазок (как мазок из крови), высушивают, фиксируют метиловым или этиловым спиртом в течение 3 - 5 мин. Окрашивают 3 - 5 мин карболовым фуксином Циля, разведенным в соотношении 1:3. Промывают водой, высушивают и микроскопируют. При микроскопировании на темном фоне препарата контрастно выделяются неокрашенные капсулы, внутри которых находятся бактерии красного цвета.
---