Методические указания по групповой идентификации хлорорганических пестицидов и их метаболитов в биоматериале, продуктах питания и объектах окружающей среды методом адсорбционной высокоэффективной жидкостной хроматографии
(утв. Минздравом СССР 29.07.1991 № 6129-91)
29 июля 1991 г. № 6129-91
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО ГРУППОВОЙ ИДЕНТИФИКАЦИИ ХЛОРОРГАНИЧЕСКИХ ПЕСТИЦИДОВ И ИХ МЕТАБОЛИТОВ В БИОМАТЕРИАЛЕ, ПРОДУКТАХ ПИТАНИЯ И ОБЪЕКТАХ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ МЕТОДОМ АДСОРБЦИОННОЙ ВЫСОКОЭФФЕКТИВНОЙ ЖИДКОСТНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ
Настоящие Методические указания предназначены для санитарно-эпидемиологических станций и научно-исследовательских учреждений Минздрава РФ, а также ветеринарных, агрохимических, контрольно-токсикологических лабораторий Минсельхоза РФ и лабораторий других ведомств, занимающихся определением остаточных количеств пестицидов, регуляторов роста растений и биопрепаратов в продуктах питания, кормах и внешней среде.
Методические указания апробированы и рекомендованы в качестве официальных Группой экспертов при Госхимкомиссии по химическим средствам борьбы с вредителями, болезнями растений и сорняками.
1. Краткая характеристика препаратов
Краткие характеристики действующих веществ хлорорганических пестицидов (4,4'-ДДТ и его производные, альдрин, ГПХ, ГПХЭ, даконил, дилор, кельтан, ПХП) и их метаболитов (полихлорфенолы и полихлорбензолы) приведены в книгах: «Методы определения микроколичеств пестицидов в продуктах питания, кормах и внешней среде», М., Колос, 1977, 368 с.; Клисенко М.А., Александрова Л.Г. «Определение остаточных количеств пестицидов», Киев, Здоровье, 1983, 248 с.; «Методические указания по определению микроколичеств пестицидов в продуктах питания, кормах и внешней среде», ч. 1, М., 1987, 276 с.
2. Методика групповой идентификации ХОП и их метаболитов
2.1. Основные положения
2.1.1 Принцип метода
Метод основан на извлечении ХОП и их метаболитов из различных субстратов, очистке и концентрировании экстрактов, последующей идентификации отдельных групп ХОП с помощью адсорбционной ВЭЖХ при спектрофотометрическом детектировании.
2.1.2 Метрологическая характеристика метода
Параметры анализа хлорорганических пестицидов и их метаболитов методом адсорбционной ВЭЖХ представлены в таблице.
И ИХ МЕТАБОЛИТОВ <*>
<*> Предел обнаружения для ДДТ и его производных, а также полихлорфенолов и полихлорбензолов 0,05 — 0,5, для других ХОП — 0,1 — 2,0 мкг в пробе.
| Идентифицируемое соединение | V уд., мкл | Хроматографические зоны, мкл | лямбда макс., нм |
|---|---|---|---|
| 1 | 2 | 3 | 4 |
| ХБ | 160 | 160 — 180 | 220 |
| 1,4-ДХБ | 175 | ||
| 1,2,3-ТХБ | 180 | 240, 270, 290 | |
| 1,2,4-ТХБ | 170 | 230, 270, 290 | |
| 1,3,5-ТХБ | 170 | 230, 280 | |
| 1,2,4,5-ТеХБ | 180 | 220, 250, 290 | |
| 1,2,3,4,5,6-ПХБ | 165 | 230, 250, 290 | |
| 2,4'-ДДТ | 236 | 190 — 260 | 240 |
| 4,4'-ДДТ | 240 | ||
| 2,4'-ДДЭ | 245 | 260 | |
| 4,4'-ДДЭ | 190 | 250 | |
| 2,4'-ДДД | 260 | 230 | |
| 4,4'-ДДД | 255 | 230 | |
| 2-ХФ | 375 | 230 — 530 | 220, 280 |
| 3-ХФ | 230 | ||
| 4-ХФ | 475 | 260 | |
| 2,3-ДХФ | 350 | 220, 280 | |
| 2,4-ДХФ | 370 | 230, 290 | |
| 2,6-ДХФ | 305 | 220, 280 | |
| 3,4-ДХФ | 230 | 230, 290 | |
| 3,5-ДХФ | 275 | 230, 280 | |
| 2,3,4-ТХФ | 350 | 230, 290 | |
| 2,3,5-ТХФ | 275 | 220, 290 | |
| 2,3,6-ТХФ | 280 | 220, 290 | |
| 2,4,5-ТХФ | 290 | 220, 300 | |
| 2,4,6-ТХФ | 280 | 220, 300 | |
| 3,4,5-ТХФ | 290 | 230, 290 | |
| 2,3,4,6-ТеХФ | 370 | 230, 300 | |
| 2,3,5,6-ТеХФ | 250 | 230, 290 | |
| 2,3,4,5,6-ПХФ Альдрин | 530 270 | 180 — 300 | 230, 300 280 |
| Гексахлорпараксилол | 270 | ||
| Гептахлор | 295 | 280 | |
| Гептахлорапоксид | 300 | 280 | |
| Даконил | 180 | 270 | |
| Дилор | 275 | 290 | |
| Кельтан | 180 | 280 | |
| Полихлорпинен | 275 | 280 |
2.1.3 Избирательность метода
Метод групповой идентификации ХОП и их метаболитов избирателен в присутствии азот-, фосфорорганических пестицидов и других органических примесей.
2.2. Реактивы и растворы
Натрия сульфат безводный ч, ГОСТ 4166-76.
Серная кислота чда, ГОСТ 4204-77.
Стандартный раствор многокомпонентной смеси ХОП и их метаболитов в н-гексане с концентрацией индивидуальных компонентов по 100 мкг/мл.
2.3. Приборы и посуда
Хроматограф микроколоночный жидкостный типа «Милихром».
Колонка стандартная металлическая (50 x 2 мм) с сорбентом «Силасорб-600», 5 мкм, Chemapol (ЧССР).
Весы аналитические типа ВЛКТ-50, ГОСТ 24104-80.
Испаритель ротационный типа ИР-1М2, ТУ 25-1173-84.
Линейка металлическая, ГОСТ 25706-83.
Воронки конические, ГОСТ 25336-82.
Колбы круглодонные со шлифом на 100 мл, ГОСТ 25336-82.
Колбы плоскодонные с пришлифованной пробкой на 100 мл, ГОСТ 25336-82.
Пипетки мерные на 1 мл, ГОСТ 1770-74.
Пробирки мерные на 10 мл, ГОСТ 1770-74.
Цилиндры мерные на 50 и 100 мл, ГОСТ 1770-74.
2.4. Отбор, хранение и подготовка проб
Отбор, хранение и подготовка проб к анализу проводятся в соответствии с «Унифицированными правилами отбора проб сельскохозяйственной продукции, пищевых продуктов и окружающей среды для определения пестицидов», утвержденными заместителем Главного государственного санитарного врача СССР 21.08.79 за № 2051-79.
2.5. Подготовка к анализу
2.5.1 Приготовление элюента
Элюирующую смесь — н-гексан — ацетон в объемном соотношении 6:1 готовят в день проведения анализа проб: цилиндром вместимостью 100 мл отмеряют 90 мл н-гексана, который выливают в плоскодонную колбу с пришлифованной пробкой, туда же приливают 15 мл ацетона, колбу закрывают пробкой и ее содержимое перемешивают при легком взбалтывании, затем элюирующую смесь фильтруют через складчатый фильтр с прокаленным сульфатом натрия в сосуд для элюента.
2.5.2 Подготовка хроматографической системы к проведению анализа
Подготовку прибора к хроматографическому анализу начинают с промывки насоса и заполнения его свежеприготовленным элюентом, затем приступают к промывке хроматографической системы прибора и заполнению кюветы сравнения используемым элюентом. После установления равномерного нулевого сигнала детектора и снижения шумов до минимума проводят анализ групповой идентификации ХОП и их метаболитов.
2.6. Проведение анализа
2.6.1 Подготовка пробы к проведению анализа методом ВЭЖХ
Пробы биоматериала (органы, ткани теплокровных или человека; биологические жидкости: кровь, моча, желчь, грудное молоко), пищевых продуктов или объектов окружающей среды массой (или объемом), указанной в известных методиках определения ХОП и (или) их метаболитов, экстрагируют органическим растворителем согласно описанию хода проведения анализа. Для удаления из гексанового экстракта пробы сопутствующих органических примесей природного происхождения, а также азот-, фосфорорганических пестицидов и продуктов их превращения, влияющих на анализ смеси хлорорганических соединений, проводится предварительная их переэкстракция в концентрированную серную кислоту, затем гексановый экстракт высушивают сульфатом натрия и упаривают на ротационном испарителе при 60 °C до небольшого объема, который переносят в мерную пробирку и упаривают досуха в токе азота особой чистоты. Сухой остаток пробы растворяют в 0,2 мл элюента (смесь н-гексана с ацетоном (6:1)) и проводят хроматографическое разделение и идентификацию отдельных групп ХОП и их метаболитов.
2.6.2 Хроматографическое разделение и идентификация отдельных групп ХОП и их метаболитов
Разделение и групповая идентификация ХОП и их метаболитов осуществляются при следующих условиях хроматографирования:
неподвижная фаза — «Силасорб-600», 5 мкм, подвижная фаза — гексан — ацетон в объемном соотношении 6:1; скорость элюирующего потока 200 мкл/мин.; детектор — переменно-волновой спектрофотометр с проточной ячейкой 1,6 мкл; под диапазон чувствительности 3,2 А; время измерения выходного сигнала 0,6 с; скорость протяжки диаграммной ленты 720 мм/ч; длина волны (лямбда) поглощения светового потока (нм) определяется идентифицируемой группой соединений.
Близкие объемы удерживания (V уд.) представителей отдельных групп хлорорганических соединений и подбор соответствующей длины волны позволяют разграничить зоны хроматографирования, характерные для разных групп, что обеспечивает их идентификацию в сложной пестицидной смеси пробы при сопоставлении с зонами хроматографирования стандартной смеси соответствующих групп соединений.
2.6.3 Примеры идентификации отдельных групп ХОП в многокомпонентной смеси неизвестного состава пробы
Пример 1. Из 0,2 мл сконцентрированного раствора пробы в элюенте 20 мкл вводят в хроматографическую колонку и проводят анализ при 280 нм в ранее описанном режиме.
При этой длине волны, близкой к лямбда макс. некоторых из исследуемых соединений, можно идентифицировать:
-
группу соединений представителей различных классов ХОП — альдрин, ГХПК, ГПХ, ГПХЭ и некоторых других (V уд. 180 — 300 мкл).
Идентификация 4,4'-ДДТ и его производных достигается повторным хроматографированием при лямбда 230 нм. Объемы удерживания соединений этой группы находятся в пределах 235 — 260 мкл, а V уд. 4,4'-ДДЭ — 190 мкл. При данных условиях идентификации группы 4,4'-ДДТ и его производных не мешают присутствующие в пробе ХОП других классов (альдрин и другие), а также детектируемые на этой длине волны представители группы хлорбензолов (3-ХФ, 3,4-ДХФ, 2,3,5,6-ТеХФ) с близкими объемами удерживания (230, 250 мкл). Окончательную идентификацию спорных хроматографических сигналов осуществляют подбором необходимой длины волны и снятием развернутых спектров соединений (таблица).
Пример 2. Аликвотная часть конечного раствора исследуемой пробы в элюенте вводится в хроматограф, и проводится групповое разделение смеси ХОП неизвестного состава при 230 нм. В этих условиях регистрируемые выходные сигналы позволяют идентифицировать следующие группы соединений: хлорбензолы (V уд. 160 — 180 мкл); 4,4'-ДДТ и его производные (V уд. 235 — 260; V уд. 4,4'-ДДЭ 190 мкл). Однако идентификация последних может быть затруднена наличием в пробах хлорфенолов (3-, 3,4- и 2,3,5,6-хлорфенолы имеют близкие с компонентами группы ДДТ объемы удерживания). Поэтому окончательную идентификацию осуществляют после повторного хроматографирования пробы при лямбда 220 нм, близкой к лямбда макс. указанных хлорфенольных соединений. Надежность идентификации может быть повышена снятием развернутого спектра поглощения при остановке процесса хроматографирования на соответствующем выходном сигнале с дискретностью 10 или 2 нм.
Пример 3. Аликвотную часть конечного раствора пробы в элюенте хроматографируют в описанном выше режиме при лямбда 280 нм. В этом случае возможна идентификация трех групп соединений: хлорбензолы, хлорфенолы и ХОП различных классов (альдрин и др.), за исключением ДДТ и его производных. Наложение хроматографической зоны ряда хлорфенольных соединений (объем удерживания от 275 до 305 мкл) и представителей хлорорганических пестицидов других классов не позволяет провести правильную идентификацию этих соединений, поэтому анализ повторяют при лямбда 310 нм. В этих условиях ДДТ и его производные и основная часть хлорфенолов (за исключением 2,4,6-ТХФ, 2,3,4,6-ТеХФ и 2,3,4,5,6-ПХФ) не регистрируются. Объемы удерживания двух последних соединений не совпадают с хроматографической зоной ХОП (370 и 530 мкл), что устраняет их влияние на идентификацию. Помехи 2,4,6-ТХФ можно устранить переключением спектрофотометра на 260 нм при повторном анализе пробы, когда выходной сигнал этого соединения не регистрируется, или записав развернутый спектр 2,4,6-ТХФ, имеющий две лямбда макс. — 220 и 300 нм.
При проведении число операций по хроматографическому разделению и идентификации может быть ограничено в соответствии с задачами проводимых исследований.
2.6.4 Обработка результатов анализа
Качественный состав идентифицируемых групп ХОП и их метаболитов определяется путем сопоставления их хроматографических зон в смеси неизвестного состава пробы и многокомпонентной стандартной смеси идентифицируемых групп соединений. После установления группового состава смеси хлорорганических пестицидов в анализируемой пробе, исходя из наличия отдельных групп, выбирают наиболее эффективный метод (ТСХ, ГЖХ, ВЭЖХ) для дальнейшего количественного измерения индивидуальных компонентов отдельных групп и их метаболитов.
3. Требования безопасности
Необходимо соблюдать общепринятые правила безопасности при работе с органическими растворителями, токсичными веществами, концентрированными кислотами.