---
title: "\"ГОСТ Р ИСО 13629-2-2017. Национальный стандарт Российской Федерации. Материалы текстильные. Определение противогрибковой активности текстильных изделий. Часть 2. Чашечный метод подсчета\""
number: "ГОСТ Р ИСО 13629-2-2017"
issuer: "Федеральное агентство по техническому регулированию и метрологии"
status: действует
canonical: "https://bukva.ai/docs/standart-gost-r-iso-13629-2-2017"
---

## "ГОСТ Р ИСО 13629-2-2017. Национальный стандарт Российской Федерации. Материалы текстильные. Определение противогрибковой активности текстильных изделий. Часть 2. Чашечный метод подсчета"

# "ГОСТ Р ИСО 13629-2-2017. Национальный стандарт Российской Федерации. Материалы текстильные. Определение противогрибковой активности текстильных изделий. Часть 2. Чашечный метод подсчета"

(утв. и введен в действие Приказом Росстандарта от 08.08.2017 N 814-ст)

> [!IMPORTANT]
> Документ [введен](#p100011) в действие с 1 мая 2018 года.


<a id="p100001"></a>Утвержден и введен в действие
Приказом Федерального
агентства по техническому
регулированию и метрологии
от 8 августа 2017 г. N 814-ст

<a id="p100002"></a>**НАЦИОНАЛЬНЫЙ СТАНДАРТ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ**

<a id="p100003"></a>**МАТЕРИАЛЫ ТЕКСТИЛЬНЫЕ**

<a id="p100004"></a>**ОПРЕДЕЛЕНИЕ ПРОТИВОГРИБКОВОЙ АКТИВНОСТИ ТЕКСТИЛЬНЫХ ИЗДЕЛИЙ**

<a id="p100005"></a>**ЧАСТЬ 2**

<a id="p100006"></a>**ЧАШЕЧНЫЙ МЕТОД ПОДСЧЕТА**

<a id="p100007"></a>Textiles. Determination of antifungal activity of textile
products. Part 2. Plate count method

<a id="p100008"></a>**(ISO 13629-2:2014, IDT)**

<a id="p100009"></a>**ГОСТ Р ИСО 13629-2-2017**

<a id="p100010"></a>ОКС 59.080.01

<a id="p100011"></a>Дата введения
1 мая 2018 года

<a id="p100012"></a>Предисловие

<a id="p100013"></a>1 ПОДГОТОВЛЕН Акционерным обществом "Всероссийский научно-исследовательский институт сертификации" (ОАО "ВНИИС") на основе собственного перевода на русский язык англоязычной версии стандарта, указанного в [пункте 4](#p100016)
<a id="p100014"></a>2 ВНЕСЕН Техническим комитетом по стандартизации ТК 412 "Продукция текстильной и легкой промышленности"
<a id="p100015"></a>3 УТВЕРЖДЕН И ВВЕДЕН В ДЕЙСТВИЕ Приказом Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии от 8 августа 2017 г. N 814-ст
<a id="p100016"></a>4 Настоящий стандарт идентичен международному стандарту ИСО 13629-2:2014 "Материалы текстильные. Определение противогрибковой активности текстильных изделий. Часть 2. Чашечный метод подсчета" (ISO 13629-2:2014 "Textiles - Determination of antifungal activity of textile products - Part 2: Plate count method", IDT).
<a id="p100017"></a>При применении настоящего стандарта рекомендуется использовать вместо ссылочных международных стандартов соответствующие им национальные и действующие в этом качестве межгосударственные стандарты, сведения о которых приведены в дополнительном [приложении ДА](#p100376)
<a id="p100018"></a>**5 ВВЕДЕН ВПЕРВЫЕ**

<a id="p100019"></a>Правила применения настоящего стандарта установлены в статье 26 Федерального закона от 29 июня 2015 г. N 162-ФЗ "О стандартизации в Российской Федерации". Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется в ежегодном (по состоянию на 1 января текущего года) информационном указателе "Национальные стандарты", а официальный текст изменений и поправок - в ежемесячном информационном указателе "Национальные стандарты". В случае пересмотра (замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет опубликовано в ближайшем выпуске ежемесячного информационного указателя "Национальные стандарты". Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной системе общего пользования - на официальном сайте Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии в сети Интернет (www.gost.ru)

<a id="p100020"></a>1 Область применения

<a id="p100021"></a>Настоящий стандарт устанавливает метод количественного определения противогрибковой активности посредством подсчета колоний на чашках.
<a id="p100022"></a>Настоящий стандарт применим к различным видам текстильных изделий, например волокнам, пряже, тканям, одежде, постельному белью и другим.

<a id="p100023"></a>2 Нормативные ссылки

<a id="p100024"></a>В настоящем стандарте использованы нормативные ссылки на следующие стандарты. Для датированных ссылок применяют только указанные издания. Для недатированных ссылок применяют самые последние издания, включая любые изменения и поправки.
<a id="p100025"></a>ISO 105-F02, Textiles - Tests for colour fastness - Part F02: Specification for cotton and viscose adjacent fabrics (Текстиль. Испытания на устойчивость окраски. Часть F02. Технические условия на хлопчатобумажные и вискозные смежные ткани)
<a id="p100026"></a>ISO 7218:2007 Microbiology of food and animal feeding stuffs - General requirements and guidance for microbiological examinations (Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Общие требования и рекомендации по микробиологическим исследованиям)

<a id="p100027"></a>3 Термины и определения

<a id="p100028"></a>В настоящем стандарте применены следующие термины с соответствующими определениями:
<a id="p100029"></a>3.1 контрольная ткань (control fabric): Ткань, используемая для подтверждения роста испытуемых грибков.
<a id="p100030"></a>*Примечание* 1 - Контрольные образцы отбирают от контрольной ткани.
<a id="p100031"></a>*Примечание* 2 - Контрольная ткань может являться той же, что и испытуемая, но не прошедшей противогрибковой обработки. При отсутствии такой возможности для контрольного образца используют ткань из 100%-ного хлопка по ИСО 105-F02, без флуоресцентных осветлителей или другой отделки, после стирки при температуре 60 °C без моющих средств или осветлителей, придающих блеск, и механического прокручивания и полоскания.

<a id="p100032"></a>3.2 противогрибковое средство (antifungal agent): Средство для предотвращения или ослабления роста грибков или снижения их количества.
<a id="p100033"></a>3.3 противогрибковая обработка (antifungal treatment): Обработка для предотвращения или ослабления роста грибков или снижения их количества.
<a id="p100034"></a>3.4 суспензия (взвесь) спор (spore suspension): Жидкость с равномерно диспергированными в ней грибковыми спорами в стерилизованной воде, содержащей анионное поверхностно-активное вещество.
<a id="p100035"></a>3.5 метод подсчета колоний на чашках (plate count method): Метод, с помощью которого подсчитывают количество грибков, присутствующих после инкубации, по числу колоний, подсчитанных методом десятикратных разведений.
<a id="p100036"></a>*Примечание* - Результаты выражают в колониеобразующих единицах (КОЕ).

<a id="p100037"></a>3.6 нейтрализатор (neutralizer): Химическое вещество, использующееся для дезактивации, нейтрализации или подавления противогрибковых свойств противогрибковых средств.

<a id="p100038"></a>4 Сущность метода

<a id="p100039"></a>Испытуемый и контрольный образцы засевают суспензией спор референтных штаммов грибков и инкубируют при температуре 30 °C в течение 48 ч.
<a id="p100040"></a>В настоящем стандарте рост грибков или противогрибковую активность определяют количественно посредством визуального подсчета колоний на чашке с агаровой средой в единицах КОЕ, а грибковую активность вычисляют по КОЕ.
<a id="p100041"></a>Если образец абсорбирует воду, то рекомендуется использовать метод поглощения. Если образец не поглощает воду, то рекомендуется метод переноса.

<a id="p100042"></a>5 Меры предосторожности

<a id="p100043"></a>Установленные в настоящем стандарте методы требуют применения грибков.
<a id="p100044"></a>Согласно ИСО 7218 такое испытание должен выполнять персонал, обладающий соответствующей подготовкой и опытом в сфере микробиологических исследований.
<a id="p100045"></a>Обязательным являются ознакомление и соблюдение требований всех регламентов, правил и рекомендаций, касающихся соответствующих мер безопасности, в стране, где проводят эти испытания.

<a id="p100046"></a>6 Референтные штаммы грибков

<a id="p100047"></a>Применяемые грибки выбирают по [таблице A.1](#p100326) приложения A.
<a id="p100048"></a>Можно использовать равноценные типы грибков, полученные от других агентств Всемирной Федерации коллекций культур (WFCC) по согласованию между заинтересованными сторонами.
<a id="p100049"></a>В протоколе испытания необходимо указать номер штамма в коллекции и источник поставки использованных грибков.

<a id="p100050"></a>7 Аппаратура

<a id="p100051"></a>Обычное лабораторное оборудование и, в частности, следующее (при необходимости все позиции перед применением рекомендуется стерилизовать).

#### <a id="p100052"></a>7.1 Марля стерилизованная.

<a id="p100053"></a>7.2 Чашки Петри из стекла или пластика диаметрами приблизительно 90 и от 55 до 60 мм.
<a id="p100054"></a>7.3 Автоклав, обеспечивающий поддержание температуры на уровне (121 +/- 2) °C (эквивалентно 103 кПа).
<a id="p100055"></a>7.4 Платиновая петля для работы с колониями диаметром от 2 до 4 мм (или пластиковый эквивалент).
<a id="p100056"></a>7.5 L-образный платиновый крюк для работы с колониями (или пластиковый эквивалент).
<a id="p100057"></a>7.6 Инкубатор (термостат), обеспечивающий поддержание температуры в целевом диапазоне от 20 °C до 37 °C с допуском +/- 2 °C.
<a id="p100058"></a>7.7 Стеклянный флакон объемом 30 см3, с навинчивающейся полипропиленовой крышкой с прокладкой из политетрафторэтилена (ПТФЭ) или силикона. Необходимо тщательно промыть в щелочном или нейтральном моющем средстве, сполоснуть и высушить.

#### <a id="p100059"></a>7.8 Стеклянная воронка.

<a id="p100060"></a>7.9 Пипетки объемом 0,05, 1, 5 и 10 см3 с допуском 5,0%, или меньшего объема, с наконечником из стекла или пластика.
<a id="p100061"></a>7.10 Пипетка Пастера для микробиологических исследований (или пластиковый эквивалент).

#### <a id="p100062"></a>7.11 Коническая колба объемом от 100 до 500 см3.


#### <a id="p100063"></a>7.12 Пинцет, изготовленный из материала, который можно стерилизовать.


#### <a id="p100064"></a>7.13 Центрифуга с ускорением приблизительно 2000g.


#### <a id="p100065"></a>7.14 Пробирки для центрифуги.


#### <a id="p100066"></a>7.15 Гемоцитометр, обеспечивающий измерение от 1·106/см3 до 3·106/см3.


#### <a id="p100067"></a>7.16 Микроскоп с увеличением 200X.

<a id="p100068"></a>7.17 Компактный ультразвуковой очиститель для лабораторных инструментов, частотой приблизительно от 30 до 50 кГц.
<a id="p100069"></a>7.18 pH-метр точностью со стеклянными электродами для биохимических исследований или равноценный.

#### <a id="p100070"></a>7.19 Колба Эрленмейера объемом 100 см3.


#### <a id="p100071"></a>7.20 Шаблон для резки из нержавеющей стали диаметром (3,8 +/- 0,1) см.

<a id="p100072"></a>7.21 Гиря из нержавеющей стали массой (200 +/- 10) г и диаметром (3,5 +/- 0,1) см.
<a id="p100073"></a>7.22 Устройство для встряхивания, способное производить встряхивание на вортексе.
<a id="p100074"></a>7.23 Лопастная мешалка [по типу гомогенизатора Stomacher], обеспечивающая скорость от 6 до 8 ударов/с с подходящими контейнерами однократного применения.
<a id="p100075"></a>7.24 Камера влажности, камера искусственного тропического климата или другая емкость, обеспечивающая поддержание условий высокой влажности.
<a id="p100076"></a>7.25 Холодильник, обеспечивающий поддержание температуры на уровне от 2 °C до 8 °C при допуске +/- 2 °C.
<a id="p100077"></a>7.26 Морозильные камеры, с настройкой на температуры ниже 70 °C, и ниже 20 °C при допуске +/- 2 °C.

#### <a id="p100078"></a>7.27 Весы, обеспечивающие удобство считывания показания до 0,01 г.

<a id="p100079"></a>7.28 Пластиковые мешки однократного применения для пищевых продуктов, которые используют для выемки пробы.
<a id="p100080"></a>7.29 Бокс для микробиологических тестов (MSC Тип II) или другая система с аналогичными характеристиками.
<a id="p100081"></a>7.30 Водяные бани, одна - для поддержания постоянной температуры (46 +/- 2) °C, другая - для поддержания температуры от 70 °C до 90 °C.

<a id="p100082"></a>8 Реактивы и питательные среды

<a id="p100083"></a>Реактивы, используемые в испытаниях, должны быть аналитической чистоты и/или марки, соответствующей применению в микробиологических анализах.
<a id="p100084"></a>Обезвоженные продукты, имеющиеся в продаже, рекомендуется использовать при приготовлении питательных сред строго в соответствии с инструкциями изготовителя.


#### <a id="p100085"></a>8.1 Чистая вода


<a id="p100086"></a>Вода аналитической чистоты для микробиологических сред и приготовления реактивов, которая получена непосредственно после дистилляции и/или ионообменника, или ультрафильтра и/или профильтрована с помощью обратного осмоса (OO = RO). Она не должна содержать токсичных или подавляющих рост грибков веществ.


#### <a id="p100087"></a>8.2 Анионное поверхностно-активное вещество


<a id="p100088"></a>Диоктилсульфосукцинат натрия для приготовления суспензии спор. Концентрация анионного поверхностно-активного вещества в чистой воде [(8.1)](#p100085) составляет 50 мг/дм3. Стерилизуют этот раствор в автоклаве [(7.3)](#p100054) при температуре 121 °C в течение 20 мин.


#### <a id="p100089"></a>8.3 Питательная среда


<a id="p100090"></a>Используют питательную среду, приготовленную, как описано ниже. Можно использовать готовые имеющиеся в продаже среды после соответствующего подтверждения правильности выбора.
<a id="p100091"></a>Для питательных сред, которые не будут использованы сразу же после приготовления, рекомендуется хранение при температуре от 5 °C до 10 °C сроком хранения не более 1 месяца.

##### <a id="p100092"></a>8.3.1 Бульон Сабуро с декстрозой (SDB)


| <a id="p100093"></a>Пептон | <a id="p100094"></a>10 г. |
| --- | --- |
| <a id="p100095"></a>Декстроза | <a id="p100096"></a>20 г. |
| <a id="p100097"></a>Чистая вода | <a id="p100098"></a>1 000 см3. |
| <a id="p100099"></a>Уровень pH после стерилизации | <a id="p100100"></a>5,6 +/- 0,2. |


##### <a id="p100101"></a>8.3.2 Картофельный агар с декстрозой (PDA)


| <a id="p100102"></a>Вытяжка из картофеля | <a id="p100103"></a>200 г. |
| --- | --- |
| <a id="p100104"></a>Декстроза | <a id="p100105"></a>20 г. |
| <a id="p100106"></a>Агар | <a id="p100107"></a>15 г. |
| <a id="p100108"></a>Чистая вода | <a id="p100109"></a>1 000 см3. |
| <a id="p100110"></a>Уровень pH после стерилизации | <a id="p100111"></a>5,6 +/- 0,2. |

<a id="p100112"></a>Эта среда способствует спорообразованию грибков.

##### <a id="p100113"></a>8.3.3 Агар Сабуро с декстрозой (SDA)


| <a id="p100114"></a>Пептон мясной пепсиновый | <a id="p100115"></a>10 г. |
| --- | --- |
| <a id="p100116"></a>Декстроза | <a id="p100117"></a>40 г. |
| <a id="p100118"></a>Агар | <a id="p100119"></a>15 г. |
| <a id="p100120"></a>Чистая вода | <a id="p100121"></a>1 000 см3 (конечный объем) |
| <a id="p100122"></a>Необходимо следовать инструкциям поставщика. |  |
| <a id="p100123"></a>Уровень pH после стерилизации | <a id="p100124"></a>5,6 +/- 0,2. |

<a id="p100125"></a>*Примечание* - Данная среда будет использована для метода переноса.


##### <a id="p100126"></a>8.3.4 Культура на скошенном агаре

<a id="p100127"></a>8.3.4.1 Наливают приблизительно 10 см3 предварительно нагретого и полностью растворенного агара PDA (см. [8.3.2](#p100101)) в стерилизованную пробирку.
<a id="p100128"></a>8.3.4.2 Затыкают пробирку пробкой из хлопковой ваты и стерилизуют паром.
<a id="p100129"></a>8.3.4.3 После стерилизации помещают пробирку под углом приблизительно 15° относительно горизонтального уровня на чистом лабораторном столе и оставляют до застывания содержимого.
<a id="p100130"></a>8.3.4.4 Если на застывшем агаре не выступает вода, то для использования растворяют и отверждают среду заново.

##### <a id="p100131"></a>8.3.5 Нейтрализующий раствор, среда SCDLP


| <a id="p100132"></a>Полисорбат 80 | <a id="p100133"></a>30 г. |
| --- | --- |
| <a id="p100134"></a>Лецитин яичного желтка | <a id="p100135"></a>3 г. |
| <a id="p100136"></a>Гистидина гидрохлорид | <a id="p100137"></a>1 г. |
| <a id="p100138"></a>Мясной или казеиновый пептон | <a id="p100139"></a>1 г. |
| <a id="p100140"></a>Хлорид натрия (NaCl) | <a id="p100141"></a>4,3 г. |
| <a id="p100142"></a>Дигидрофосфат калия | <a id="p100143"></a>3,6 г. |
| <a id="p100144"></a>Гидрофосфат натрия обезвоженный | <a id="p100145"></a>7,2 г. |
| <a id="p100146"></a>Вода | <a id="p100147"></a>1 000 см3 (конечный объем). |
| <a id="p100148"></a>Уровень pH после стерилизации | <a id="p100149"></a>7,2 +/- 0,2. |

<a id="p100150"></a>Если невозможно достичь достаточной нейтрализующей силы, можно отрегулировать содержимое полисорбата 80 или лецитина, или добавить другое нейтрализующее вещество. Имеющиеся в продаже растворы нейтрализаторов можно использовать после тестирования их эффективности (см. [приложение B](#p100356)). Применение неустановленного нейтрализатора необходимо указать в протоколе с наименованием и концентрацией.

<a id="p100151"></a>9 Консервация и использование грибков

<a id="p100152"></a>9.1 Контрольные грибки и споры пересевают и работают с ними в стерильном боксе [(7.29)](#p100080) или равноценном помещении.
<a id="p100153"></a>9.2 Стерилизуют ватные пробки, горловины пробирок в пламени или химическим способом до и после пересева.
<a id="p100154"></a>9.3 Соскребают небольшое количество грибков с первичных грибков, распределяют споры по выступившей воде в нижней части скошенного агара [(8.3.4)](#p100126) и смазывают до верхнего конца скошенной поверхности прямым мазком или зигзагом (см. рисунок 1).

<a id="p100155"></a> ![рис. 1](https://i.bukva.ai/fYlMDzZF/img_0.png) 

<a id="p100156"></a>1 - выступившая вода; 2 - скошенный агар

<a id="p100157"></a>Рисунок 1 - Пересев на скошенный агар

<a id="p100158"></a>9.4 Каждый раз при пересеве грибков другого типа пользуются заново стерилизованными в пламени платиновой (бактериологической) петлей [(7.4)](#p100055) и крюком [(7.5)](#p100056).
<a id="p100159"></a>9.5 Помещают засеянный скошенный агар в инкубатор [(7.6)](#p100057) при температуре (25 +/- 2) °C как минимум на восемь дней и, прежде чем консервировать их при температуре от 5 °C до 10 °C, подтверждают, что образовалось достаточное количество спор.
<a id="p100160"></a>9.6 В течение трех месяцев пересаживают пересеянные грибки на новый скошенный агар для последующей инкубации и консервации.
<a id="p100161"></a>9.7 Повторяют пересев с интервалом до трех месяцев. Пересеваемую культуру, однако, не следует пересевать более пяти раз. Нельзя использовать грибки старше трех месяцев для дальнейшего субкультивирования.
<a id="p100162"></a>*Примечание* - Длительная консервация возможна методом лиофилизации при температуре минус 80 °C.

<a id="p100163"></a>10 Суспензия спор


#### <a id="p100164"></a>10.1 Общие положения


<a id="p100165"></a>*См.* рисунок 2.

<a id="p100166"></a> ![рис. 2](https://i.bukva.ai/fYlMDzZF/img_1.png) 

<a id="p100167"></a>1 - предварительный посев на чашку с PDA; 2 - этап 1;
3 - этап 2; 4 - этап 3; 5 - этап 4; 6 - этап 5

<a id="p100168"></a>Рисунок 2 - Этапы процедуры для приготовления суспензии спор


#### <a id="p100169"></a>10.2 Суспендирование спор в питательной среде


<a id="p100170"></a>10.2.1 Пользуются короткой пипеткой Пастера (см. [7.10](#p100061)) или аналогичным приспособлением для забора 0,5 см3 стерилизованной воды, содержащей анионное поверхностно-активное вещество (см. [8.2](#p100087)) (этап 1).
<a id="p100171"></a>10.2.2 Медленно выпускают ее примерно в пять приемов на споры в центре чашки с агаром, чтобы осторожно смыть поверхность (этап 2).
<a id="p100172"></a>*Примечание* - Допускаются небольшие изменения, например, увеличение количества воды для смыва. Все условия в таких случаях записывают.


#### <a id="p100173"></a>10.3 Сбор и диспергирование суспензии спор из питательной среды


<a id="p100174"></a>10.3.1 Суспензию спор [(10.2)](#p100169) берут с помощью пипетки Пастера [(7.10)](#p100061) или аналогичного приспособления.
<a id="p100175"></a>10.3.2 Переносят ее приблизительно в 5 см3 стерилизованной воды, содержащей анионное поверхностно-активное вещество [(8.2)](#p100087).
<a id="p100176"></a>10.3.3 Пипеткой "забирают-выпускают" 100 раз или перемешивают суспензию на специальном устройстве для встряхивания [(7.22)](#p100073) три раза в течение 20 с или применяют легкую ультразвуковую очистку в течение 5 мин для того, чтобы споры диспергировали в достаточной степени.
<a id="p100177"></a>10.3.4 Визуально проверяют, чтобы суспензия выглядела слегка мутной (этап 3).


#### <a id="p100178"></a>10.4 Фильтрование для удаления гиф и нитей


<a id="p100179"></a>Для фильтрования пользуются воронкой [(7.8)](#p100059) или другим приспособлением с марлей [(7.1)](#p100052) или стекловатой (этап 4).
<a id="p100180"></a>Примечание - Марля [(7.1)](#p100052) или стекловата могут состоять из сложенных в стопку от 3 до 5 слоев в форме квадрата стороной 5 x 5 см.


#### <a id="p100181"></a>10.5 Использование разделения на центрифуге и повторное суспендирование для удаления надосадочной жидкости


<a id="p100182"></a>10.5.1 После фильтрования выполняют разделение на центрифуге приблизительно при ускорении 2000g в течение не менее 5 мин при температуре (25 +/- 2) °C или при комнатной температуре, если центрифуга (см. [7.13](#p100064)) не имеет устройства для контроля температуры.

##### <a id="p100183"></a>10.5.2 Удаляют надосадочную жидкость.

<a id="p100184"></a>10.5.3 Добавляют 5 см3 анионного поверхностно-активного вещества [(8.2)](#p100087) в 10.5.2.
<a id="p100185"></a>10.5.4 Осторожно перемешивают с помощью пипетки, чтобы диспергировать споры, или с помощью устройства для встряхивания [(7.22)](#p100073), или, применяя легкую ультразвуковую очистку в течение примерно 5 мин, чтобы споры были диспергированы в достаточной степени (этап 5).


#### <a id="p100186"></a>10.6 Подтверждение концентрации суспензии спор


<a id="p100187"></a>Проверяют следующие позиции на гемоцитометре.
<a id="p100188"></a>10.6.1 Подсчет спор и статус спор: подтверждают, что количество спор составляет от 1·106/см3 до 3·106/см3 и что более 90% спор являются отдельными спорами без гиф.
<a id="p100189"></a>10.6.2 В случае слишком большого количества спор разводят суспензию стерилизованной водой, содержащей анионное поверхностно-активное вещество [(8.2)](#p100087), чтобы снизить число спор от 1·106/см3 до 3·106/см3, снова проверяют количество спор.
<a id="p100190"></a>10.6.3 В случае недостаточного количества спор повторяют центрифугирование, чтобы удалить надосадочную жидкость, и используют стерилизованную воду, содержащую анионное поверхностно-активное вещество [(8.2)](#p100087) для регулирования числа спор на уровне от 1·106/см3 до 3·106/см3, и снова подсчитывают споры.


#### <a id="p100191"></a>10.7 Регулирование суспензии для анализа


<a id="p100192"></a>10.7.1 Для метода поглощения используют 1/20 SDB в поверхностно-активном веществе [(8.2)](#p100087) для регулирования суспензии спор на уровне от 1·105/см3 до 3·105/см3 для анализа.
<a id="p100193"></a>Примечание - Чтобы получить 1/20 SDB в анионном поверхностно-активном веществе добавляют 5 см3 SDB [(8.3.1)](#p100092) в 95 см3 анионного поверхностно-активного вещества [(8.2)](#p100087).

<a id="p100194"></a>10.7.2 Для метода переноса готовят посевной материал только в анионном поверхностно-активном веществе [(8.2)](#p100087) (SDB 1/20 не требуется).

##### <a id="p100195"></a>10.7.3 После разбавления хорошо перемешивают суспензию.


##### <a id="p100196"></a>10.7.4 Охлаждают суспензию на льду и используют в течение 4 ч.



#### <a id="p100197"></a>10.8 Подсчет культур


<a id="p100198"></a>Разведение 10-2 до 10-3 анионным поверхностно-активным веществом рассчитывают по [11.2.4](#p100264).

<a id="p100199"></a>11 Проведение анализа


#### <a id="p100200"></a>11.1 Подготовка образцов для анализа и посев



##### <a id="p100201"></a>11.1.1 Общие положения


<a id="p100202"></a>Для метода посева используют метод поглощения или метод переноса. Образцы для каждого метода готовят, как описано ниже. Метод переноса применяют к пробам текстильных изделий, не поглощающим воду.


##### <a id="p100203"></a>11.1.2 Метод поглощения



###### <a id="p100204"></a>11.1.2.1 Промывание пробы

<a id="p100205"></a>При необходимости, например, чтобы оценить продолжительность обработки, образцы промывают по [[1]](#p100390) или иным подходящим способом, и после окончательной промывки образцы споласкивают водой для того, чтобы смыть моющее средство. Применение неустановленного способа должно быть указано в протоколе испытания.

###### <a id="p100206"></a>11.1.2.2 Масса и форма образцов

<a id="p100207"></a>Получают образцы массой (0,40 +/- 0,05) г, вырезанные по размеру, удобному для испытания. Предпочтительная масса одного образца 0,4 г. Получают шесть контрольных образцов из контрольной ткани и шесть образцов для испытания из ткани для испытания, прошедшей противогрибковую обработку.
<a id="p100208"></a>*Примечание* - Три контрольных и три испытуемых образца после противогрибковой обработки используют для нулевого момента времени (момента отсчета), сразу после посева. Остальные образцы используют для времени контактирования, после инкубации.


###### <a id="p100209"></a>11.1.2.3 Установка образцов


###### <a id="p100210"></a>11.1.2.3.1 Расположение образцов

<a id="p100211"></a>Каждый из образцов помещают в отдельные флаконы [(7.7)](#p100058), выбрав один из следующих способов в соответствии с характером образца:
- <a id="p100212"></a>если образец представляет собой изделие из текстиля, который может легко скручиваться, или содержит ватин или пух, на образец во флаконе [(7.7)](#p100058) помещают стеклянную палочку. В качестве альтернативы связывают оба конца образца ниткой;
- <a id="p100213"></a>если образец представляет собой пряжу, ее завязывают узлом и на полученный таким образом испытуемый образец во флаконе [(7.7)](#p100058) помещают стеклянную палочку;
- <a id="p100214"></a>если образцы взяты от ковров или аналогичных изделий, отрезают пучок и на полученный таким образом испытуемый образец во флаконе [(7.7)](#p100058) помещают стеклянную палочку.

###### <a id="p100215"></a>11.1.2.3.2 Стерилизация

<a id="p100216"></a>При необходимости, например, для загрязненных образцов, стерилизуют их в автоклаве [(7.3)](#p100054) в соответствии со следующей процедурой.
<a id="p100217"></a>Закрывают верхнюю часть флаконов [(7.7)](#p100058) с образцами алюминиевой фольгой.
<a id="p100218"></a>Помещают закрытые флаконы [(7.7)](#p100058) в металлическую корзинку для автоклавирования.
<a id="p100219"></a>Оборачивают крышки флаконов алюминиевой фольгой и помещают их в металлическую корзинку.
<a id="p100220"></a>Стерилизуют крышки и флаконы [(7.7)](#p100058) с образцами в автоклаве [(7.3)](#p100054) при температуре 121 °C (103 кПа) в течение 20 мин.
<a id="p100221"></a>После стерилизации снимают алюминиевую фольгу и дают образцам в флаконах [(7.7)](#p100058) просохнуть в течение не менее 60 мин, поместив их в стерильный бокс или любое другое место, где нет риска загрязнения из воздуха.
<a id="p100222"></a>*Примечание* 1 - Если использовать автоклав невозможно, используют альтернативное средство стерилизации, например, газообразный этиленоксид или гамма-лучи, вносят их в протокол испытания.
<a id="p100223"></a>*Примечание* 2 - Определенный способ стерилизации может дезактивировать или увеличить выделение определенных противомикробных веществ и, следовательно, привести к неправильным результатам.
<a id="p100224"></a>*Примечание* 3 - Контрольную ткань можно стерилизовать способом, описанным выше.


###### <a id="p100225"></a>11.1.2.3.3 Закрывают флакон пробкой

<a id="p100226"></a>Плотно закупоривают флаконы после обработки для того, чтобы сохранить условия стерильности до посева.

###### <a id="p100227"></a>11.1.2.4 Посев на испытуемые образцы


###### <a id="p100228"></a>11.1.2.4.1 Открывают пробку флакона

<a id="p100229"></a>11.1.2.4.2 Точно отбирают пипеткой 0,2 см3 посевного материала, приготовленного по [10.7](#p100191) (от 1·105/см3 до 3·105/см3), и наносят в нескольких точках на каждом испытуемом образце, подготовленном по [11.1.2.3](#p100209).
<a id="p100230"></a>Если посевной материал плохо поглощается образцом, можно прижать его, например, стеклянной палочкой.
<a id="p100231"></a>11.1.2.4.3 Необходимо убедиться в том, что суспензия хорошо перемешана перед нанесением и хорошо впиталась в образец, после чего закрывают флакон, следя за тем, чтобы посевной материал не попал на пробку.


##### <a id="p100232"></a>11.1.3 Метод переноса



###### <a id="p100233"></a>11.1.3.1 Подготовка образцов

<a id="p100234"></a>По шаблону [(7.20)](#p100071) вырезают шесть образцов диаметром (3,8 +/- 0,1) см.
<a id="p100235"></a>Образцы не должны включать швы, кромки, вышивки, застежки и т.д.
<a id="p100236"></a>При необходимости образцы промывают по [[1]](#p100390) или иным подходящим способом, и после окончательного промывания образцы споласкивают водой для того, чтобы смыть моющее средство. Если используют неустановленный способ, его указывают в протоколе испытания.
<a id="p100237"></a>При необходимости образцы можно стерилизовать в автоклаве [(7.3)](#p100054), газообразном этиленоксиде, гамма-лучах или любым другим подходящим способом. Если используют неустановленный способ, его указывают в протоколе испытания.

###### <a id="p100238"></a>11.1.3.2 Посев на агаровые чашки

<a id="p100239"></a>Готовят 12 чашек Петри [(7.2)](#p100053) диаметром 60 мм или шесть чашек Петри диаметром 90 мм с агаром SDA [(8.3.3)](#p100113) для переноса.
<a id="p100240"></a>Засевают 1 см3 исходной суспензии спор из [10.7](#p100191) в диапазоне концентраций от 1·105/см3 до 3·105/см3 на агар, наклоняя чашку в нескольких направлениях для того, чтобы полностью омыть поверхность агара. Дают избытку жидкости максимально впитаться. Оставляют на (300 +/- 30) с.

###### <a id="p100241"></a>11.1.3.3 Перенос культуры на образцы

<a id="p100242"></a>11.1.3.3.1 Готовят шесть образцов контрольной ткани и шесть испытуемых образцов, прошедших противогрибковую обработку.
<a id="p100243"></a>11.1.3.3.2 Выбирают два контрольных образца: один для момента отсчета и другой - для времени 48 ч. Устанавливают каждый образец на агаровую поверхность [(11.1.3.2)](#p100238) в чашку Петри диаметром 60 мм [(7.2)](#p100053) или два образца в чашку Петри диаметром 90 мм [(7.2)](#p100053) (таким образом, чтобы исключить наложение образцов друг на друга) и придавливают гирей массой 200 г из нержавеющей стали [(7.21)](#p100072) в течение (60 +/- 5) с. Убирают гирю и каждый образец.
<a id="p100244"></a>Помещают один образец в чашку Петри диаметром 60 мм [(7.2)](#p100053), размещая поверхность, на которую перенесены грибки, вверх в инкубаторе.
<a id="p100245"></a>Помещают другой образец в стерильный мешок или флакон для испытания по [11.2](#p100248).
<a id="p100246"></a>11.1.3.3.3 Повторяют [11.1.3.3.2](#p100243) еще для четырех контрольных образцов. Затем готовят три контрольных образца для нулевого момента и три контрольных образца для времени инкубации 48 ч.
<a id="p100247"></a>11.1.3.3.4 Повторяют [11.1.3.3.2](#p100243) для шести испытуемых образцов для того, чтобы получить три образца для нулевого момента и три образца для времени инкубации 48 ч.


#### <a id="p100248"></a>11.2 Процедура подсчета колоний



##### <a id="p100249"></a>11.2.1 Встряхивание до момента начала посева


<a id="p100250"></a>В случае метода поглощения сразу же после инкубирования образцов добавляют 20 см3 среды SCDLP [(8.3.5)](#p100131) в каждый из шести флаконов [(7.7)](#p100058), в которых расположены один контрольный и один испытуемый образец, закупоривают пробками и встряхивают, как описано в [a)](#p100252) или [b)](#p100254).
<a id="p100251"></a>В случае метода переноса сразу же после переноса помещают каждый образец в стерильный мешок или флакон, содержащий 20 см3 среды SCDLP и встряхивают в соответствии с нижеследующими a), [b)](#p100254) или [c)](#p100256).
<a id="p100252"></a>a) Встряхивание на вихревом смесителе
<a id="p100253"></a>Перемешивание с помощью вихревого смесителя в течение 1 мин x 5 циклов.
<a id="p100254"></a>b) Встряхивание вручную
<a id="p100255"></a>Берут флакон в руки и встряхивают по дуге приблизительно 30 см в течение 1 мин x 5 циклов.
<a id="p100256"></a>c) Встряхивание на лопастной мешалке [(7.23)](#p100074).
<a id="p100257"></a>Помещают помеченный мешок однократного применения [(7.28)](#p100079) в лопастную мешалку типа гомогенизатора Stomacher [(7.23)](#p100074) и включают на 1 мин с каждой стороны мешка.


##### <a id="p100258"></a>11.2.2 Инкубирование 48 ч


<a id="p100259"></a>В случае метода поглощения инкубируют флаконы [(7.7)](#p100058) (три контрольных и три испытуемых образца) при температуре (30 +/- 2) °C в течение (48 +/- 2) ч.
<a id="p100260"></a>В случае метода переноса инкубируют чашки Петри [(7.2)](#p100053) с образцами в камере повышенной влажности [(7.24)](#p100075) при температуре (30 +/- 2) °C и относительной влажности выше 95% в течение (48 +/- 2) ч.


##### <a id="p100261"></a>11.2.3 Встряхивание после 48 ч инкубации


<a id="p100262"></a>В случае метода поглощения после инкубации добавляют 20 см3 среды SCDLP в каждый из флаконов, плотно закрывают пробку и встряхивают в соответствии с [11.2.1](#p100249).
<a id="p100263"></a>В случае метода переноса после инкубации помещают каждый образец в стерильный мешок или флакон, содержащий 20 см3 среды SCDLP [(8.3.5)](#p100131) и встряхивают по [11.2.1](#p100249).


##### <a id="p100264"></a>11.2.4 Подсчет колоний на чашках



###### <a id="p100265"></a>11.2.4.1 Приготовление серии разведений

<a id="p100266"></a>11.2.4.1.1 Готовят суспензию [11.2.1](#p100249) или [11.2.3](#p100261), которая будет нулевым разведением, 100.
<a id="p100267"></a>11.2.4.1.2 Берут 1 см3 суспензии [11.2.1](#p100249) или [11.2.3](#p100261) пипеткой [(7.9)](#p100060), добавляют в пробирку, содержащую (9,0 +/- 0,1) см3 анионного поверхностно-активного вещества [(8.2)](#p100087) и энергично встряхивают. Это будет разведение 10-1.
<a id="p100268"></a>11.2.4.1.3 Повторяют эту процедуру последовательно и готовят серию разведений 100 и 10-1 для нулевого момента инкубации и 100 до 10-4 для 48 ч инкубации.

###### <a id="p100269"></a>11.2.4.2 Инкубирование серии разведений суспензии

<a id="p100270"></a>Подсчет выполняют на поверхности среды SDA [(8.3.3)](#p100113), разлитой по чашкам Петри [(7.2)](#p100053) диаметром 90 мм.
<a id="p100271"></a>11.2.4.2.1 Подсчет выполняют на поверхности среды SDA в чашке Петри. Распространяют 0,1 см3 суспензий и 0,1 см3 их серий разведений на поверхности среды SDA (одна чашка на один подсчет), используя пластиковый или стерилизованный нагревом инструмент.
<a id="p100272"></a>11.2.4.2.2 Подсчет выполняют в глубине среды SDA в чашке Петри. Переносят 1 см3 каждого разведения в чашки Петри [(7.2)](#p100053). Подогревают приблизительно 15 см3 среды SDA до температуры 45 - 46 °C на водяной бане [(7.30)](#p100081), добавляют в чашки и тщательно перемешивают. Держат при комнатной температуре и дают среде застыть.
<a id="p100273"></a>11.2.4.2.3 Переворачивают чашки вверх дном и инкубируют при температуре (28 +/- 2) °C в течение от 24 до 48 ч, наблюдают за ростом колоний грибков.

###### <a id="p100274"></a>11.2.4.3 Подсчет колоний

<a id="p100275"></a>11.2.4.3.1 После инкубирования подсчитывают число колоний на чашках Петри [(7.2)](#p100053) серии разведений, в которых выросло от 1 КОЕ до 300 КОЕ.

###### <a id="p100276"></a>11.2.4.3.2 Получают концентрацию грибков в растворе согласно ИСО 7218:2007 по формуле


<a id="p100277"></a> $N = \frac{\sum C}{V \cdot 1,1 \cdot d} ,$ (1)

<a id="p100278"></a>где N - концентрация грибков, КОЕ/см3;
<a id="p100279"></a> $\sum C$ - сумма КОЕ, посчитанных на двух чашках, оставшихся от двух последовательных разведений, как минимум одна из которых содержит менее 5 КОЕ;
<a id="p100280"></a>d - первое разведение после двух последовательных разведений;
<a id="p100281"></a>1,1 - коэффициент для объединения двух последовательных разведений по ИСО 7218:2007;
<a id="p100282"></a>V - объем посевного материала, помещенного на каждой чашке, мм (0,1 см3).
<a id="p100283"></a>В том случае, когда ни в одной из чашек Петри не содержится минимум 5 КОЕ, испытание считается неэффективным.

| <a id="p100284"></a>Пример | <a id="p100285"></a>- | <a id="p100286"></a>При разведении 10-2 - 168 КОЕ |
| --- | --- | --- |
|  |  | <a id="p100287"></a>При разведении 10-3 - 14 КОЕ |


<a id="p100288"></a> $N = \frac{168 + 14}{0,1 \cdot 1,1 \cdot 10^{- 2}} = \frac{182}{0,0011} = 165454\text{КОЕ }/\text{см}^{3} = 1,65 \cdot 10^{5}\text{КОЕ }/\text{см}^{3}$ 

<a id="p100289"></a>12 Результаты испытания


#### <a id="p100290"></a>12.1 Заключение об эффективности испытания

<a id="p100291"></a>Если нижеприведенные в a), [b)](#p100293) и [c)](#p100294) условия удовлетворительны, испытание считается эффективным. Если испытание считается неэффективным, выполняют повторное испытание.
<a id="p100292"></a>a) Испытуемый посевной материал должен быть от 1·105/см3 до 3·105/см3.
<a id="p100293"></a>b) Разность между десятичными логарифмами максимального количества грибков на трех контрольных тканях сразу после посева должна быть менее единицы. Эта разность сразу после инкубации также должна быть менее единицы.
<a id="p100294"></a>c) Показатель роста, полученный по формуле (2), должен быть более 1,0.

<a id="p100295"></a>F = lg Ct - lg C<sub>0</sub>, (2)

<a id="p100296"></a>где F - показатель роста на контрольной ткани;
<a id="p100297"></a>Ct - среднеарифметическое количество грибков, полученное от трех образцов контрольной ткани после инкубации в течение (48 +/- 2) ч;
<a id="p100298"></a>C<sub>0</sub> - среднеарифметическое количество грибков, полученное от трех образцов контрольной ткани сразу после посева.


#### <a id="p100299"></a>12.2 Расчет значения противогрибковой активности


<a id="p100300"></a>Если [условие 12.1](#p100290) удовлетворяется, испытание считается эффективным. Если испытание считается неэффективным, выполняют повторное испытание.
<a id="p100301"></a>После подтверждения достоверности результатов испытания используют формулу (3) для получения значения противогрибковой активности.

<a id="p100302"></a>A = (lg Ct - lg C<sub>0</sub>) - (lg Tt - lg T<sub>0</sub>) = F - G, (3)

<a id="p100303"></a>где A - значение противогрибковой активности;
<a id="p100304"></a>F - показатель роста на контрольной ткани, F = lg Ct - lg C<sub>0</sub>;
<a id="p100305"></a>G - показатель роста на обработанных противогрибковым средством образцах, G = lg Tt - lg T0;
<a id="p100306"></a>Tt - среднеарифметическое количество грибков, полученное от трех образцов, обработанных противогрибковым средством, после инкубации в течение (48 +/- 2) ч;
<a id="p100307"></a>T0 - среднеарифметическое количество грибков, полученное от трех образцов, обработанных противогрибковым средством сразу после посева.

<a id="p100308"></a>13 Протокол испытания

<a id="p100309"></a>В протоколе испытания должна содержаться следующая информация:
<a id="p100310"></a>a) ссылка на настоящий стандарт;
<a id="p100311"></a>b) описание испытуемой пробы;
<a id="p100312"></a>c) тип использованной контрольной ткани;
<a id="p100313"></a>d) тип использованных референтных штаммов грибков;
<a id="p100314"></a>e) концентрация спор;
<a id="p100315"></a>f) метод посева;
<a id="p100316"></a>g) показатель роста F из [формулы (2)](#p100295);
<a id="p100317"></a>h) показатель противогрибковой активности A каждого образца;
<a id="p100318"></a>i) все отклонения от настоящего стандарта.





<a id="p100319"></a>Приложение A
(справочное)

<a id="p100320"></a>**ГРИБКИ, ИСПОЛЬЗУЕМЫЕ В ИСПЫТАНИЯХ ПО НАСТОЯЩЕМУ СТАНДАРТУ**

<a id="p100321"></a>A.1 Общие положения

<a id="p100322"></a>Используемые в испытаниях грибки должны быть идентичны указанным в [таблице A.1](#p100326), которые были законсервированы членами Всемирной Федерации коллекций культур [World Federation for Culture Collection (WFCC)].

<a id="p100323"></a>A.2 Перечень грибков

<a id="p100324"></a>Данные грибки законсервированы членами Всемирной Федерации коллекций культур.

<a id="p100325"></a>Таблица A.1

<a id="p100326"></a>Грибки для испытаний


<table>
<colgroup><col width="22%"><col width="18%"><col width="19%"><col width="41%"></colgroup>
<tr><td><a id="p100327"></a>Тип грибка</td><td><a id="p100328"></a>Код WDCM (код во Всемирной Федерации коллекций культур)</td><td><a id="p100329"></a>Номер в хранении</td><td><a id="p100330"></a>Организация-хранитель</td></tr>
<tr><td rowspan="4"><a id="p100331"></a>Aspergillus niger</td><td rowspan="4"><a id="p100332"></a>00144</td><td rowspan="2"><a id="p100333"></a>ATCC 6275TM</td><td><a id="p100334"></a><a id="p100335"></a>Американская коллекция клеточных культур (США)<br>[American Type Culture Collection (USA)]</td></tr>
<tr><td><a id="p100336"></a><a id="p100337"></a>Коллекция института им. Пастера (Франция)<br>[Pasteur Institute Collection (France)]</td></tr>
<tr><td><a id="p100338"></a><a id="p100339"></a>UMIP 2475,98<br>DSM 1957</td><td><a id="p100340"></a><a id="p100341"></a>Германская коллекция микроорганизмов и клеточных культур (Германия)<br>[German Collection of Microorganism and Cell Cultures (Germany)]</td></tr>
<tr><td><a id="p100342"></a>NBRC 105649</td><td><a id="p100343"></a><a id="p100344"></a>Национальный институт технологии и развития, Центр биологических ресурсов (Япония)<br>[National Institute of Technology and Evaluation, Biological Resource Centre (Japan)]</td></tr>
<tr><td rowspan="4"><a id="p100345"></a><a id="p100346"></a>Aspergillus niger<br>(A. brasiliensis)</td><td rowspan="4"><a id="p100347"></a>00053 <sup><a href="#p100353">a</a></sup></td><td><a id="p100348"></a>ATCC 16404</td><td rowspan="4"><a id="p100349"></a><sup><a href="#p100353">a</a></sup></td></tr>
<tr><td><a id="p100350"></a>UMIP 1431,8</td></tr>
<tr><td><a id="p100351"></a>DSM 1387</td></tr>
<tr><td><a id="p100352"></a>NBRC 9455</td></tr>
<tr><td colspan="4"><a id="p100353"></a><sup>a</sup> Не все вошли в перечень.</td></tr>
</table>


<a id="p100354"></a>*Примечание* - После соответствующего подтверждения можно использовать другие культуры и другие коллекции.





<a id="p100355"></a>Приложение B
(справочное)

<a id="p100356"></a>**ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРОТИВОГРИБКОВЫХ МЕР**

<a id="p100357"></a>Могут быть применены следующие критерии, чтобы показать действенность противогрибковых средств.
<a id="p100358"></a>*Примечание* - Рекомендуемый критерий не гарантирует отсутствия роста грибков. Это означает, что грибки на обработанном изделии растут медленнее или не растут совсем по сравнению с контрольным текстильным изделием.

<a id="p100359"></a>Таблица B.1

<a id="p100360"></a>*Пример* эффективности противогрибкового средства


<table>
<colgroup><col width="28%"><col width="22%"><col width="50%"></colgroup>
<tr><td><a id="p100361"></a>Пункт</td><td><a id="p100362"></a>Значение A</td><td><a id="p100363"></a>Пояснение</td></tr>
<tr><td rowspan="5"><a id="p100364"></a>Критерий противогрибковой активности по показателю A в <a href="#p100302">формуле (3)</a></td><td><a id="p100365"></a>A &lt; 1</td><td><a id="p100366"></a>Неэффективно</td></tr>
<tr><td><a id="p100367"></a>2 &gt; A &gt;= 1</td><td><a id="p100368"></a>Незначительный эффект остановки роста</td></tr>
<tr><td><a id="p100369"></a>3 &gt; A &gt;= 2</td><td><a id="p100370"></a>Средний эффект остановки роста</td></tr>
<tr><td><a id="p100371"></a>A &gt;= 3,0</td><td><a id="p100372"></a>Полный эффект остановки роста</td></tr>
<tr><td><a id="p100373"></a>Tt = 0</td><td><a id="p100374"></a>Противогрибковый эффект</td></tr>
</table>






<a id="p100375"></a>Приложение ДА
(справочное)

<a id="p100376"></a>**СВЕДЕНИЯ О СООТВЕТСТВИИ ССЫЛОЧНЫХ МЕЖДУНАРОДНЫХ СТАНДАРТОВ**
**НАЦИОНАЛЬНЫМ И ДЕЙСТВУЮЩИМ В ЭТОМ КАЧЕСТВЕ**
**МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫМ СТАНДАРТАМ**

<a id="p100377"></a>Таблица ДА.1


<table>
<colgroup><col width="23%"><col width="17%"><col width="59%"></colgroup>
<tr><td><a id="p100378"></a>Обозначение ссылочного международного стандарта</td><td><a id="p100379"></a>Степень соответствия</td><td><a id="p100380"></a>Обозначение и наименование соответствующего национального, межгосударственного стандарта</td></tr>
<tr><td><a id="p100381"></a>ISO 105-F02</td><td><a id="p100382"></a>IDT</td><td><a id="p100383"></a>ГОСТ Р ИСО 105-F02-2014/ISO 105-F02:2009 "Материалы текстильные. Определение устойчивости окраски. Часть F02. Технические условия на хлопчатобумажные и вискозные смежные ткани"</td></tr>
<tr><td><a id="p100384"></a>ISO 7218:2007</td><td><a id="p100385"></a>IDT</td><td><a id="p100386"></a>ГОСТ ISO 7218-2015 "Микробиология пищевых продуктов и кормов для животных. Общие требования и рекомендации по микробиологическим исследованиям"</td></tr>
<tr><td colspan="3"><a id="p100387"></a><a id="p100388"></a>Примечание - В настоящей таблице использовано следующее условное обозначение степени соответствия стандартов:<br>- IDT - идентичные стандарты.</td></tr>
</table>






<a id="p100389"></a>**БИБЛИОГРАФИЯ**


| <a id="p100390"></a>[1] | <a id="p100391"></a>ГОСТ Р ИСО 6330:2014/ИСО 6330:2012 Материалы текстильные. Процедуры домашней стирки и сушки, применяемые для испытаний |
| --- | --- |




<a id="p100392"></a>

---