Экспертное исследование плодовых тел грибов, содержащих псилоцин и псилоцибин. Методические рекомендации
Актуально на 07.11.2026.
Как цитировать: "Экспертное исследование плодовых тел грибов, содержащих псилоцин и псилоцибин. Методические рекомендации". 3/99-2005. https://bukva.ai/docs/protokol-399-2005
(утв. Постоянным комитетом по контролю наркотиков, Протокол от 15.06.2005 № 3/99-2005)
Утверждены Постоянным комитетом по контролю наркотиков 15 июня 2005 года (протокол № 3/99-2005)
ЭКСПЕРТНОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ПЛОДОВЫХ ТЕЛ ГРИБОВ, СОДЕРЖАЩИХ ПСИЛОЦИН И ПСИЛОЦИБИН
Утверждены Постоянным комитетом по контролю наркотиков (протокол № 3/99-2005 от 15 июня 2005 г.).
Одобрены и рекомендованы к публикации методическим советом ЭКЦ МВД России.
В настоящее время широкое распространение в незаконном обороте наркотиков в России получили плодовые тела грибов, содержащие псилоцин и псилоцибин. Наиболее часты случаи изъятия этих грибов в северных областях: Новгородской, Псковской, Смоленской, Тверской, Кировской, Ленинградской. Данный наркотик обладает галлюциногенным действием и употребляется перорально.
Предлагаемая работа представляет собой комплексную методику исследования плодовых тел грибов, содержащих псилоцин и псилоцибин, включающую их морфологическое исследование, а также химическое исследование с использованием методов тонкослойной, газовой, жидкостной хроматографии, хроматомасс-спектрометрии, метода капельных цветных реакций.
ДАННЫЕ ОБ ОБЪЕКТЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
Плодовые тела грибов, содержащие псилоцин и псилоцибин, относятся к наркотическим средствам растительного происхождения и стали изыматься из незаконного оборота на территории России сравнительно недавно, не более 10 лет назад.
Как известно, грибы — это нефотосинтезирующие организмы с хорошо выраженной клеточной стенкой, важнейшим компонентом которой является хитин. Для грибов характерны: гетеротрофный способ питания путем всасывания, неподвижность в вегетативном состоянии, неограниченный рост и наличие в качестве запасного вещества гликогена. Основой вегетативного тела гриба является мицелий, или грибница, представляющая собой систему микроскопически тонких ветвящихся нитей (гиф) с апикальным ростом и боковым ветвлением. Среди грибов встречаются одноклеточные формы, но большинство имеет нитевидное тело, а структуры, подобные шляпочным грибам (плодовые тела), состоят из множества гиф (плотно упакованных нитей). В настоящее время описано около 120000 видов грибов.
В процессе жизнедеятельности в грибах образуются физиологически активные вещества — антибиотики, витамины, органические кислоты, ферменты. Кроме того, грибы могут содержать токсины (ядовитые соединения), такие как монометилгидразин, орелланин, кортинарин, коприн, мускарин, буфотенин, иботеновую кислоту и т.д., при употреблении вызывающие различные функциональные нарушения (расстройства, отравления) в организме человека. Среди них можно выделить токсины с нейротропным действием, т.е. вызывающие нарушение деятельности центральной нервной системы (симптомы — приступы смеха, плача, галлюцинации).
Грибы, содержащие вещества галлюциногенного действия, являются частью культуры многих народов и использовались уже более 3 тыс. лет назад. Об этом свидетельствуют археологические находки в горных районах и на тихоокеанском побережье Гватемалы и Сальвадора, связанные с культурой древних майя, такие как фигурки в виде каменных грибов, украшенных лицами богов и демонов, грибные статуэтки, обнаруженные при раскопках храмов и могильников, а также присутствие этого мотива в каменных и глиняных изделиях. Эти находки относят к 1650 — 1050 гг. до н.э. Археологи полагают, что галлюциногенные грибы оказывали влияние на религию древних майя, особенно в сфере гаданий и целительства (наряду с ядом жаб и водяной лилией Nymphaea amplea), а также служили предметом торговли для этой древней культуры.
Галлюциногенные грибы, представители родов Stropharia и Psilocybe, были неотъемлемой частью ритуалов ацтеков. Во время коронации Монтесумы, чтобы внушить подданным идею его божественного происхождения, к столу подавались «волшебные» грибы, считавшиеся священными до такой степени, что получили название Теонанакатл (Teonanacatl), что означает «плоть богов», «божественный гриб». Кроме того, Монтесума устраивал раз в год «праздники откровений», когда приглашенные сановники и сам Монтесума ели волшебные грибы. Летописец Тесосомок указывал на высокую стоимость этих грибов и о необходимости «не спать ночами, чтобы найти их». Индейцы считали, что гриб разговаривает с человеком и открывает ему тайны мироздания. Жрец, употребляя этот гриб, общался с духами, предсказывал будущее, исцелял людей. Интересен тот факт, что для исцеления человека от болезни жрец может давать снадобье больному, а может употреблять его сам. Найденная в Центральной Америке статуя Хохшипилли (XVI в.) изображает Принца Цветов, украшенного «волшебными» растениями (табак, орхидея, т.д.) и грибами.
Первые письменные упоминания об использовании грибов с галлюциногенной активностью в религиозных целях обнаружены в описаниях испанских хронистов и натуралистов, попавших в Мексику в XVI веке. Одним из первых авторов является францисканский монах Бернардино де Шахагун, автор труда под названием «Общая история новой Испании» (1560 г.). В различных своих работах он указывал на активное применение грибов, подробно описал ритуал употребления, эффекты приема галлюциногенов и их использование в различных целях не только жрецами, но и простыми ацтеками. Прибывшие в Новый Свет католические миссионеры подвергли ритуалы и церемонии ацтеков гонениям, убивая всякого, кто был застигнут во время этих ритуалов. Использование грибов в Мексике было запрещено (1521 г.). По этой причине культовые обряды, связанные с грибами, сохранялись в глубокой тайне только в самых отдаленных от цивилизации уголках Мексики. При столкновении двух верований появилась своеобразная смесь христианства и грибных ритуалов. В сегодняшних верованиях индейцев переплетены как древние доколумбовые, так и христианские традиции. В современной интерпретации с шаманом (жрецом) разговаривают не духи, а сам Христос. Примером тому служит Мария Сабина, шаманка, обнаруженная одной из исследовательских групп в середине прошлого века (R. Gordon Wasson). В ее грибных ритуалах использовались католические атрибуты — алтарь Иисуса Христа, лик Девы Марии и т.п., а в грибных откровениях она общалась непосредственно с Христом. Информация о Марии Сабине и используемых ею грибах была опубликована в мае 1957 года в США (R.G. Wasson «Поиски Волшебного Гриба» — «Seeking the Magic Mushroom»).
Жители горного региона Новой Гвинеи — народности кума и каимби употребляли грибы Pandanus, Boletus и Psilocybe, вызывающие озноб, галлюцинации, потерю речи и раздвоение зрительных образов. Среди записей миссионеров, которые проповедовали в этих местах в начале XX в., есть упоминание об употреблении туземцами дикого гриба с местным названием «нонда» для достижения состояния бешенства: «нонду ели перед тем, как идти убивать человека или в периоды возбуждения, гнева или скорби». Некоторые антропологи утверждают, что поведение и поступки, совершенные под действием грибов у этих племен, являются узаконенной формой проявления склонностей, на которые наложен запрет в обыденной жизни (например, настоящая агрессия против своих соплеменников). В отличие от других обществ, где основной целью является установление контакта со сверхъестественным, употребление галлюциногенных грибов в Новой Гвинее связано с внутриплеменными отношениями.
Ритуальное использование псилоцибиновых грибов имеет исторические примеры и в европейских культурах. В древней Греции недалеко от Афин проводились ритуалы, вошедшие в историю, как мистерии Элевсиса. Исследователи полагают, что таинство происходило в храме Деметры, богини земледелия, в Зале Посвящений, Телестерионе. Во время ритуалов подавался напиток, который был изготовлен из грибов, вызывающий необычные видения. Все происходившее во время церемоний держалось в строжайшем секрете — всякому, поведавшему его непосвященным, грозила смерть. Эти ритуалы продолжались до их подавления во время раннего христианства.
В 1977 г. во время конференции, посвященной грибам, ученые R.G. Wasson и A. Hofmann высказали гипотезу, что мистерии Элевсиса строились вокруг псилоцибиновых грибов. Позже они опубликовали свои работы в книге «Путь в Элевсис: тайны мистерий», где описано, что в мистерии участвовали также Аристотель и Платон.
Возникновение города Микены также связывают с видением, которое пережил его основатель после употребления галлюциногенных грибов (от греч. mykos — гриб).
В средневековой Европе грибы долгое время считались колдовским, дьявольским творением или орудием ведьм (отсюда народные названия «ведьмино яйцо», «сатанинский гриб», выражение «ведьмин круг»), а в первой иллюстрированной книге, посвященной травам (1560 г.), грибы изображены вместе с извивающимися змеями.
В древней Скандинавии существовали специальные отряды воинов — берсеркеров, которые перед боем съедали кусочки мухомора или выпивали напиток из него и впадали под действием содержащихся в нем токсинов в состояние бешеной ярости, «не чувствовали ран и ударов оружия, шли, сметая все на своем пути».
Информации об употреблении галлюциногенных грибов на территории России практически нет (присутствие мотивов в фольклоре, архитектуре, надгробиях староверов), и сводится в основном к употреблению мухоморов (Amanita muskaria) коренными жителями Сибири (чукчи, эвенки, а также коряки, камчадалы, юкагиры). Amanita muskaria, в отличие от других галлюциногенов, вызывает неестественную сильную физическую подвижность.
Подобные исторические факты и наблюдения не могли не заинтересовать ученых. Так, американские антропологи в 1930-х гг. посетили ритуальные церемонии, где наблюдали употребление галлюциногенных грибов (Гуаутл де Джименз, штат Оахаса, Мексика). В 1938 г. американский ботаник Richard Е. Schultes собрал экземпляры этих грибов (род Psilocybe), которые заняли место в гербарии Гарварда. В 1950-х гг. французский профессор микологии Roger Heim провел идентификацию гриба teonanacatl: галлюциногенные грибы впервые были подробно описаны и классифицированы (принадлежность к роду Psilocybe, кроме того, ему удалось искусственно вырастить во Франции культуру гриба Psilocybe mexicana). В это же время американский исследователь R. Gordon Wasson впервые принял участие в грибных ритуалах.
В 1958 г. швейцарский химик A. Hofmann выделил вещество из грибов Psilocybe mexicana, названное псилоцибином, установил его формулу и способы синтеза. Несколько лет коммерческий псилоцибин выпускался швейцарской фармакологической компанией Sandoz для исследовательских лабораторий.
В 1960-х гг. история исследования галлюциногенных грибов тесно связана с профессором Гарвардского университета Thimothy Leary и его единомышленниками, которые исследовали действие галлюциногенных грибов на себе и провели ряд крупных экспериментов («Good Friday» — участвовали 20 студентов Бостонского университета; «Конкордский проект» — использование псилоцибина среди заключенных тюрьмы Конкорд с целью более успешной социальной реабилитации). В 1963 г. T. Leary был уволен из Гарварда за продолжающиеся эксперименты с психоделиками с привлечением студентов, но его теории и идеи становятся очень популярными среди молодежи. К сожалению, поздние работы T. Leary, где он утверждает, что наркотики — не подходящее занятие для молодежи, которой не хватает жизненного опыта и необходимых знаний в области медицины, психологии и философии для правильного восприятия и осмысления происходящего, не нашли такой популярности, как ранний этап его исследовательской деятельности в области использования наркотиков.
Наиболее известными среди галлюциногенных грибов считаются представители рода Psilocybe (из более чем 140 видов грибов указанного рода в 80 из них содержатся психоактивные вещества). Виды грибов этого рода являются космополитами и широко распространены почти по всем континентам. Данные грибы являются сапрофитами, селятся на почве, отмерших ветвях и стеблях растений, встречаются на опилках, торфе, навозе; обитают на сфагновых болотах, встречаются в лесах, парках, на пастбищах, по окраинам дорог. Характерная черта многих грибов — обитание на заболоченной почве. Наиболее часто в качестве наркотиков используются Psilocybe semilanceata и Psilocybe cubensis. Кроме того, псилоцибин обнаружен в грибах следующих родов: Panaeolus (Coprinaceae), hiocybe (Cortinariaceae), Conocybe (Bolbitiaceae), Pluteus (Pluteaceae). Всего насчитывается более 100 видов грибов, содержащих псилоцибин и псилоцин.
Грибы, обладающие галлюциногенным действием и произрастающие в наших широтах, можно разделить на две группы:
1. Грибы, содержащие в качестве активного вещества иботеновую кислоту, мускимол, мусказон и мускарин. К этой группе относятся Amanita muscaria, A. pantherina, A. phalloides, A. vema, A. virosa.
2. Грибы, содержащие псилоцибин, псилоцин и баеоцистин. Содержание псилоцибина и баеоцистина в грибах разных видов и даже одного вида сильно варьирует и равно 0,1 — 2,4% и 0,05 — 0,7% соответственно. Содержание может изменяться под действием света, повышенной температуры и других факторов (например, содержание алкалоидов в Psilocybe coprophilia резко уменьшается после сбора). Кроме того, по литературным данным, наибольшая концентрация псилоцибина определялась в молодых грибах.
На территории России обнаружено 3 вида псилоцибиносодержащих грибов: Psilocybe semilanceata (ареал распространения Ленинградская, Псковская, Пензенская обл., Дальний Восток), Inocybe corydalina (Ленинградская, Пензенская обл., Центральная и Южная Россия, Восточная Сибирь, Дальний Восток) и Panaeolus subbalteatus (Центральная Россия, Сибирь). Содержащие псилоцибин грибы могут быть собраны в местах их естественного произрастания, а также искусственно культивированы на специальных средах.
В настоящее время к наркотическим средствам отнесены псилоцин и псилоцибин, а также плодовые тела грибов, их содержащие (Перечень наркотических средств, психотропных веществ и их прекурсоров, подлежащих контролю в Российской Федерации (Список 1)). Кроме того, в этих грибах может содержаться баеоцистин, который в настоящий момент не отнесен к контролируемым веществам.
Продолжительность действия наркотика равна 4 — 12 ч. Употребляются грибы, как правило, перорально, в свежем или высушенном виде. Дозы псилоцибина и псилоцина, вызывающие галлюцинации, равны примерно 10 мг.
Употребление грибов, содержащих псилоцин и псилоцибин, а также самих алкалоидов в чистом виде изменяет настроение и характер мышления, вызывает возбуждение центральной нервной системы, что приводит к сдвигу сознания и к эйфории. Это состояние выражается в нарушении способности логически рассуждать, возникновении зрительных и звуковых галлюцинаций, а также состояния расслабленности и эйфории. Наблюдаются расширение зрачков и нарушение координации, при передозировке — раздвоение в глазах, тахикардия, гипертензия, повышение температуры, тошнота, рвота.
При употреблении грибов возможны побочные эффекты, основным из которых является так называемый bad trip. Это состояние характеризуется чувством тревоги, доходящей до состояния паники. Другим побочным эффектом является так называемый flashback. Он выражается в неожиданном возникновении повторения галлюцинаций после употребления наркотика, что может вызвать опасность получения травм и смерти при его возникновении в таких ситуациях, как вождение автомобиля, работа на производстве и др.
Структурные формулы и физические свойства псилоцибина, псилоцина и баеоцистина
Псилоцибин (0-фосфорил-4-гидрокси-N, 1 N-диметилтриптамин), брутто-формула C12H17N2O4P; М.м. = 284,25 — белый кристаллический порошок, растворим в разбавленной уксусной кислоте, кипящей воде в соотношении 1:20, в кипящем метаноле — 1:120, нерастворим в хлороформе, бензоле. Температура плавления — 220 — 228 °C (из воды), 185 — 195 °C (из метанола).
Псилоцин (4-гидрокси-N, N-диметилтриптамин), брутто-формула C12H16N2O; М.м. = 204,27 — белый кристаллический порошок, растворим в разбавленной уксусной кислоте и этаноле, слабо растворим в воде. Температура плавления — 173 — 176 °C (из метанола).
Баеоцистин (0-фосфорил-4-гидрокси-N-метилтриптамин), брутто-формула C11H15N2O4P; М.м. = 270,28 — белый кристаллический порошок. Температура плавления — 254 — 258 °C (из метанола).
ОСОБЕННОСТИ МОРФОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ ПЛОДОВЫХ ТЕЛ ГРИБОВ
При решении вопроса о принадлежности поступившей на исследование массы (вещества) к грибам (плодовым телам грибов) следует изучить особенности строения частиц. Плодовые тела шляпочных грибов отдела Базидиомикота (см. Приложение 4) состоят из шляпки и ножки. На нижней части шляпки расположен гименофор, состоящий из базидии и базидиоспор, образующих спороносный слой. Споры и базидии имеют различную окраску, от которой зависит цвет всего гименофора.
Гименофор может быть различного типа — гладкий, складчатый, шиповатый, трубчатый, пластинчатый. Поскольку для описанных в данной работе псилоцибиносодержащих грибов характерен пластинчатый гименофор, подробно будет описан именно этот тип.
Пластинчатый гименофор представлен радиально расположенными пластинками (пластинки могут быть свободными, не достигающими ножки или достигающими, но не прикрепленными к ней, могут прикрепляться к ножке всем краем или зубцом, а также быть нисходящими (см. приложение 1). Пластинки в сечении имеют вид конуса, с двух сторон которого расположен гимений.
Значительная часть плодового тела (по объему) кроме гимения состоит из плотного переплетения гиф (плектенхимы). Сверху плодовое тело покрыто кожицей, состоящей из гиф с окрашенной оболочкой, что придает характерную окраску шляпке. Формы шляпок представлены в приложении 1.
При исследовании следует учитывать ряд морфологических особенностей плодовых тел грибов. У части агариковых (например, у рода Russula — сыроежек) пластинчатый гименофор закладывается открыто. У других агариковых грибов гименофор сначала прикрыт сплетением гиф — покрывалом. Имеются два типа покрывала: общее и частное. Общее покрывало одевает и шляпку, и ножку целиком, так что в молодом возрасте плодовое тело имеет вид беловатого или сероватого яйца или шара. По мере роста ножка вытягивается, вынося шляпку вверх, а покрывало разрывается и остается у основания ножки в виде влагалища (вольвы) и на поверхности шляпки — в виде хлопьевидных чешуек. Второй тип покрывала — частное — у молодого плодового тела только соединяет края шляпки с ножкой, прикрывая формирующийся гименофор (шампиньоны). При созревании края шляпки развертываются, а покрывало разрывается и остается в виде кольца на ножке, а у ряда видов — как бахрома по краю шляпки. У некоторых видов (например, род паутинник — Cortinarius) покрывало тонкое, паутинистое, и поэтому кольцо быстро исчезает. У мухоморов (род Amanita) плодовые тела имеют одновременно и общее, и частное покрывала (см. приложение 2).
Деление по семействам производят по окраске спор и гименофора, по наличию или отсутствию частного и общего покрывала, по строению и типу расположения пластинок по отношению к ножке.
Форма спор варьирует от правильно-округлой, эллипсоидальной до веретеновидно-вытянутой; встречается угловатая или звездчатая форма. Поверхность может быть гладкая, щетинистая, бородавчатая, бугристая. Окраска спор — от бесцветных (белый споровый порошок) до почти черных. Форма и окраска спор являются наиболее постоянными и устойчивыми диагностическими признаками при дифференциации грибов.
Для исследования спор готовят споровый отпечаток. Для этого шляпки (2 — 3 зрелые, но не старые шляпки) отделяют от ножек и укладывают пластинками вниз на листок белой бумаги. Шляпки накрывают стеклянным или пластиковым колпаком и помещают в прохладном влажном месте. Обычно через день споровый отпечаток бывает готов. Чтобы споры не слетали с бумаги, а также для использования в дальнейшем образца спорового отпечатка, споры закрепляют следующим образом: обратную сторону бумаги смачивают спиртовым раствором канифоли или камеди (при этом спирт улетучивается, а частицы смолы закрепляют споры). Споровый отпечаток лучше всего хранить вместе с образцом.
МЕТОДИКИ ИССЛЕДОВАНИЯ
Предварительное исследование плодовых тел грибов. На этой стадии проводят внешний осмотр исследуемых образцов, как невооруженным глазом, так и с помощью средств оптической микроскопии, в ходе которого фиксируются состояние, особенности упаковки и масса объектов, при необходимости выявляют такие признаки исследуемых объектов, как цвет и наличие механических включений и примесей. В случае необходимости производится их механическое разделение для дальнейшего исследования.
В начале исследования необходимо установить общие признаки плодовых тел шляпочных грибов — наличие шляпок (целых или их фрагментов) с пластинчатым гименофором (пластинками) и (или) ножек (целых или их фрагментов). Плодовые тела могут быть представлены как целиком (шляпка и ножка вместе), так и фрагментарно (шляпки и ножки отдельно).
МОРФОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ
Наиболее полно порядок исследования псилоцибиносодержащих грибов разработан экспертами Санкт-Петербурга и Ленинградской области [19 - 20], который был принят за основу в данной работе.
I. Исследование спор
Исследование спор проводят в 3 этапа:
-
От шляпки при помощи пинцета (скальпеля, иглы) отделяют пластинку и помещают ее на предметное стекло (можно использовать споровый порошок из спорового отпечатка). Инструмент тщательно очищают после каждого использования.
-
На предметное стекло наносят каплю 5 — 8% КОН или воды (если исследовали свежее плодовое тело), 5 — 8% КОН (если исследовали высушенные плодовые тела или споровый порошок) и помещают объект исследования; затем накрывают препарат покровным стеклом, излишки жидкости убирают фильтровальной бумагой. Исследование проводят в поле зрения исследовательского микроскопа проходящего света с использованием нейтрального светофильтра при общем увеличении 400 и 600 крат.
-
Изучают форму отдельных спор (лучше всего сделать схематическую зарисовку 1 — 3 спор), определяют размер (длину и ширину) нескольких (5 — 7) спор с помощью окуляр-микрометра, размеры вносят в описание.
В зависимости от состояния плодовых тел грибов исследования проводят двумя путями.
II. Исследование свежих плодовых тел
Работу со свежим материалом необходимо проводить в минимальные сроки, не допуская изменения, разложения, гниения плодовых тел. При необходимости повторного исследования или последующего уточнения ответа эксперта материал хранят в закрытой пластиковой коробке в холодильнике 1 — 2 суток.
Определяют, являются ли поступившие на исследование плодовые тела смесью различных родов (видов) грибов или нет. Для этого сортируют смешанный материал по внешнему виду и раскладывают в отдельные конверты.
Из каждой пробы выбирают (не смешивая их) несколько (если позволял материал, 5 — 7) целых, неповрежденных, имеющих ножки, нормально развитых плодовых тел разного возраста и размера (рис. 1 — не приводится).
На первой стадии делают описание отобранного образца, отмечая следующие особенности:
- размер шляпки (диаметр, высота в мм);
- цвет шляпки (следует учитывать возможность искажения цвета под воздействием внешних условий — излишняя влажность или плодовые тела были подморожены);
- клейкая шляпка или нет;
- характер кожицы на шляпке (сдирается ли, легко ли отходит от шляпки, желатинозность);
- цвет пластинок гименофора шляпки зрелого плодового тела;
- размер ножки (диаметр, длина в мм);
- цвет ножки (необходимо отметить наличие голубого (синеватого) оттенка у основания);
- характер поверхности ножки (гладкая, волокнистая, сухая, влажная, клейкая и т.п.), строение ножки (сплошная, полая), характер мякоти (твердая, хрупкая, водянистая, кожистая, упругая, хрящеватая и т.д.), наличие остатков паутинистого или волокнистого частного покрывала (на молодых экземплярах в верхней части ножки, на расстоянии от шляпки, примерно равном ее радиусу).
Образец сушат целиком в потоке теплого воздуха (40 — 60 °C электросушилкой, лампой накаливания, на батарее отопления и т.п., не допуская как загнивания, так и пересушивания материала).
Высушенный образец хранят в сухом месте с описанием (и споровым отпечатком, если он имелся в наличии) в конверте из листа тонкой, но прочной бумаги. На конверте и на листке с описанием ставят номер образца.
III. Исследование высушенных плодовых тел
При анализе морфологических признаков сухих плодовых тел, поступивших на исследование, учитывают следующее:
- при сушке размер плодовых тел грибов уменьшается, но обычно не более чем в 2 раза, менее всего по основному направлению роста гиф — по длине ножки и по радиусу шляпки;
- цвет высушенных плодовых тел обычно намного светлее свежих. Голубой оттенок, наблюдаемый в основании ножки многих (но не всех) плодовых тел, часто сохраняется и в сухом виде;
- цвет пластинок гименофора при высушивании шляпок плодовых тел мало изменяется; споровый порошок несколько темнеет при высыхании.
Желатинозность шляпки определяют, нанося на ее поверхность 5% раствор КОН (иногда достаточно воды). Если шляпка была клейкой, а кожица желатинозной, эти признаки восстанавливались в месте смачивания.
Дальнейшие исследования проводят аналогично исследованию свежих плодовых тел. Внешний вид высушенных плодовых тел грибов рода Psilocyba приведен на рис. 2 и 3 (не приводятся).
Составленное описание сравнивают с описанием рода и вида грибов, содержащих псилоцибин и псилоцин. В данной работе приведены описания грибов в виде определителя (описания семейства — рода — вида), а также фотографии и иллюстрации. Кроме морфологических признаков трех видов псилоцибиносодержащих грибов, обнаруженных на территории России (Psilocybe semilanceata, Inocybe corydalina и Panaeolus subbalteatus), описаны грибы, наиболее часто выращиваемые на искусственных средах, а также представители родов, наиболее распространенные в естественных условиях произрастания.
ХИМИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ
Перед проведением химического исследования производят отбор представительной пробы исследуемого вещества в соответствии с методикой «Отбор проб при исследовании наркотических средств», утвержденной протоколом Постоянного комитета по контролю наркотиков от 16 ноября 1993 г. № 26. Если поступившие плодовые тела грибов имеют избыточную влажность, отобранные плодовые тела дополнительно высушивают при t = 50 — 60 °C до постоянной массы. Подготовленную пробу измельчают в ступке и гомогенизируют.
Для установления наличия в плодовых телах грибов псилоцибина и псилоцина могут применяться методы качественных цветных реакций, тонкослойной, газовой и жидкостной хроматографии и хроматомасс-спектрометрии по методикам, приведенным ниже.
Исследование методом качественных цветных реакций
Для проведения качественных цветных реакций можно использовать реактивы Эрлиха, Фреде и Марки.
Для этого несколько миллиграммов высушенных измельченных грибов заливают метанолом в соотношении «проба (г) — экстрагент (мл)» 1:10, помещают в ультразвуковую баню на 1 ч либо доводят до начала интенсивного кипения. После отстаивания и охлаждения несколько капель полученного экстракта наносят на предметное стекло или в фарфоровую чашку и упаривают при 50 °C досуха. К полученному сухому остатку прибавляют несколько капель какого-либо из указанных реактивов:
- при прибавлении реактива Эрлиха через 10 — 15 мин. наблюдают серо-фиолетовое окрашивание реактива;
- при прибавлении реактива Марки либо Фреде через 1 — 3 мин. наблюдают серо-коричневое окрашивание реактива.
Исследование методом тонкослойной хроматографии
Полученный ранее экстракт (3 — 10 мкл) наносят на хроматографическую пластину. Хроматографическое разделение проводят один раз в системах растворителей: н-бутанол — ледяная уксусная кислота — вода (2:1:1) или метанол — аммиак (100:1,5). После окончания хроматографирования пластину сушат при комнатной температуре до удаления растворителей, затем выявляют хроматографические зоны по гашению флуоресценции при 254 нм проявлением реактивом Эрлиха, Фреде или Марки.
Для хроматографирования используют пластины с немодифицированным слоем силикагеля (например, Sorbfil, Merck). Значение Rf на пластинах Merck DC-Alufolien Kieselgel 60 F254 и Sorbfil ПТСХ-П-В-УФ, а также окраска зон после проявления реактивом Эрлиха и реактивом Марки приведены в табл. 1, 2. Зона баеоцистина в системе № 1 располагается между зонами псилоцина и псилоцибина, а в системе № 2 коэффициент хроматографической подвижности баеоцистина совпадает с коэффициентом псилоцибина. Окраска зоны баеоцистина совпадает с окраской зоны псилоцибина.
ЗНАЧЕНИЕ Rf ИССЛЕДУЕМЫХ СОЕДИНЕНИЙ В СИСТЕМЕ Н-БУТАНОЛ — УКСУСНАЯ КИСЛОТА — ВОДА В СООТНОШЕНИИ 2:1:1
<*> Окраска появляется через 10 — 15 мин.
ЗНАЧЕНИЕ Rf ИССЛЕДУЕМЫХ СОЕДИНЕНИЙ В СИСТЕМЕ МЕТАНОЛ — АММИАК В СООТНОШЕНИИ 100:1,5
<*> Окраска появляется через 10 — 15 мин.
В зависимости от условий анализа указанные в табл. 1 и 2 значения Rf могут незначительно меняться, однако последовательность выхода отдельных компонентов остается такой же. Кроме того, указанные в таблицах цвета в зависимости от освещения и чистоты используемых реактивов могут отличаться оттенками.
В случае применения для исследования плодовых тел грибов исключительно метода тонкослойной хроматографии для достоверности необходимо в обязательном порядке подтверждать результаты анализа, полученные в системе № 1, исследованием в системе № 2.
Исследование методом газовой хроматографии
Метод газовой хроматографии применяют для качественного выявления псилоцина и псилоцибина. При исследовании псилоцина и псилоцибина получают их силильные производные с помощью силилирующей смеси — пиридин, триметилхлорсилан, бис-(триметилсилил)-трифторацетамид (BSTFA). Без получения силильных производных псилоцибин разлагается в испарителе хроматографа с образованием псилоцина (масс-спектр псилоцина приведен на рис. 7).
Газохроматографический анализ проводят в следующих условиях:
- колонка кварцевая капиллярная длиной 12 — 30 м и диаметром 0,2 — 0,32 мм с метилсиликоновой стационарной фазой (типа НР-1) либо с метилсиликоновой фазой, содержащей 5% фенильных групп (типа НР-5);
- температура испарителя 250 °C;
- температура детектора 290 °C;
- температура колонки меняется от 100 °C до 280 °C со скоростью 10 — 15 °C/мин.;
- время выдержки при конечной температуре 15 мин.;
- газ-носитель — гелий (азот), детектор пламенно-ионизационный;
- ввод пробы осуществляется с делением потока.
Для проведения исследования несколько миллиграммов высушенных и измельченных грибов заливают метанолом в соотношении «проба (г) — экстрагент (мл)» 1:10, помещают в ультразвуковую баню на 1 ч либо доводят до начала интенсивного кипения. После отстаивания и охлаждения смесь центрифугируют либо фильтруют через ватный фильтр. Фильтрат или осветленный после центрифугирования раствор упаривают досуха и добавляют к нему 0,1 мл пиридина, 0,1 мл триметилхлорсилана и 0,4 мл бис-(триметилсилил)-трифторацетамида (BSTFA). Полученную смесь нагревают при 100 °C в течение 2 ч в закрытой склянке, а затем хроматографируют в указанных выше условиях.
Индекс удерживания силильного производного псилоцина для колонки НР-1 равен 2098, псилоцибина — 2474.
Исследование методом хроматомасс-спектрометрии
Метод хроматомасс-спектрометрии применяют для установления качественного состава анализируемого объекта. Подготовка пробы аналогична пробоподготовке для газовой хроматографии.
Исследование проводят в следующих условиях:
- ионизация электронным ударом (энергия 70 эВ);
- колонка кварцевая капиллярная длиной 12 — 30 м и диаметром 0,2 — 0,32 мм с метилсиликоновой стационарной фазой (типа НР-1) либо с метилсиликоновой фазой, содержащей 5% фенильных групп (типа НР-5);
- температура испарителя 250 °C;
- температура интерфейса детектора 280 °C;
- температура колонки меняется от 50 °C до 280 °C со скоростью 10 — 15 °C/мин.;
- время выдержки при конечной температуре 10 мин.;
- газ-носитель — гелий;
- ввод пробы осуществляют с делением потока.
Идентификация выявленных компонентов производится по индексам удерживания и масс-спектрам при сопоставлении со спектрами, приведенными ниже.
На рис. 4 - 6 приведены: типичная хроматограмма силилированного экстракта плодовых тел грибов, масс-спектр псилоцина и масс-спектры силильных производных псилоцина, псилоцибина.
Рис. 4. Типичная хроматограмма силилированного экстракта плодовых тел грибов, содержащих псилоцин (1) псилоцибин (2)
Рис. 5. Масс-спектр силильного производного псилоцина
Рис. 6. Масс-спектр силильного производного псилоцибина
Исследование методом высокоэффективной жидкостной хроматографии
Метод высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) используют как для качественного выявления псилоцина и псилоцибина в плодовых телах грибов, так и для количественного определения этих алкалоидов (далее — определяемых веществ).
При проведении исследований используют вариант обращенно-фазной ВЭЖХ, при котором разделение компонентов анализируемых веществ проводят на колонках, упакованных сорбентами на основе силикагелей, модифицированных химически привитыми фазами «С18» или «ODS». Исследование проводят с использованием хроматографических систем для ВЭЖХ, оснащенных либо УФ-детектором с фотодиодной матрицей, либо многоволновым УФ-спектрофотометром. Ниже рассмотрен пример проведения исследования с использованием отечественного жидкостного хроматографа «Милихром-4», оснащенного многоволновым УФ-спектрофотометром. Однако в общем случае данная методика рассчитана на возможность применения хроматографических систем, оснащенных любым из указанных выше детекторов и обеспечивающих параметры хроматографического разделения компонентов анализируемых веществ с аналогичными или превосходящими их характеристиками.
При использовании хроматографа «Милихром-4» анализ проводят в следующих условиях:
- колонка 2 x 100 мм, упакованная обращенно-фазным сорбентом «Сепарон SGX С-18» с размером частиц 5 мкм (ООО «Медикант», г. Орел), или колонка аналогичного типа;
- подвижная фаза — фосфатный буфер: ацетонитрил в соотношении 90:10 объемных долей;
- режим элюирования изократический, скорость потока 100 мкл/мин.;
- многоволновой режим детектирования УФ-спектрофотометра на пяти длинах волн: 210, 230, 260, 282 и 292 нм;
- объем вводимой пробы анализируемого образца 10 мкл.
Приготовление подвижной фазы для хроматографирования. Основу подвижной фазы составляет фосфатный буфер, для приготовления которого в 1 л дистиллированной воды растворяют 3 г гидроксида калия, 12,0 г 82%-й ортофосфорной кислоты и 3 г диэтиламина (все реактивы — квалификации не ниже «хч»). Буфер должен иметь pH = 3. В случае необходимости значение pH буфера корректируют путем добавления водного раствора гидроксида калия либо ортофосфорной кислоты. Приготовленный буфер фильтруют через мембранный фильтр с размером пор не более 0,5 мкм и сразу же переливают в герметично укупориваемую емкость из темного стекла. Хранят готовый буфер в защищенном от света месте при температуре +(10 +/- 2) °C (например, в бытовом холодильнике).
Подвижную фазу готовят порционно, в количествах, не превышающих двух-трехдневную рабочую потребность, и хранят в защищенном от света месте при комнатной температуре. Для приготовления подвижной фазы фосфатный буфер и ацетонитрил смешивают в указанном выше соотношении непосредственно в рабочей емкости (лучше всего — в плоскодонной конической колбе вместимостью 150 — 200 мл с пришлифованной стеклянной пробкой), интенсивно перемешивая полученную смесь до образования гомогенного раствора. Непосредственно перед применением подвижную фазу дегазируют в рабочей емкости, помещая ее на 20 мин. в заполненную водой ультразвуковую ванну либо продувая в течение того же времени потоком газообразного гелия с расходом 40 — 50 мл/мин. (дегазация с применением гелия является более эффективной).
Установление параметров хроматографического разделения определяемых веществ и калибровка детектора хроматографа. С целью установления параметров хроматографического разделения псилоцибина и псилоцина для указанных условий анализа, а также для калибровки детектора хроматографа готовят тестовую модельную смесь определяемых веществ. Для этого точные навески стандартных образцов псилоцибина и псилоцина массой по 5 мг (с погрешностью 0,1 мг) помещают в мерную колбу вместимостью 100 мл с пришлифованной стеклянной пробкой и доводят до метки подвижной фазой. Полученную смесь в колбе тщательно перемешивают сначала механическим способом в течение 5 мин., а затем помещая колбу со смесью на 10 мин. в ультразвуковую ванну, заполненную водой с температурой +(14 +/- 2) °C. Полученную таким образом тестовую модельную смесь (с точно известными значениями концентраций псилоцибина и псилоцина 50 мкг/мл) выдерживают до выравнивания ее температуры с температурой рабочей зоны, фильтруют через мембранный фильтр с размером пор не более 0,5 мкм, дегазируют, продувая в течение 10 мин. потоком газообразного гелия, а затем сразу же хроматографируют в указанных выше условиях. Срок хранения готовой модельной смеси — не более одних суток в защищенном от света месте при температуре +(10 +/- 2) °C (например, в бытовом холодильнике). Однако оптимальным является проведение анализа смеси непосредственно после ее приготовления. Хроматограмма тестовой модельной смеси представлена на рис. 8.
Рис. 8. Хроматограмма тестовой модельной смеси определяемых веществ (раствор псилоцибина и псилоцина в подвижной фазе со значениями концентраций 50 мкг/мл), полученная в режиме многоволнового детектирования УФ-спектрофотометра «Милихром-4» (1 — псилоцибин, 2 — псилоцин)
Хроматографические параметры разделения псилоцибина и псилоцина в составе тестовой модельной смеси для указанных условий проведения анализа представлены в табл. 3.
ХРОМАТОГРАФИЧЕСКИЕ ПАРАМЕТРЫ РАЗДЕЛЕНИЯ ПСИЛОЦИБИНА И ПСИЛОЦИНА В СОСТАВЕ ТЕСТОВОЙ МОДЕЛЬНОЙ СМЕСИ
| Определяемое вещество | Абсолютное время удерживания, мин. | Исправленное время удерживания, мин. | Коэффициент емкости, относительных ед. |
|---|---|---|---|
| Псилоцибин | 4,79 | 3,19 | 1,99 |
| Псилоцин | 11,89 | 10,29 | 6,43 |
Хроматограммы и УФ-спектры свободных образцов псилоцибина и псилоцина в виде их растворов в подвижной фазе, полученные при указанных условиях проведения анализа, представлены на рис. 9 и 10.
Рис. 9. Хроматограмма и УФ-спектр псилоцибина (раствор в подвижной фазе 50 мкг/мл)
Рис. 10. Хроматограмма и УФ-спектр псилоцина (раствор в подвижной фазе 50 мкг/мл)
Для количественного определения псилоцибина и псилоцина на хроматограммах экстрактов исследуемых образцов плодовых тел грибов применяют метод абсолютной калибровки. С этой целью детектор хроматографа калибруют с использованием градуировочных растворов определяемых веществ с точно известными значениями их концентраций. В качестве исходного градуировочного раствора используют ранее полученную тестовую модельную смесь — раствор псилоцибина и псилоцина в подвижной фазе с точно известными значениями их концентраций — по 50 мкг/мл. Кроме того, готовят еще три градуировочных раствора. С этой целью точно отмеренные объемы указанной выше тестовой модельной смеси смешивают с точно отмеренными объемами подвижной фазы, рассчитанными таким образом, чтобы значения концентраций каждого из определяемых веществ в полученных таким образом градуировочных растворах составляли: в первом растворе — по 25 мкг/мл, во втором растворе — по 12,5 мкг/мл и в третьем растворе — по 6,25 мкг/мл. Затем исходный градуировочный раствор (тестовую модельную смесь) и каждый из трех дополнительно полученных градуировочных растворов хроматографируют при неизменных условиях анализа, и по результатам проведенных анализов для каждого определяемого вещества строят график зависимости площади его хроматографического пика от концентрации в растворе. При этом установлено, что для обоих определяемых веществ — псилоцибина и псилоцина — линейная зависимость сигнала, детектируемого на длине волны 210 нм, сохраняется в диапазоне значений их концентраций в анализируемых растворах от 50 мкг/мл до 6,25 мкг/мл, а предел обнаружения псилоцибина и псилоцина в указанных условиях хроматографирования составляет не менее чем 0,0625 мкг.
Количественное определение псилоцибина и псилоцина в плодовых телах грибов. От подготовленной, как это указано выше, представительной пробы поступивших на исследование плодовых тел отбирают три точных навески вещества массой по 100 мг каждая (погрешность взвешивания 1,0 мг). Каждую навеску переносят в герметично укупориваемую склянку, заливают точно измеренным объемом — 5,0 мл подвижной фазы, применяемой при хроматографировании, и проводят экстракцию в течение 30 минут, помещая склянки в ультразвуковую ванну, заполненную водой с температурой +(14 +/- 2) °C. Полученные экстракты фильтруют через мембранный фильтр с размером пор не более 0,5 мкм, дегазируют, продувая в течение 10 мин. потоком газообразного гелия, а затем хроматографируют в указанных выше условиях. Срок хранения полученных экстрактов не более одних суток в защищенном от света месте при температуре +(10 +/- 2) °C (например, в бытовом холодильнике).
Однако оптимальным является проведение их анализа непосредственно после приготовления.
Возможные варианты типичных хроматограмм экстрактов плодовых тел грибов представлены на рис. 11 и 12.
Рис. 11. Вариант типичной хроматограммы экстракта плодовых тел грибов, содержащих только псилоцибин (3 — псилоцибин, 1, 2, 4 — соэкстрактивные вещества и прочие алкалоиды)
Рис. 12. Вариант типичной хроматограммы экстракта плодовых тел грибов, содержащих псилоцибин и псилоцин (4 - псилоцибин, 6 — псилоцин, 1 — 3, 5 — соэкстрактивные вещества и прочие алкалоиды)
Выявление на хроматограммах экстрактов плодовых тел грибов пиков, соответствующих псилоцибину и псилоцину, проводят путем сравнения времени удерживания компонентов этих хроматограмм с временем удерживания пиков псилоцибина и псилоцина на хроматограмме тестовой модельной смеси. При совпадении времени удерживания пиков конкретных компонентов проводят сравнение их УФ-спектров с УФ-спектрами пиков псилоцибина и псилоцина на хроматограммах их свободных образцов. Кроме того, для пиков компонентов с близкими значениями времени удерживания и похожими УФ-спектрами в качестве подтверждающего метода применяют «метод добавок». Расчет массовой доли (X, %масс.) определяемого вещества (псилоцибина или псилоцина) в представительной пробе исследуемого образца плодовых тел грибов проводят по формуле (1) с использованием соответствующего градуировочного графика, определяемого вещества:
где: С — концентрация определяемого вещества (псилоцибина или псилоцина) в исследуемом экстракте, найденная по соответствующему градуировочному графику, мкг/мл; V — объем подвижной фазы, взятый для проведения экстракции навески представительной пробы исследуемого образца плодовых тел грибов, мл; m — масса навески представительной пробы исследуемого образца плодовых тел грибов, подвергнутой экстракции, мг.
Средние значения массовой доли (Хср., %масс.) определяемых веществ, а также их доверительные интервалы в представительной пробе исследуемого образца плодовых тел грибов рассчитывают по результатам трех параллельных определений (определений для трех точных навесок, отобранных от представительной пробы). С учетом исходной массы и влажности представленного на исследование образца плодовых тел грибов и полученных средних значений массовой доли каждого из определяемых веществ в его представительной пробе рассчитывают количество (массу) псилоцибина и псилоцина в исследуемом объекте.
Определение количества наркотического средства
После отнесения исследуемого объекта к наркотическому средству «плодовые тела грибов, содержащих псилоцибин и (или) псилоцин» производится определение его количества.
Определение количества наркотического средства «плодовые тела грибов, содержащих псилоцибин и (или) псилоцин» производится взвешиванием плодовых тел, высушенных до постоянной массы при t = 110 — 115 °C.
Кроме того, возможно определение количества наркотического средства путем определения содержания псилоцина и псилоцибина, например методом жидкостной хроматографии.
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Схема проведения исследования на принадлежность объектов к наркотическому средству включает следующие стадии:
1. Внешний осмотр и отбор представительной пробы.
2. Проведение исследования теми методами, которые требуются для решения поставленного вопроса, в зависимости от оборудования, имеющегося в распоряжении эксперта.
3. В случае необходимости определение количества наркотического средства.
ЛИТЕРАТУРА
1. Handbuch der Rauschdrogen. W. Schmidbauer, J. vom Scheidt.Fischer Taschenbuch Verlag. 1998.
2. The Merck Index, Twelfth Edition on CD-ROM, ver. 12:1. 1996.
3. Clarke's isolation and identification of drugs. The Farmaceutical Press. London, 1986.
4. Веселовская Н.В., Коваленко А.Е. Наркотики. М.: Триада-Х, 2000.
5. Recommended Methods for Testing Peyote Cactus (Mescal Buttons)/Meskalme and Psilocybine Mushrooms/Psilocybin. United Nations. Dovision of Narcotic Drugs, Vienna, 1989.
6. Яковлев Г.П., Челомбитько В.А. Ботаника. Учебник для фармацевтических институтов и фармацевтических факультетов медицинских институтов. М.: Высшая школа, 1990.
7. Великанов Л.Л., Гарибова Л.В., Горбунов Н.П., Горленко М.В. Курс низших растений, М.: Высшая школа, 1981.
8. Сержанина Г.И., Змитрович И.И. Макромицеты. Минск: Высшая школа, 1986.
9. Горленко М.В. Жизнь растений. Т. 2. М.: Просвещение, 1976.
10. Рейвн П., Эверт Р., Айкхорн. Современная ботаника. Т. 1. М.: МИР, 1990.
11. Гарибова Л.В., Сидорова И.И. Энциклопедия природы России. Грибы. М.: ABF, 1997.
12. Гарибова Л.В. В царстве грибов. М.: Лесная промышленность, 1981.
13. Горленко М.В., Гарибова Л.В., Сидорова И.И. Все о грибах. М.: Лесная промышленность, 1985.
14. Лебедева Л.А. Определитель шляпочных грибов. Л. Сельхозиздат, 1949.
15. Определитель грибов России / Под ред. М.А. Бондарцева. Ботанический институт им. В.Л. Комарова. Вып. 1. СПб.: Наука, 1996.
16. Вишневский М.В. Грибы Московской области, несъедобные, ядовитые и галлюциногенные. Справочник-атлас. М.: Формико-С, 2001.
17. Максимова Г.А. Грибные тайны. Абакан: Изд. Хакасского государственного университета им. Н.Ф. Катанова, 1999.
18. Кузьминых К.С., Казанков С.П., Коваленко А.Е. Экспертное исследование псилоцибиносодержащих грибов // Экспертная практика. 1998. № 45. С. 25 — 36.
19. Бурданова В.С., Казанков С.П., Кузьминых К.С., Коваленко А.Е. Новый вид наркотиков — грибы. Информационный бюллетень следственного комитета МВД России. М.: 1998. С. 127 — 132.
20. Бабаханян Р.В., Бушуев Е.С., Казанков С.П., Костырко Т.А., Коваленко А.Е., Кузьминых К.С., Сафрай А.Е., Ягмуров О.Д. Псилоцибиносодержащие грибы (криминалистическое и судебно-медицинское исследование). СПб.: Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, Санкт-Петербургская академия МВД России, Экспертно-криминалистическое управление ГУВД СПб. и Ленинградской области, 1998.
21. Данилин А. LSD. Галлюциногены, психоделия и феномен зависимости. М.: Центрполиграф, 2003.
22. Мартин Кноп. Все о грибах. М.: БММ АО, 2000.
23. Марлин Добкин де Риос. Растительные галлюциногены. М.: КСП, 1997.
24. Phillips Roger. Mushroom and other fungi of Great Britain and Europe. 1981.
25. Phillips Roger. Mushrooms (the photographic guide to identify common and important mushrooms). 1986.
26. Peter Stafford. Psychedelics Encyclopedia (Third Expanded Edition). Ronin Publishing, Inc., Berkeley, CF 94701. 1982.
27. Shultes RT, Hofmann A. Plants of the Gods, Inner Traditions, 1992.
28. Stafford P. Psychedelics Encyclopedia, Ronin, 1992.
29. Ray, Oakley and Charles Ksir. Drugs, Society and Human Behaviour.
30. Ott J. Pharmacotheon. Natural Product Co., 1993.
31. Аурел Дермек. Грибы. Братислава: Словарт, 1989.
32. Вронский В.А. Прикладная экология (учебное пособие). Ростов-на-Дону: Феникс, 1996.
33. Мюллер Э., Леффлер В. Микология (пер. с нем.). М.: Мир, 1995.
ФОРМЫ ШЛЯПОК И РАСПОЛОЖЕНИЕ ПЛАСТИНОК
1. Формы шляпок
2. Расположение пластинок
Приложение 2
1. Формы ножки гриба
а — округло-боченковидная; б — боченковидная; в — булавовидная; г — цилиндрическая; д — веретеновидная с корневидным придатком; е — коническая; ж — веретеновидная; з — цилиндрическая с клубневидным придатком
2. Общее и частное покрывало (схема развития гриба)
А — все плодовое тело обернуто общим покрывалом (яйцевидная стадия); Б — после разрыва общего покрывала, его фрагменты остаются у основания ножки в виде свободной вольвы, а на шляпке (редко) — в виде больших лоскутков; В — окончательное развитие плодового тела с разорванным частным покрывалом: а — общее покрывало; б — частное покрывало; в — остаток общего покрывала у основания ножки (свободная вольва); г — остаток общего покрывала на шляпке (лоскуток); д — остаток частного покрывала на ножке (кольцо)
ПРИГОТОВЛЕНИЕ РЕАКТИВОВ ДЛЯ КАПЕЛЬНЫХ ЦВЕТНЫХ РЕАКЦИЙ, ПРОЯВЛЕНИЯ ПЛАСТИН ДЛЯ ТОНКОСЛОЙНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ И ПИРИДИНА
Вариант 1: К 1 мл формалина (36% водного раствора формальдегида) осторожно при перемешивании добавляют 9 мл концентрированной серной кислоты.
Вариант 2: К 0,22 г порошка уротропина (гексаметилентетрамина, гексамина) добавляют 1 мл воды и осторожно при перемешивании добавляют 8 мл концентрированной серной кислоты.
Приготовленный бесцветный реактив после охлаждения используют для проведения цветных капельных реакций и для проявления хроматограмм. Реактив может храниться длительное время в закрытой таре.
1 г п-диметиламинобензальдегида растворяют в 10 мл метанола, с последующим добавлением 10 мл концентрированной ортофосфорной кислоты. Приготовленный реактив желтого цвета используют для проведения цветных капельных реакций и для проявления хроматограмм. Реактив хранится в закрытой таре.
К 0,5 г порошка молибдата аммония (натрия) при перемешивании добавляют 10 мл концентрированной серной кислоты. Для полного растворения осадка рекомендуется слегка подогреть полученную смесь. Приготовленный бесцветный реактив используют для проведения цветных капельных реакций и для проявления хроматограмм. Реактив хранится в закрытой таре.
Подготовка пиридина для газовой хроматографии и хроматомасс-спектрометрии:
Пиридин, применяемый для приготовления силирующей смеси, сушат над гранулированным гидроксидом калия в течение суток, периодически встряхивая смесь, а затем перегоняют.