Постановление Главного государственного санитарного врача РФ от 15.04.2003 № 42

(ред. от 12.05.2010)

«О введении в действие Санитарно-эпидемиологических правил СП 1.3.1285-03»

(вместе с «СП 1.3.1285-03. 1.3. Эпидемиология. Безопасность работы с микроорганизмами I — II групп патогенности (опасности). Санитарно-эпидемиологические правила», утв. Главным государственным санитарным врачом РФ 12.03.2003)

(Зарегистрировано в Минюсте РФ 15.05.2003 № 4545)

Зарегистрировано в Минюсте РФ 15 мая 2003 г. № 4545

ГЛАВНЫЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ САНИТАРНЫЙ ВРАЧ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

ПОСТАНОВЛЕНИЕ

от 15 апреля 2003 г. № 42

На основании Федерального закона «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения» от 30 марта 1999 г. № 52-ФЗ (Собрание законодательства Российской Федерации, 1999, № 14, ст. 1650) и «Положения о государственном санитарно-эпидемиологическом нормировании», утвержденного Постановлением Правительства Российской Федерации от 24 июля 2000 г. № 554 (Собрание законодательства Российской Федерации, 2000, № 31, ст. 3295), постановляю:

Ввести в действие с 25 июня 2003 года санитарно-эпидемиологические правила «Безопасность работы с микроорганизмами I — II групп патогенности (опасности). СП 1.3.1285-03», утвержденные Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 12 марта 2003 г.

12 марта 2003 г.

Дата введения: 25 июня 2003 г.

1.3 ЭПИДЕМИОЛОГИЯ

БЕЗОПАСНОСТЬ РАБОТЫ С МИКРООРГАНИЗМАМИ

Санитарно-эпидемиологические правила СП 1.3.1285-03

I. Область применения

1.1. Настоящие санитарно-эпидемиологические правила (далее санитарные правила) разработаны в соответствии с Федеральным законом «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения» от 30 марта 1999 г. № 52-ФЗ (Собрание законодательства Российской Федерации, 1999, № 14, ст. 1650), «Положением о государственном санитарно-эпидемиологическом нормировании», утвержденным Постановлением Правительства Российской Федерации от 24 июля 2000 г. № 554 (Собрание законодательства Российской Федерации, 2000, № 31, ст. 3295).

1.2. Санитарные правила устанавливают требования к организационным, санитарно-противоэпидемическим (профилактическим) мероприятиям, направленным на обеспечение личной и общественной безопасности, защиту окружающей среды при работе с патогенными биологическими агентами (ПБА) I — II групп патогенности — патогенными для человека микроорганизмами (бактериями, вирусами, хламидиями, риккетсиями, грибами), включая генно-инженерно-модифицированные, ядами биологического происхождения (токсинами), а также любыми объектами и материалами, включая полевой, клинический, секционный, подозрительными на содержание перечисленных агентов.

1.3. Санитарные правила предназначены для юридических лиц, независимо от организационно-правовых форм и форм собственности и индивидуальных предпринимателей, проводящих работы с объектами и материалами, содержащими или подозрительными на содержание микроорганизмов I — II групп патогенности:

• диагностические (исследования объектов биотической и абиотической природы, проводимые с целью обнаружения, выделения и идентификации возбудителя, его антигена или антител к нему);
• ПЦР-диагностику (этап обработки и подготовки проб);
• экспериментальные (все виды работ с использованием микроорганизмов, гельминтов, токсинов и ядов биологического происхождения);
• производственные (работы по производству медицинских иммунобиологических препаратов с использованием микроорганизмов и продуктов их микробиологического синтеза);
• зоолого-энтомологические;
• сбор полевого материала на эндемичных по природно-очаговым инфекциям территориях и его транспортирование;
• содержание диких позвоночных животных и членистоногих;
• в инфекционных очагах заболеваний и по эвакуации больных особо опасными инфекциями (ООИ);
• в больницах (госпиталях), изоляторах и обсерваторах;
• патолого-анатомические по вскрытию трупов людей и павших животных.

II. Требования к организации работ с патогенными биологическими агентами I — II групп в лабораториях

<1> Под лабораторией в данном документе понимается организация или структурное подразделение организации, выполняющее экспериментальные, диагностические, производственные работы с патогенными биологическими агентами.

2.1 Общие требования.

2.1.1. Юридические лица, независимо от организационно-правовых форм и форм собственности и индивидуальные предприниматели, осуществляющие деятельность, связанную с использованием возбудителей инфекционных заболеваний, должны иметь на нее лицензию.

Каждое структурное подразделение, проводящее работу с ПБА I — II групп, должно иметь санитарно-эпидемиологическое заключение о возможности проведения определенного вида работ с конкретными видами микроорганизмов в порядке, регламентированном нормативными документами.

2.1.2. Хранение ПБА, их учет, обмен с другими организациями и уничтожение осуществляют согласно санитарным правилам о порядке учета, хранения, передачи и транспортирования микроорганизмов I — IV групп патогенности.

Не допускается передача ПБА в организации, не имеющие лицензии на деятельность, связанную с использованием возбудителей инфекционных заболеваний соответствующей группы патогенности.

Хранение ПБА осуществляют в помещениях «заразной» зоны, где осуществляют манипуляции с ПБА. Допускается хранение в «чистой» зоне, где не проводят работы с ПБА, в специально выделенном и оборудованном помещении музейных коллекций культур микроорганизмов, упакованных в соответствии с требованиями, предъявляемыми к транспортированию ПБА I — II групп патогенности.

Передача обеззараженного материала между лабораториями одной организации и за ее пределы допускается после проверки на специфическую стерильность, регламентированную соответствующими нормативными документами.

2.1.3. Все виды работ с вирусами I группы патогенности и микроорганизмами, таксономическое положение которых не определено, а степень опасности не изучена, а также аэробиологические исследования проводят в максимально изолированных лабораториях.

2.1.4. Работа с рекомбинантными молекулами ДНК регламентируется Федеральным законом «О государственном регулировании в области генно-инженерной деятельности» от 5 июля 1996 г. № 86-ФЗ (Собрание законодательства Российской Федерации, 1996, № 28, ст. 3348), нормативными документами по безопасности работы с рекомбинантными молекулами ДНК, настоящими санитарными правилами.

2.1.5. Работа по производству медицинских иммунобиологических препаратов регламентируется настоящими санитарными правилами и другими нормативными документами, содержащими требования к помещениям, оборудованию производственных лабораторий, технике безопасности и производственной санитарии.

2.1.6. Диагностические исследования на холеру и ботулинический токсин, выполняемые с целью профилактики холеры и ботулизма, а также иммунологические (серологические) исследования по обнаружению в крови людей антигенов микроорганизмов II группы патогенности (без накопления возбудителя) и/или антител к ним могут проводиться в лабораториях, осуществляющих свою деятельность в установленном порядке.

Материал для серологических исследований подлежит предварительной обработке в соответствии с п. 2.8.16 настоящих санитарных правил. Исследования на обнаружение антигена или определение антител к вирусам II группы патогенности в связи с отсутствием регламентированных методов инактивации вирусов проводят только в боксированном помещении или боксе биологической безопасности.

2.1.7. ПЦР-диагностику на наличие ПБА I — II групп патогенности проводят в соответствии с нормативными документами в организациях, осуществляющих свою деятельность в установленном порядке, на работу с микроорганизмами I — II групп патогенности. Передачу обеззараженного материала за пределы организации осуществляют в соответствии с п. 2.1.2 настоящих санитарных правил.

Допускается проведение исследований по детекции в крови людей возбудителей бруцеллеза, парентеральных вирусных гепатитов В и С, СПИДа (без накопления возбудителя) в лабораториях, имеющих санитарно-эпидемиологическое заключение о возможности проведения работ с возбудителями III группы патогенности, выданное в установленном порядке. Обеззараживание проб осуществляют согласно установленному порядку по обеззараживанию исследуемого материала, инфицированного бактериями I — IV групп патогенности, при работе методом ПЦР. Исследования по детекции вирусов II группы патогенности проводят в боксированном помещении или боксе биологической безопасности.

2.1.8. Для каждого структурного подразделения, проводящего производственные или экспериментальные работы, разрабатывают документ, определяющий режим безопасной работы с ПБА в конкретных условиях, с учетом характера работ и особенностей технологии. При этом требования безопасности не должны быть ниже требований, регламентируемых настоящими санитарными правилами. Документ согласовывается с комиссией по контролю соблюдения требований биологической безопасности, создаваемой в организациях и утверждаемой ее руководителем.

При разработке и/или внедрении новых методов и методических приемов, требующих усиления мер безопасности, в документ вносят соответствующие дополнения.

2.1.9. Работу с ПБА выполняют специалисты не моложе 18 лет с высшим и средним медицинским, биологическим, ветеринарным и иным образованием в соответствии с принятым каждым ведомством порядком замещения должностей, окончившие соответствующие курсы специализации с освоением методов безопасной работы с ПБА I и II групп, не имеющие противопоказаний к лечению специфическими препаратами и к работе в средствах индивидуальной защиты.

2.1.10. Инженерно-технический персонал, дезинфекторы и санитарки структурного подразделения, осуществляющего деятельность с ПБА I — II групп, проходят специальную подготовку по биологической безопасности по месту работы в соответствии с должностными обязанностями.

2.1.11. Допуск персонала к работе с ПБА, инженерно-технического персонала к обслуживанию оборудования лабораторий (отделов, отделений) осуществляет руководитель организации один раз в два года, а допуск персонала к работе с биологическими аэрозолями — ежегодно после проверки знаний по биологической безопасности.

2.1.12. Разрешение на посещение лаборатории инженерно-техническому персоналу, не работающему постоянно в учреждении, выдает руководитель организации. Посещение осуществляется после прекращения работы и проведения текущей дезинфекции в сопровождении сотрудника структурного подразделения и регистрируется в журнале.

2.1.13. Специалистов (врачей медицинского и ветеринарного профиля, биологов и др.), постоянно не работающих в организации, допускают к работе с ПБА на общих основаниях (п. п. 2.1.9, 2.1.11).

Специалистов, постоянно не работающих в организации, допускают в помещения, где проводят работу с ПБА, по письменному разрешению руководителя организации. Цель посещения и его продолжительность регистрируются в журнале. В особых случаях возникновения внештатных ситуаций администрация оговаривает порядок выезда указанных специалистов.

2.1.14. Каждый сотрудник лаборатории (организации) и прикомандированные лица обязаны сообщать о выявленных нарушениях биологической безопасности руководителю подразделения.

2.1.15. Срочность проведения работ, недостатки в материально-техническом обеспечении и другие мотивы не могут служить основанием для отступления от требований настоящих санитарных правил.

2.1.16. Организацию комплекса мероприятий по биологической безопасности в организации в целом обеспечивает ее руководитель, а по подразделениям — их заведующие.

2.1.17. Территория и помещения организации подлежат круглосуточной охране. Территория должна иметь ограждение, препятствующее бесконтрольному проникновению посторонних лиц.

2.2 Требования к медицинскому наблюдению за персоналом.

2.2.1. При приеме на работу, связанную с ПБА, персонал проходит предварительный медицинский осмотр с целью выявления противопоказаний с учетом вакцинопрофилактики, лечения специфическими препаратами и применения средств индивидуальной защиты. Объем и порядок проведения медосмотра определяются нормативными документами.

2.2.2. Все сотрудники, работающие с ПБА, подлежат диспансерному наблюдению. Периодические медицинские осмотры проводят в соответствии с нормативными документами.

Лицам, работающим с возбудителями глубоких микозов, проводят постановку аллергических проб.

2.2.3. Сотрудникам, работающим с ПБА и по роду производственной деятельности посещающим помещения «заразной» зоны, в которых осуществляют работы с ПБА I — II групп (кроме возбудителя холеры), проводят иммунизацию. Оценку уровня иммунитета проводят одним из стандартных методов до и после вакцинации (ревакцинации).

2.2.4. Лиц, имеющих противопоказания к вакцинопрофилактике, при наличии средств эффективного специфического лечения допускают к работе отдельным приказом по организации в соответствии с их письменным заявлением. К работе в аэрозольных лабораториях и с материалом, зараженным или подозрительным на зараженность возбудителем лихорадки Ку, а также к работе с ПБА, против которых не разработаны методы специфического лечения, указанную категорию сотрудников не допускают.

2.2.5. Лиц с нарушениями иммунной системы к работе в максимально изолированных лабораториях не допускают.

2.2.6. У всех сотрудников, работающих с ПБА или по роду производственной деятельности посещающих помещения «заразной» зоны, в которых работают с ПБА I — II групп (исключая холеру и яды биологического происхождения), проводят ежедневную термометрию, результаты которой фиксируют в журнале и заверяют подписью ответственного врача (научного сотрудника). Для лиц, работающих с возбудителем холеры, устанавливают обязательное обследование на вибриононосительство в случае дисфункции желудочно-кишечного тракта.

Лицам, работающим с вирусами I группы патогенности, ежедневно перед началом работы (смены) проводят медицинский осмотр.

2.2.7. В случае появления у сотрудника заболевания, предположительно вызванного возбудителями I — II групп патогенности, противоэпидемические, диагностические и лечебно-профилактические мероприятия проводят в соответствии с оперативным планом организации или территориальным комплексным планом мероприятий по локализации и ликвидации очагов особо опасных инфекций (ООИ).

2.2.8. При появлении у сотрудника симптомов, характерных для инфекционного заболевания, вызываемого возбудителем, с которым он работал, сотрудник ставит в известность руководителя подразделения или дежурного по организации. Персонал максимально изолированных лабораторий информирует администрацию во всех случаях возникновения недомогания. Дальнейшее решение принимает руководитель организации.

2.2.9. В случае заболевания сотрудника, работавшего с ПБА, на квартиру больного направляют врача организации (здравпункта, медсанчасти) с целью уточнения эпидемиологического анамнеза и решения вопроса о необходимости его изоляции. Результаты посещения регистрируют в журнале и доводят до сведения руководителя организации.

2.2.10. Вызов врача общемедицинской сети разрешается только после посещения больного врачом организации, исключением является обращение по жизненным показаниям. При этом больной или его родственники должны известить прибывшего врача о характере выполняемой работы и одновременно информировать о случившемся руководителя структурного подразделения.

2.2.11. Сотрудники, которые по тем или иным причинам не могут явиться на работу, в течение двух часов ставят об этом в известность заведующего подразделением. В случае неявки сотрудника в организацию в течение двух часов от начала работы и отсутствия сведений о его местонахождении заведующий подразделением принимает меры по установлению его местонахождения и причины отсутствия.

2.2.12. В специализированной организации, проводящей работу с возбудителями чумы, сапа, мелиоидоза, глубоких микозов и вирусами I группы патогенности, должен быть изолятор (инфекционный стационар), размещенный в обособленном помещении, оборудованный и оснащенный всем необходимым для поддержания строгого противоэпидемического режима. В стационар изолируют сотрудников при выявлении у них симптомов, характерных для заболеваний, вызываемых указанными агентами, а также допустивших аварию при работе с ПБА или оказавшихся в зоне аварии.

2.2.13. Решение об изоляции сотрудников и проведении специфического лечения принимает руководитель организации.

2.2.14. Врачи, обслуживающие изолятор (инфекционный стационар) должны пройти клиническую подготовку по особо опасным инфекциям. Персонал изолятора (стационара) допускают к работе в соответствии с п. п. 2.1.9, 2.1.11 и 2.2.4 настоящих санитарных правил. В случае необходимости к обслуживанию изолятора могут привлекаться врачи, лаборанты, дезинфекторы и санитарки из числа сотрудников организации, допущенных к работе с ПБА.

2.2.15. Для консультаций могут привлекаться опытные инфекционисты и другие специалисты, не имеющие допуска к работе с возбудителями I — II групп патогенности, если они будут предварительно проинструктированы по вопросам безопасности работы и одеты в соответствующую защитную одежду. Во время посещения больного их сопровождает врач изолятора организации. За консультантами устанавливают медицинское наблюдение (без изоляции) на срок инкубационного периода.

2.2.16. В изоляторе должен быть запас основных и резервных специфических лекарственных препаратов, запас медикаментов для оказания помощи по жизненным показаниям (кардиологические, противошоковые и т.д.). Комплектацию аптечки современными эффективными препаратами обеспечивает руководитель организации и врач изолятора.

2.2.17. Обо всех случаях заболевания сотрудников в результате аварии или лабораторного заражения во время работы с ПБА руководитель организации обязан немедленно информировать территориальные органы государственного санитарно-эпидемиологического надзора (далее госсанэпиднадзора) и здравоохранения, Департамент госсанэпиднадзора Минздрава России и Противочумный центр Минздрава России.

2.2.18. Обо всех случаях аварий во время работы с ПБА, требующих профилактического лечения пострадавшего, необходимо передавать информацию в Противочумный центр Минздрава России.

2.3 Общие требования к помещениям и оборудованию лабораторий.

2.3.1. Лаборатории, где проводят работу с ПБА, размещают в отдельно стоящем здании или в изолированной части здания. На входной двери лаборатории, имеющей запирающее устройство, должны быть обозначены название (номер) лаборатории и международный знак «Биологическая опасность».

2.3.2. Проекты строительства новых и реконструкции действующих лабораторий (подразделений) согласовывают с территориальными органами госсанэпиднадзора.

2.3.3. Лабораторию обеспечивают водопроводом, канализацией, электроэнергией, отоплением, вентиляцией и телефонной связью.

2.3.4. Все помещения лаборатории обеспечивают естественным и/или искусственным освещением, создающим уровень освещенности, в зависимости от вида работ в соответствии с требованиями нормативных документов.

2.3.5. Помещения лаборатории разделяют на «заразную» зону, где осуществляют манипуляции с ПБА и их хранение, и «чистую» зону, где не проводят работы с ПБА и их хранение.

Планировочные решения и размещение оборудования должны обеспечивать поточность продвижения ПБА и выполнение требований настоящих санитарных правил.

2.3.6 В «чистой» зоне лабораторий располагают:

• гардероб для верхней одежды;
• помещения для проведения подготовительных работ (препараторская, моечная, приготовление и разлив питательных сред и др.);
• помещение для стерилизации питательных сред и лабораторной посуды (стерилизационная);
• помещение с холодильной камерой или холодильниками для хранения питательных сред и диагностических препаратов;
• комнаты для работы с документами и литературой;
• комната отдыха;
• кабинет заведующего;
• подсобные помещения;
• туалет.

В «заразной» зоне располагают:

• блок для работы с инфицированными животными, состоящий из комнаты для приема, разборки и первичной обработки поступающего материала, комнаты для работы с этим материалом (заражение, вскрытие, посев), комнаты для содержания зараженных животных, комнаты для обеззараживания инвентаря (клетки, садки и др.); блок для работы с инфицированными животными должен быть отделен от остальной части «заразной» зоны комнатами для надевания и снятия защитной одежды;
• боксированные помещения для проведения микробиологических исследований;
• комнаты, оснащенные боксами биологической безопасности, для проведения микробиологических исследований;
• комнаты для проведения серологических исследований;
• комната для люминесцентной микроскопии;
• комната для проведения зооэнтомологических работ;
• помещения для ПЦР-диагностики;
• автоклавная для обеззараживания материала;
• термостатная (термальная) комната;
• комната для ведения записей в рабочих журналах;
• туалет.

2.3.7 На границе «чистой» и «заразной» зон располагают санпропускник.

2.3.8. Набор помещений и их оснащение оборудованием могут варьировать в зависимости от конкретных целей и задач каждой лаборатории (номенклатура и объем исследований, характер выполняемых работ, наличие централизованной лаборатории инфицированных животных, автоклавной, моечной и др.).

2.3.9. В «заразной» зоне в помещениях, где не проводят непосредственную работу с ПБА, персонал работает в рабочей одежде. В помещениях, где проводят работу с ПБА, дополнительно надевают защитную одежду. Тип защитной одежды зависит от характера выполняемой работы.

Надевание защитной одежды производят в предбоксе или при входе в микробиологическую комнату, снятие — в предбоксе или на выходе из микробиологической комнаты.

2.3.10. Внутреннюю отделку помещений выполняют в соответствии с их функциональным назначением. Поверхность пола, стен, потолка в лабораторных помещениях «заразной» зоны должна быть гладкой, без щелей, устойчивой к действию моющих и дезинфицирующих средств, полы не должны быть скользкими.

2.3.11. В помещениях «заразной» зоны выступающие и проходящие трубы (батареи отопления) располагают на расстоянии от стен с целью возможности проведения их дезинфекции, места ввода инженерных коммуникаций герметизируют.

2.3.12. В помещениях «заразной» зоны, где проводят работы с ПБА, не допускается установка системы водоснабжения, не защищенной техническими средствами от подсоса и обратного тока.

2.3.13. Из помещений «заразной» зоны не допускается слив (сток) необеззараженных жидкостей в канализационную сеть.

2.3.14. Окна и двери помещений «заразной» зоны лаборатории должны быть плотно закрывающимися. Допускается заполнение оконных проемов стеклоблоками. На окна цокольного и первого этажей устанавливают металлические решетки, не нарушающие правил пожарной безопасности. Наличие охранной сигнализации не исключает необходимости установки решеток. Двери должны иметь запирающие устройства.

2.3.15. В помещениях блока для работы с инфицированными животными ставят высокие (30 см) пороги, недоступные для проникновения грызунов.

2.3.16. Помещения блока для работы с инфицированными животными, боксированные помещения, микробиологические комнаты должны иметь автономную систему приточно-вытяжной вентиляции, изолированную от других вентиляционных систем здания, оборудованную фильтрами тонкой очистки (ФТО) на выходе, проверенными на защитную эффективность.

2.3.17. Эксплуатацию систем приточно-вытяжной вентиляции лабораторий (лабораторных зданий) осуществляют в соответствии с инструкцией организации, составленной на основании требований соответствующих нормативных документов.

2.3.18 Боксы биологической безопасности проверяют на защитную эффективность в следующих случаях:

• после монтажа и подготовки к использованию;
• не реже одного раза в год при наличии фильтров предварительной очистки воздуха от крупнодисперсных частиц;
• не реже одного раза в полугодие при отсутствии фильтров предварительной очистки воздуха от крупнодисперсных частиц в системе подаваемого в бокс и выводимого из него воздуха;
• после перемещения или ремонта бокса.

2.3.19. В предбоксах (шлюзах), а также в комнатах для снятия защитной одежды устанавливают водопроводные краны (рукомойники) и емкости с дезинфицирующими растворами на случай аварии. На полу размещают коврик, смоченный дезинфицирующим раствором.

2.3.20. Аварийную звуковую и/или световую сигнализацию выводят в помещения «заразной» или «чистой» зон, где постоянно находится персонал.

2.3.21. В помещениях для надевания защитной одежды устанавливают зеркало.

2.3.22. Лабораторное оборудование и мебель (столы, стеллажи для содержания животных, стулья и т.д.) должны быть гладкими, без острых краев и шероховатостей и иметь покрытие, устойчивое к действию моющих и дезинфицирующих средств. Поверхность столов не должна иметь швов и трещин.

2.3.23. Ширина проходов к рабочим местам или между двумя рядами выступающего оборудования должна быть не менее 1,5 метров.

2.3.24. Помещения, где проводят работу с ПБА, оборудуют бактерицидными облучателями для обеззараживания воздуха и поверхностей в соответствии с нормативными документами.

2.3.25. Для защиты рабочих столов от попадания прямого солнечного света используют светозащитные пленки, жалюзи из материала, устойчивого к дезинфицирующим средствам.

2.3.26. Помещения лабораторий должны быть непроницаемы для грызунов и насекомых.

2.3.27. Лабораторию оборудуют пожарной сигнализацией и обеспечивают средствами тушения пожара.

2.4. Дополнительные требования к помещениям и оборудованию лабораторий, проводящих диагностические исследования с патогенными биологическими агентами I (кроме вирусов) и II групп.

2.4.1. Лаборатории, проводящие диагностические исследования, оборудуют двумя входами — для сотрудников и для получения материала. Допускается также получение материала через передаточное окно.

2.4.2. В санпропускнике выделяют помещения для переодевания в рабочую одежду, оборудованные индивидуальными шкафчиками для личной и рабочей одежды, душевую.

2.4.3. При отсутствии в помещении приточно-вытяжной вентиляции или фильтров тонкой очистки (ФТО) на выходе вытяжной вентиляции в блоке для работы с инфицированными животными следует использовать боксы ББ II (А, Б) класса, а для исследований на чуму — II Б или III класса.

2.4.4. Диагностические исследования, связанные с изоляцией вирусов и риккетсий II группы патогенности, проводят в боксированных помещениях или в боксах ББ II Б класса.

2.4.5. В условиях жаркого климата разрешается установка кондиционеров в рабочих комнатах и боксах, при условии их выключения на время работы с ПБА. Не допускается установка кондиционеров в комнатах для содержания зараженных животных.

2.5. Дополнительные требования к помещениям и оборудованию лабораторий, проводящих экспериментальные работы с микроорганизмами I (кроме вирусов) и II групп патогенности.

2.5.1. В лабораториях, проводящих только экспериментальные исследования, допускается один вход.

2.5.2. В санитарном пропускнике выделяют раздельные комнаты для личной и рабочей одежды с индивидуальными шкафами, а также душевые, расположенные между этими двумя помещениями. Граница зон проходит по помещению душевой.

2.5.3. Сотрудники, проходя из «чистой» зоны в «заразную» через санитарный пропускник, оставляют личную одежду в индивидуальных шкафах, предназначенных для ее хранения, меняют свою обувь на тапочки для душа, проходят в помещение для надевания рабочей одежды и обуви. Порядок принятия душа при выходе из «заразной» зоны определяется в зависимости от вида возбудителя и характера работ и регламентируется правилами внутреннего распорядка или иным документом, утверждаемым руководителем организации.

Через санитарный пропускник разрешается проносить только ключи и печати.

2.5.4. При наличии в организации на одной территории нескольких лабораторий разрешается размещение и оборудование централизованных автоклавных и стерилизационных.

2.5.5. При расположении в одном блоке нескольких профильных лабораторий общими для них могут быть — блок для работы с инфицированными животными, санитарный пропускник, автоклавные для обеззараживания, моечные, комнаты для приготовления питательных сред и другие помещения.

2.5.6. В научно-исследовательских учреждениях, имеющих единые санитарные пропускники, централизованные автоклавные и др., обслуживающие несколько лабораторий, допускается размещение в «заразной» зоне вспомогательных помещений, в которых не проводят работы, связанные с использованием или хранением ПБА I — II групп патогенности, набор помещений определяют функциональными задачами подразделений. Режим обеспечения биологической безопасности в названных помещениях «заразной» зоны определяют в соответствии с реальной биологической опасностью документом, утверждаемым руководителем организации после согласования с комиссией по биологической безопасности данной организации.

2.5.7. Допускается кондиционирование воздуха помещений «заразной» зоны. Кондиционеры устанавливают на приточных вентиляционных системах до фильтров тонкой очистки. Установка оконных кондиционеров в помещениях этой зоны не допускается.

2.5.8. Работы, связанные с высоким риском образования аэрозоля (центрифугирование, гомогенизация, измельчение, интенсивное встряхивание, обработка ультразвуком, вскрытие объектов с зараженным материалом, большие объемы и высокая концентрация ПБА и др.), проводят в отдельных боксовых помещениях или боксах ББ III класса. Внутри боксов ББ устанавливают необходимое оборудование. Боксы ББ могут быть соединены между собой, создавая технологические линии. Места ввода коммуникаций и соединения боксов между собой герметизируют.

2.6. Дополнительные требования к устройству и оборудованию производственных помещений.

2.6.1. Порядок работы в производственных помещениях при работе с культурами микроорганизмов I — II групп патогенности устанавливают в соответствии с правилами техники безопасности, производственной санитарии и санитарно-противоэпидемического режима для организаций по производству бактерийных и вирусных препаратов, настоящими санитарными правилами, санитарными правилами по производству и контролю медицинских иммунобиологических препаратов для обеспечения их качества, а также инструкциями по лиофильному высушиванию возбудителей инфекционных заболеваний I — IV групп патогенности.

2.6.2. Все вакуумные линии, линии сжатого воздуха и газов в «заразной» зоне обеспечивают фильтрами тонкой очистки воздуха (ФТО).

2.7. Дополнительные требования к максимально изолированным лабораториям.

2.7.1. Проекты строительства и реконструкции максимально изолированных лабораторий (лабораторий максимального уровня биологической безопасности, предназначенных для проведения диагностических, экспериментальных и производственных работ с ПБА, представляющих высокую опасность для персонала лаборатории и населения) согласовывают с Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации или его заместителем.

2.7.2. На границе зон оборудуют санитарные пропускники, состоящие из воздушных тамбур-шлюзов с герметичными дверями (отдельных для входа и выхода сотрудников) и санитарно-бытовыми помещениями, в которых производится полное переодевание персонала, смена рабочей и специальной одежды, средств индивидуальной защиты, их обеззараживание, приведение в исходное состояние и хранение, душ для персонала, помещение для сушки волос.

2.7.3. Помещения «заразной» зоны должны быть оборудованы системами приточно-вытяжной механической вентиляции с фильтрами тонкой очистки, обеспечивающими:

• поддержание разрежения в помещениях с постоянным автоматическим регулированием его параметров и их регистрацией, допускается в помещениях «заразной» зоны существующих сооружений создание и регулирование разрежения другими способами;
• создание направленных потоков воздуха, наличие которых контролируется персоналом;
• очистку поступающего и удаляемого из помещений воздуха на необходимом количестве каскадов фильтров тонкой очистки;
• поддержание требуемых санитарно-гигиенических условий в помещениях.

2.7.4. В помещениях «заразной» зоны не допускается установка системы водоснабжения, не защищенной техническими средствами от подсоса или обратного тока.

2.7.5. Для обеззараживания отходов и предметов, передаваемых из помещений «заразной зоны», на границе зон устанавливают проходные автоклавы с двумя дверями, оснащенными блокировкой, препятствующей одновременному открыванию дверей.

2.7.6. Для передачи предметов, оборудования, защитной одежды и т.п., не выдерживающих воздействия высокой температуры при их обработке, на границе зон устанавливают пароформалиновые камеры, передаточные шлюзы с устройствами для распыления дезинфицирующих средств. Указанные передаточные устройства оснащают системой блокировки дверей.

2.7.7. Все жидкие отходы, образующиеся в процессе работы, подлежат обязательному химическому и термическому обеззараживанию. Стоки от гигиенического душа персонала подлежат обязательному термическому обеззараживанию.

2.7.8. Все виды работ проводят в боксах биологической безопасности III класса отечественного или зарубежного производства или в пневмокостюмах. При необходимости из боксов создают технологические линии.

2.7.9. Лаборатории оборудуют системой централизованного воздухоснабжения пневмокостюмов.

2.7.10. Пневмокостюмы подвергают дезинфекционной обработке, проверке их целостности и защитной эффективности фильтров после каждого посещения «заразной» зоны.

2.7.11. Персонал лаборатории проходит специальную подготовку по использованию пневмокостюмов.

2.7.12. Лаборатории оборудуют дублирующей системой электроснабжения, автономным (резервным, аварийным) источником питания (дизель-генератор).

2.7.13. Приточно-вытяжная система вентиляции, система подачи воздуха для пневмокостюмов, система сбора и обработки стоков и т.д. должны быть укомплектованы, наряду с основными рабочими агрегатами, дополнительными резервными.

2.7.14. Работа с ПБА разрешается только после положительных результатов комплексного испытания всех инженерно-технических систем обеспечения биологической безопасности.

2.7.15. Разрабатывают детальные рабочие инструкции по организации и проведению работ с микроорганизмами I группы патогенности, по эксплуатации инженерно-технических систем биологической безопасности и контролю эффективности их функционирования. На основе рабочих инструкций организуют и проводят курсы обучения для всего персонала, работающего в «заразной» зоне на постоянной основе, с последующей проверкой знаний для получения допуска к работе в зоне. Персонал контролирующих и инспектирующих служб получает доступ в зону аналогичным образом.

2.7.16. Разрабатывают инструкции и планы мероприятий по действиям в чрезвычайных ситуациях. Персонал лабораторий и инженерно-технический персонал проходит теоретическое и практическое обучение действиям по ликвидации аварий и аварийных ситуаций, а также участвует в практических учениях по отработке мероприятий по ликвидации последствий чрезвычайных ситуаций.

2.7.17. Организация и непосредственная работа в помещениях максимально изолированных лабораторий дополнительно регламентируется соответствующими рабочими инструкциями по каждому виду проводимых работ, применяемому оборудованию, используемым животным, типу помещений и т.д.

2.8 Требования к проведению работ в лаборатории.

2.8.1. Приборы, оборудование и средства измерений, используемые в работе лаборатории, должны быть аттестованы, технически исправны, иметь технический паспорт и рабочую инструкцию по эксплуатации с учетом требований биологической безопасности. Средства измерения подвергают метрологическому контролю в установленные сроки.

2.8.2. Ввод в эксплуатацию нового оборудования, приборов, а также использование новых методик, предназначенных для работы с ПБА, осуществляют только после комплексной экспертизы их на надежность защиты работающего персонала и отсутствие загрязнения внешней среды.

2.8.3. Планово-предупредительный ремонт лабораторного оборудования и инженерных систем обеспечения биологической безопасности подразделений осуществляют инженерно-технические службы и специалисты в соответствии с годовым графиком.

2.8.4. Работа, осуществляемая в комнатах целевого назначения «заразной» зоны (радиоизотопной, биохимической, электронной микроскопии, препараторской и т.п.), должна соответствовать профилю и требованиям техники безопасности.

2.8.5. Гистоцитоэнзимохимические исследования проводят в соответствии с требованиями нормативных документов по первичной обработке материала, зараженного или подозрительного на зараженность возбудителями чумы, холеры, туляремии, бруцеллеза и сибирской язвы при проведении гистоцитоэнзимохимических исследований.

2.8.6. Доставку в лабораторию материала для исследования осуществляют в контейнерах, биксах или сумках-холодильниках. Правила упаковки ПБА регламентируются действующими нормативными документами по порядку учета, хранения, передачи и транспортирования микроорганизмов.

2.8.7. Прием и разборку доставленного материала проводят с соблюдением мер предосторожности. Емкости с ПБА помещают на поднос или лоток, покрытый многослойной марлевой салфеткой, смоченной дезинфицирующим раствором. Тип защитной одежды определяется видом ПБА.

2.8.8. Вход персонала в микробиологические комнаты (боксы) и выход из них осуществляют через предбоксы (шлюзы), где сотрудники надевают и снимают защитную одежду.

2.8.9. Во время работы двери боксов и предбоксов должны быть закрыты. Выход из боксов во время проведения работ не допускается.

2.8.10 Для работы с ПБА могут применяться боксы ББ II — III класса.

2.8.11. Скорость воздушного потока в проеме бокса ББ II класса должна составлять 0,4 — 0,75 м/сек., разрежение в боксах ББ III класса 20 мм водяного столба по отношению к помещению лаборатории.

Все работы в боксах ББ проводят на специальных поддонах с салфетками, смоченными дезинфицирующим раствором.

2.8.12. Перед началом работы в боксе ББ включают вентиляцию, для боксов ББ III класса проверяют наличие отрицательного давления по шкале боксового манометра (направление и величину скорости движения воздуха в открытом проеме боксов ББ II класса определяют при их установке и после проведения ППР). Проверяют исправность оборудования в боксе, наличие аварийного запаса дезинфицирующих средств и загружают материал.

2.8.13. Вся работа должна выполняться ближе к задней стенке бокса ББ II класса и быть видимой снаружи.

2.8.14. После удаления контейнеров с ПБА дверь бокса ББ закрывают, внутри бокса включают бактерицидные лампы.

2.8.15. Все виды работ с ПБА проводят с соблюдением принципа парности (не менее двух человек, один из которых — врач или научный сотрудник). Время непрерывной работы с таким материалом ограничивают 4-мя часами, после которых устанавливают 30 — 60-минутный перерыв.

2.8.16. При проведении серологических исследований на бактериальные инфекции проводят предварительную обработку материала.

Сыворотки и суспензии крови обеззараживают добавлением мертиолята натрия, до концентрации 1:10000, с последующим прогреванием их при 56 град. С в течение 30 мин. Для забора крови и смывов с внутренних органов допускается использование фильтровальной бумаги, пропитанной мертиолятом натрия в концентрации 1:1000, обеззараживание наступает после часовой экспозиции при комнатной температуре.

Режим обеззараживания суспензий внутренних органов или костного мозга животных, материала от больных людей, субстратов гнезд птиц и млекопитающих, погадок хищных птиц, а также бактериальных взвесей определяется видом возбудителя:

• возбудителей чумы обеззараживают добавлением проверенного на бактерицидное действие формалина до 1 — 2% конечной концентрации с последующей экспозицией не менее 12 часов или до концентрации 4% с экспозицией при комнатной температуре в течение 1 часа;
• возбудителей бруцеллеза и туляремии обеззараживают кипячением в течение 20 минут с последующим добавлением формалина до 2% концентрации и экспозицией в течение 2 часов при комнатной температуре;
• возбудителя сапа обеззараживают добавлением формалина до 4% концентрации с последующей экспозицией в течение 12 часов;
• возбудителей холеры обеззараживают кипячением в течение 30 минут;
• возбудителя сибирской язвы обеззараживают кипячением в течение 60 минут с последующим добавлением формалина до 4% концентрации и экспозицией до 1 часа.

2.8.17. Качество мертиолята натрия и формалина подлежит обязательному контролю.

2.8.18. Эффективность обработки контролируют пробой на отсутствие возбудителя («специфическую стерильность»). Контроль эффективности регламентируется нормативными документами по проверке на специфическую стерильность, разрабатываемыми и утверждаемыми в установленном порядке.

2.8.19. При необходимости проведения срочного анализа на наличие антигенов возбудителей I — II групп и отсутствии времени для обработки материала или постановки пробы на отсутствие возбудителя инфекции серологические реакции проводят в «заразной» зоне с соблюдением требований биологической безопасности, обусловленных видовыми особенностями ПБА.

2.8.20. В случае необходимости срочного транспортирования обезвреженного материала без контроля на отсутствие возбудителя инфекции его перевозят как заразный материал.

2.8.21. Серологические исследования на обнаружение антигена или определение антител к вирусам II группы патогенности в связи с отсутствием регламентированных методов инактивации вирусов проводят только в боксированном помещении или боксе биологической безопасности.

2.8.22. При пипетировании пользуются только резиновыми грушами или автоматическими устройствами. При этом кончик пипетки всегда должен быть ниже уровня жидкости в сосуде, или жидкость из пипетки должна стекать по внутренней стенке сосуда. Не допускается переливание жидких культур через край, продувание через них воздуха из пипеток. Сбор культур с поверхности агара следует проводить петлей, металлическим, стеклянным или пластиковым шпателем.

2.8.23. При заражении развивающихся куриных эмбрионов применяют только затупленные иглы.

3.8.24. Перед использованием посуда, пипетки, оборудование, шприцы и т.д. должны быть проверены на целостность и исправность.

2.8.25. Бактериологическая петля должна быть замкнута в непрерывное кольцо, иметь плечо длиной не более 6 см. Допускается использование одноразовых, промышленно изготовленных петель с большей длиной плеча.

2.8.26. Не допускается фиксировать мазки нагреванием. Мазки, обработанные фиксаторами или красителями, в дальнейшем подлежат обеззараживанию в режиме согласно приложению № 1.

Для фиксации используют 96-град. этиловый спирт, смесь Никифорова (равное количество спирта и эфира), ацетон, а при исследовании материала, содержащего возбудителя сибирской язвы или неизвестной этиологии, — 96-град. этиловый спирт с добавлением перекиси водорода до конечной концентрации 3%. Время фиксации — 30 мин.

2.8.27. Работу с высокими концентрациями (более 1Е10 КОЕ/мл <1>), большими объемами (более 500 мл в емкости) проводят в боксах ББ II — III класса или противочумном костюме соответствующего типа.

<1> КОЕ/мл — число колоний-образующих единиц или число микробных клеток в 1 мл.

2.8.28. Работу по лиофилизации культур возбудителей I — II групп патогенности проводят в соответствии с нормативными документами.

2.8.29. Ампулы с высушенными культурами вскрывают в помещении музея (коллекции) живых культур в боксе биологической безопасности. При этом оттянутый конец ампулы нагревают над пламенем горелки, затем влажным концом стерильного ватного тампона прикасаются к нагретой части, в результате чего появляются трещины. Конец ампулы накрывают трехслойной марлевой салфеткой, смоченной дезинфицирующим раствором и хорошо отжатой, и обламывают пинцетом.

После вскрытия ампула остается накрытой той же салфеткой в течение одной-двух минут. Затем салфетку осторожно снимают и вместе с остатками стекла погружают в дезинфицирующий раствор. Вскрытую ампулу накрывают стерильным марлевым тампоном на 1 — 2 мин., затем в ампулу вносят раствор для приготовления взвеси, которую далее высевают на твердые и жидкие питательные среды. Посевы культур на питательных средах выдают в лаборатории.

2.8.30. Не допускается оставлять после окончания работы на открытых местах или в неопечатанных хранилищах нефиксированные мазки, объекты с посевами и другие материалы, содержащие ПБА.

Разрешается оставлять на столах и в боксах биологической безопасности посуду надписанную, но не засеянную, сделав соответствующую надпись.

2.8.31. По окончании работы с ПБА объекты с посевами переносят в хранилища (сейфы, холодильники, термостаты и т.п.).

Остатки ПБА, использованную посуду, твердые и жидкие отходы из «заразной» зоны лаборатории собирают в закрывающиеся емкости и передают в автоклавную или дезинфицируют на месте. Слив необеззараженных жидкостей в канализационную сеть не допускается.

2.8.32. Емкости со сгустками крови (пробирки, флаконы) обеззараживают только с использованием дезинфицирующего раствора. При погружении необходимо соблюдать осторожность. Емкость берут анатомическим пинцетом так, чтобы одна его бранша вошла немного внутрь, и погружают ее в наклонном положении до полного заполнения раствором. При правильном погружении воздушные пузыри не образуются, и емкость опускается на дно. После погружения всех емкостей пинцет обеззараживают.

2.8.33. Использованные пипетки полностью погружают в дезинфицирующий раствор, избегая образования в каналах пузырьков воздуха. В дальнейшем проводят обеззараживание в автоклаве.

2.8.34. Перенос заразного материала в автоклавную в емкостях для автоклавирования, поставленных в металлические поддоны с высокими (20 см) бортиками, производит младший и средний персонал в сопровождении ответственного лица, допущенного к работе с ПБА, в защитной одежде. Движение осуществляют по определенным маршрутам. На время переноса материала в автоклавную другое движение на пути его следования прекращают.

2.8.35. В контейнерах для автоклавирования по верхнему краю боковых стенок должны быть отверстия, обеспечивающие свободную циркуляцию пара. Плотность контейнеров и поддонов проверяют перед каждым использованием.

2.8.36. Перенос культур возбудителей в контейнерах (биксах) из одного подразделения в другое производят лица, допущенные к работе с ПБА, в присутствии сопровождающего (врача, научного сотрудника, лаборанта).

2.8.37. Контейнеры для транспортирования ПБА изготавливают из прочного, антикоррозийного материала. Дно должно быть выстлано мягким, адсорбирующим материалом в количестве, достаточном для поглощения всей жидкости в случае утечки. Крышка должна плотно закрываться. Контейнеры оборудуют удобной ручкой (ручками).

2.8.38. Хранение пищевых продуктов и прием пищи разрешается только вне лаборатории — в специально отведенных местах «чистой» зоны организации.

2.8.39. Не допускается вызов сотрудников во время выполнения ими любого вида работ с ПБА.

Доступ в помещение во время проведения работ лицам, не имеющим прямого отношения к работе, не допускается.

2.8.40. Вынос из «заразной» зоны лаборатории оборудования, лабораторной или хозяйственной посуды, реактивов, инструментов и др. производят после их дезинфекции и с разрешения руководителя лаборатории. Вынос перечисленных материалов за пределы организации осуществляют по письменному разрешению руководителя организации.

2.8.41. Для индивидуальной защиты персонала используют средства индивидуальной защиты (СИЗ). После использования СИЗ обеззараживают (приложение № 1).

2.8.42. Не допускается одновременная работа в одном помещении с диагностическим материалом, культурами микроорганизмов и вакцинами.

2.8.43. Не допускается проведение экспериментальных работ с антибиотикоустойчивыми вирулентными штаммами, если в организации отсутствуют лекарственные препараты, к которым используемые штаммы чувствительны (не менее двух препаратов).

2.8.44 При необходимости в одном помещении допускается проведение работ:

• одновременно с разными видами (штаммами) возбудителей, при этом биологическая безопасность обеспечивается в соответствии с наиболее жесткими требованиями, определяемыми видовыми, штаммовыми и другими особенностями используемых ПБА;
• диагностических и экспериментальных исследований, при условии разделения этих работ во времени и проведения заключительной дезинфекции после каждого цикла работ.

2.8.45. Перед уходом из помещения сотрудники проверяют отключение газа, воды, ненужных приборов и пр. Помещения «заразной» зоны лаборатории опечатывают и запирают на замок. Открывание и снятие печатей, запирание и опечатывание всей лаборатории производят сотрудники (научные сотрудники, врачи, лаборанты), имеющие соответствующее разрешение руководителя организации (лаборатории).

2.8.46. Все записи в помещениях, где проводят работу с ПБА, ведут на отдельных листах, которые перед выносом из «заразной» зоны обеззараживают погружением в дезинфицирующий раствор или автоклавируют.

2.8.47. Юридические лица, независимо от организационно-правовых форм и форм собственности, физические лица, в том числе индивидуальные предприниматели, работающие с ПБА, регулярно проводят контроль эффективности фильтров тонкой очистки вытяжной вентиляции, сточных вод на патогенную микрофлору, а при работе с вирулентными культурами сибирской язвы — 1 раз в месяц контроль обсемененности помещения.

2.9. Дополнительные требования при работе с возбудителями глубоких микозов.

2.9.1. Все манипуляции с культурами мицелиальной фазы, а также изучение выживаемости грибов во всех фазах проводят в боксе биологической безопасности III класса.

2.9.2. Просмотр посевов с мицелиальными фазами грибов проводят в боксовых комнатах в костюме IV типа с ватно-марлевой маской.

2.9.3. Во избежание заражения аэрогенным путем, при работе с мицелиальными фазами грибов агаровые пластинки с посевами выдерживают в термостате не более 5 суток (до начала спороношения). Не допускается открывать матрацы и пробирки с посевами мицелиальной фазы грибов вне бокса ББ (укрытия).

2.9.4. Работу с дрожжевыми фазами грибов проводят в боксовой комнате в костюме III типа с маской, серологические исследования — в костюме IV типа.

2.9.5. Для проведения подсчета клеточных элементов в камере Горяева суспензии грибов обеззараживают.

2.9.6. При заражении лабораторных животных место введения материала обрабатывают 1% настойкой йода.

2.10 Требования к обеззараживанию материала и уборке помещений.

2.10.1. Обеззараживание различных объектов при работе с ПБА проводят в соответствии с санитарными правилами (приложение № 1) и нормативными документами.

2.10.2. Методы и средства обеззараживания определяют в каждом конкретном случае в зависимости от вида ПБА, характера и объема обеззараживаемого материала.

2.10.3. Дезинфекцию, дезинсекцию и дератизацию осуществляют только препаратами, разрешенными в установленном порядке для применения на территории Российской Федерации.

2.10.4. Вновь поступающие на склад организации серии дезинфицирующих средств проверяют на процентное содержание активного вещества. Контроль дезинфицирующих средств проводят согласно установленному порядку.

2.10.5. В лаборатории хранят не менее чем недельный запас дезинфицирующих средств.

2.10.6. Дезинфицирующие растворы в специально оборудованном помещении готовит лаборант или дезинфектор под наблюдением врача (научного сотрудника). Сроки использования рабочих растворов регламентированы нормативными документами по использованию дезинфицирующих средств.

2.10.7. Емкости с дезинфицирующими растворами маркируют в соответствии с нормативными документами.

2.10.8. К дезинсектантам предъявляют те же требования, что и к дезинфицирующим средствам (п. п. 2.10.3 - 2.10.6).

2.10.9. Обеззараживание материала обеспечивает руководитель структурного подразделения или выделенный врач (научный сотрудник). При наличии подразделения для централизованного обеззараживания материала его обеспечивает руководитель данного подразделения.

2.10.10. Автоклавирование производит персонал, окончивший специальные курсы.

2.10.11. Контроль работы автоклавов осуществляют в соответствии с нормативными документами.

2.10.12. В лабораторных помещениях поддерживают чистоту, в них не должно находиться материалов, не имеющих отношения к работе.

2.10.13. После текущей дезинфекции рабочих поверхностей с соответствующей виду ПБА экспозицией и облучения бактерицидными лампами младший персонал ежедневно проводит влажную уборку боксов (микробиологических комнат). Уборку проводят в защитной одежде под наблюдением лаборанта. После влажной уборки проводят обеззараживание воздуха и поверхностей бактерицидными лампами в соответствии с нормативными документами.

2.10.14. Лабораторные столы и боксы безопасности готовят к работе лаборанты.

2.10.15. Рабочие поверхности в помещениях «заразной» зоны дезинфицируют после окончания каждого этапа работы.

2.10.16. В помещениях «заразной» зоны проводят еженедельную генеральную уборку с применением дезинфицирующих средств путем протирания поверхностей мебели, приборов, аппаратов, а также стен (на высоту до 2 метров). После влажной уборки проводят обеззараживание воздуха и поверхностей бактерицидными лампами в соответствии с нормативными документами.

2.10.17. Стеклянные поверхности бактерицидных ламп протирают ветошью, смоченной 70% этиловым спиртом, не реже 1 раза в неделю.

2.10.18. Уборочный инвентарь должен быть промаркирован отдельно для «чистой» и «заразной» зон. Перенос его из зоны в зону не допускается.

2.10.19 Мусор из «заразной» зоны лаборатории обеззараживают (приложение № 1).

2.10.20. Холодильники периодически (1 раз в месяц) очищают от наледи с одновременным проведением их дезинфекции. Термостаты один раз в месяц подвергают дезинфекционной обработке.

2.11. Требования к проведению работы в блоке для инфицированных животных.

2.11.1. Все виды работ по заражению, вскрытию и содержанию биопробных животных, другие манипуляции с инфицированными животными и членистоногими, а также прием и первичную обработку проб клинического, секционного и полевого материала, за исключением проб на холеру и крови на антитела к возбудителям II группы патогенности, проводят в помещениях блока для инфицированных животных.

2.11.2. Операции по заражению и вскрытию лабораторных животных проводят лица, имеющие медицинское, биологическое или ветеринарное образование и допуск к работе с ПБА I — II групп.

К работе по уходу за инфицированными животными и уборке помещения блока для работы с инфицированными животными допускаются сотрудники в соответствии с должностными обязанностями.

2.11.3. Все виды работ в помещениях блока для инфицированных животных осуществляют с соблюдением принципа парности.

2.11.4. Посещение блока для инфицированных животных регистрируют в журнале с указанием времени пребывания и характера выполненных работ.

2.11.5. Вход персонала в блок для работы с инфицированными животными осуществляют через комнату для надевания защитной одежды, а выход — через комнату для снятия и обеззараживания защитной одежды.

2.11.6. Не допускается в одной и той же комнате надевать защитную одежду и снимать ее после работы с ПБА.

2.11.7. Зараженных мелких животных и эктопаразитов содержат в помещениях блока для инфицированных животных с соблюдением следующих правил:

• мелких животных помещают в банки, ящики и садки, заранее осмотренные на целостность, на которые прикрепляют заполненные этикетки; ящики и банки закрывают сетчатыми крышками, не допускающими выхода животных;
• эктопаразитов помещают в банки и флаконы, плотно завязанные мелкосетчатым материалом, а также в пробирки, закрытые ватно-марлевой или корковой пробкой;
• животные, зараженные разными видами микроорганизмов, подлежат раздельному содержанию;
• банки с животными помещают на металлические (деревянные) стеллажи, окрашенные масляной краской, или в засетченные шкафы, а сосуды с эктопаразитами — в такие же шкафы, холодильники или термостаты;
• банки с животными, зараженными возбудителями сибирской язвы, глубоких микозов, размещают на металлических или деревянных, но обитых железом стеллажах;
• при накоплении в банках или садках большого количества подстилочного материала (1/3 банки) животных пересаживают в чистые банки, а использованные заливают дезинфицирующим раствором или автоклавируют (приложение № 1).

2.11.8. Животных, предназначенных для вскрытия, умерщвляют хлороформом, эфиром или другими разрешенными способами.

2.11.9. Трупы животных перед забором органов погружают в мыльный раствор, затем переносят на доску для вскрытия, помещенную в кювету, и фиксируют. Для вскрытия используют два набора инструментов (для разрезания кожи и для взятия кусочков органов).

2.11.10 Вскрытое животное после взятия материала на исследование обеззараживают (приложение № 1).

2.11.11. После вскрытия животных инструменты, доски для вскрытия, банки, бачки, садки из-под животных, подстилочный материал и т.д. обеззараживают (приложение № 1).

2.11.12 В блоке для инфицированных животных не допускается:

• чистить банки и ящики с сухими (не смоченными дезинфицирующими растворами) отходами;
• брать павших животных руками без корнцанга.

2.11.13. Для утилизации твердых обеззараженных отходов и тушек животных используют крематорий или выделенное и согласованное с территориальным центром госсанэпиднадзора место захоронения.

2.12. Требования к порядку использования средств индивидуальной защиты.

2.12.1. Для работы с ПБА каждого сотрудника обеспечивают специальной рабочей, защитной одеждой и обувью, средствами защиты органов дыхания, зрения и кожных покровов в соответствии с утвержденными нормами. Количество и периодичность замены СИЗ устанавливает руководитель организации в соответствии с федеральными нормами.

2.12.2. Одежда и обувь должны быть индивидуальными, соответствовать размерам работающих и храниться: рабочая одежда — в санитарном пропускнике отдельно от личной одежды в индивидуальных шкафчиках сотрудников, защитная — в местах ее надевания.

2.12.3. Пневмокостюмы, пневмошлемы, изолирующие костюмы, противогазовые коробки и т.п. должны быть пронумерованы, на каждый из них ведут строгий учет времени его использования. Время использования регистрируют в специальном журнале.

2.12.4. Для правильной эксплуатации СИЗ руководитель подразделения назначает ответственного сотрудника, в функциональные обязанности которого входит контроль за подготовкой и проверкой СИЗ, ведением учета времени эксплуатации СИЗ, а также за своевременным изъятием из пользования СИЗ с нарушенной целостностью ткани или швов, с истекшим сроком эксплуатации и т.д.

2.12.5. Перед каждым использованием пневмокостюмы подлежат специальной проверке на их целостность, изолирующие костюмы и пневмошлемы проверяют визуально.

2.12.6. Пневмокостюмы и изолирующие костюмы обеззараживают после каждого использования. Аналогично поступают с СИЗ после работы в блоке для инфицированных животных.

При работе в лабораториях защитную одежду меняют по мере загрязнения, но не реже одного раза в неделю.

2.12.7 Обеззараживание защитной одежды и противогазов проводят согласно приложению № 1.

2.13. Требования к проведению зоологической и паразитологической работы.

2.13.1. Работников противочумных, других медико-биологических организаций и отделов особо опасных инфекций центров госсанэпиднадзора, проводящих отлов грызунов, сбор эктопаразитов в очагах чумы и других природно-очаговых инфекций, истребление грызунов, а также другие полевые работы с дикими позвоночными и беспозвоночными животными обеспечивают соответствующей сезону защитной одеждой.

2.13.2. При работе в природных очагах чумы комбинезон и сапоги импрегнируют стойкими репеллентами или стойкими инсектицидами типа пиретринов (при работе по истреблению грызунов) в соответствии с инструкциями по применению. Импрегнацию повторяют согласно инструкции.

2.13.3. При проведении обследовательских работ в горных очагах сурочьего типа импрегнация комбинезона и сапог стойкими репеллентами не обязательна из-за отсутствия миграции сурочьих блох.

2.13.4. В процессе работы при добыче грызунов и сборе членистоногих, а также при их истреблении, перед перерывами в работе, перед курением и при завершении работы обеззараживают руки и инструменты соответствующими дезинфицирующими растворами (приложение № 1).

2.13.5. Места стоянок в поле следует располагать в удалении от нор грызунов. Если это невозможно, проводят истребление грызунов, место расположения палатки обрабатывают порошковидными инсектицидами.

2.13.6. Орудия лова и другой инструмент, соприкасавшийся в процессе работы с грызунами и эктопаразитами (капканы, давилки, ленты для вылова эктопаразитов, пробирки, мешочки и т.д.), перевозят и переносят в закрытой таре. Доставку оборудования и полевого материала в лабораторию осуществляют транспортом, которым располагает полевая бригада, или транспортом, выделенным лабораторией, в сопровождении сотрудника, имеющего допуск к работе с ПБА.

2.13.7. Орудия лова, также как и добытый полевой материал, хранят в местах, недоступных для посторонних лиц.

2.13.8. Добытых зверьков при необходимости умерщвляют непосредственно в капкане с помощью хлороформа, эфира или другими разрешенными способами. Трупы складывают в бязевые мешочки, которые помещают в отсадники, ящики или брезентовые (клеенчатые) мешочки. Бязевые мешочки плотно завязывают дважды (второй раз через подвернутый край мешочка), чтобы исключить рассеивание эктопаразитов.

2.13.9. Живых грызунов помещают в металлические или обитые изнутри железом отсадники или ящики. Эктопаразитов для паразитологического и микробиологического исследований доставляют в пробирках, закрытых ватно-марлевыми пробками и помещенных в металлические пеналы, или в толстостенных стеклянных флаконах с притертыми пробками, помещенных в бязевые мешочки. На наружную упаковку доставляемого материала наносят знак «Биологическая опасность».

2.13.10. Грызунов, добытых мертвыми, после освобождения из мешочков очесывают, добытых живыми дустируют в отсадниках. Доставленных эктопаразитов освобождают от песка и других субстратов.

2.13.11. Дезинфекцию бязевых мешочков, в которых были доставлены зверьки и прочий материал, производят после каждого их использования путем кипячения в течение 30 минут в мыльно-содовом растворе с последующим тщательным полосканием в чистой воде. Флаконы и пробирки из-под эктопаразитов дезинфицируют путем кипячения в воде.

2.13.12. Дезинфекцию орудий лова и других инструментов проводят ежедневно по окончании работы путем прогревания на солнце (в летнее время), кипячения, обработки дезинфицирующими растворами с последующим проветриванием и смазыванием их растительным маслом, ящики и отсадники дезинфицируют (приложение № 1).

2.13.13. Определение вида эктопаразитов, лабораторное исследование (приготовление суспензии, посев) проводят в помещении «заразной» зоны. Эктопаразитов перед определением иммобилизуют парами эфира, раскладывают на широком предметном стекле и просматривают в сухом виде под микроскопом. При просмотре эктопаразитов живыми в капле воды под покровным стеклом предметное стекло помещают в чашку Петри для исключения загрязнения столика микроскопа стекающей со стекла жидкостью. После окончания работы чашки Петри и стекла погружают в дезинфицирующий раствор. Во избежание разбрызгивания жидкости при приготовлении суспензии клещей их необходимо перед растиранием разрезать ножницами под прикрытием крышки от чашки Петри или большой воронки.

2.13.14. Съемку шкурок и приготовление коллекционных тушек со зверьков, отловленных на энзоотичных территориях, проводят следующим образом:

• при изготовлении коллекционных тушек для учебных целей зверьков предварительно выдерживают в 10% растворе формалина; время экспозиции определяют, исходя из размеров зверька и скорости проникновения формалина в ткани (1 см в сутки), работу с фиксированными в формалине зверьками можно проводить в любом служебном помещении; защитный костюм не регламентируется;
• при изготовлении тушек для научных целей, когда воздействие формалина недопустимо, зверька перед съемкой шкурки опускают на 10 — 15 минут в 5% раствор лизола; снятую шкурку помещают на 3 часа в 5% раствор лизола, после чего очищают ее от жира, обмывают и обрабатывают с внутренней стороны мышьяковистым натрием; череп либо выдерживают в формалине, либо дезинфицируют кипячением; снятие шкурки с грызуна проводят с соблюдением требований биологической безопасности в помещении блока для зараженных животных; всю работу по съемке и набивке коллекционных тушек разрешается проводить непосредственно руками в нитриловых (резиновых) перчатках; работу проводят в защитном костюме.

2.13.15. Разбор погадок хищных птиц и экскрементов зверьков проводят после 12 — 18-часового содержания в 1% растворе формалина в любом служебном помещении. Защитный костюм не регламентируется.

2.13.16. Кровососущих членистоногих, отобранных для изготовления коллекционных препаратов, фиксируют в 70% этиловом спирте.

2.14. Требования к порядку отлова, транспортирования и содержания диких позвоночных животных и членистоногих при проведении экспериментальных работ.

2.14.1. На энзоотичной по особо опасным инфекциям территории отлов и вывоз диких животных и членистоногих для исследования за пределами природного очага осуществляется в установленном порядке.

2.14.2. На неэнзоотичной по особо опасным инфекциям территории каждое учреждение медико-биологического профиля может осуществлять отлов и содержание позвоночных животных и кровососущих членистоногих в установленном порядке.

2.14.3. Любой материал считается потенциально опасным в отношении возможного содержания возбудителей природно-очаговых болезней, свойственных той ландшафтной зоне, в пределах которой он собран.

2.14.4. Весь состав отряда или экспедиции должен быть ознакомлен с требованиями биологической безопасности при работе с возбудителями природно-очаговых инфекций, циркулирующих на данной территории. Ответственным за соблюдение этих требований при проведении отлова диких животных и их содержании является руководитель (начальник) эпидемиологического отряда (экспедиции).

2.14.5. При работе в энзоотичных по чуме районах каждый сотрудник проводит ежедневную термометрию, результаты которой записывает в журнале.

2.14.6. Живых диких животных и членистоногих, отловленных в природе, перед вывозом в научные и другие организации выдерживают в карантине. Карантинный виварий может быть организован на базе временного эпидемиологического отряда (экспедиции) или стационарной организации. Продолжительность карантина — 1 месяц.

2.14.7. Помещения для карантинного вивария и инсектария изолируют от других помещений и защищают от проникновения грызунов и насекомых.

2.14.8. Диких позвоночных животных доставляют в карантинный виварий в отсадниках или деревянных ящиках, обитых внутри жестью, которые после каждого использования обеззараживают (приложение № 1).

2.14.9. Членистоногих доставляют в пробирках с ватно-марлевыми пробками (влажные камеры), помещенных в металлические пеналы, или в толстостенных флаконах с притертой пробкой, помещенных в бязевые мешочки (клещи, блохи, вши). Комаров, мошек, слепней и др. двукрылых кровососущих насекомых доставляют живыми в садках, сшитых из марли, мельничного сита (двойных), или анестезированными, помещенными в стеклянные пробирки или пенициллиновые флаконы, закрывающиеся резиновыми пробками, которые транспортируют в термоконтейнерах с сухим льдом или жидким азотом.

Транспортное средство, на котором доставляют членистоногих, должно быть оснащено 0,5 кг инсектицидного препарата и средством для его распыления на случай аварии, повлекшей бой пробирок с эктопаразитами.

2.14.10. Перевоз животных в карантинный виварий осуществляют на специально выделенном транспорте в сопровождении сотрудника, допущенного к работе с ПБА. Перевоз полевого материала общественным транспортом не допускается.

2.14.11. Доставленных в карантинный виварий зверьков освобождают от эктопаразитов и пересаживают в чистые металлические или стеклянные банки с плотными сетчатыми крышками. Очес животных и уход за ними в течение карантина проводят в защитном костюме с полным соблюдением требований биологической безопасности.

2.14.12. У животных, доставленных из природных очагов чумы, в карантинном виварии из пальцев лапок или из хвоста берут кровь для бактериологического и серологического исследования. Обнаружение у зверьков специфических антител свидетельствует об имевшей место эпизоотии чумы, обнаружение возбудителя чумы или фракции I чумного микроба — о заболевании зверька, что является показанием к умерщвлению и исследованию.

2.14.13. В случае обнаружения в карантинном виварии павшего зверька проводят бактериологическое (вирусологическое) и серологическое исследование трупа.

2.14.14. При обнаружении инфекционного заболевания среди животных срок карантина продлевают на месяц, считая со дня регистрации гибели последнего животного. В случае массового падежа всех животных забивают, а виварий тщательно дезинфицируют (приложение № 1).

2.14.15 Трупы павших или забитых животных обеззараживают (приложение № 1).

2.14.16. Здоровых животных после прохождения срока карантина подготавливают к транспортированию или переносят в лабораторию.

2.14.17. Насекомых содержат в специальном помещении (инсектарии) в садках или банках, исключающих их рассеивание.

2.14.18. Посуду, применяемую при работе с членистоногими, дезинфицируют кипячением. Отходы заливают дезинфицирующим раствором или сжигают, инструменты кипятят или обжигают на огне.

2.14.19. В виварии и инсектарии учет движения позвоночных и членистоногих ведут в пронумерованном и прошнурованном журнале с указанием места и даты вылова, результатов исследования и карантина.

2.14.20. Передача позвоночных и членистоногих из вивария или инсектария в другие организации возможна по разрешению руководителя организации только из числа зверьков, родившихся по завершении срока карантина.

2.15. Требования к порядку действий по ликвидации аварий при работе с патогенными биологическими агентами.

2.15.1. На случай аварии, при которой создается реальная или потенциальная возможность выделения патогенного биологического агента в воздух производственной зоны, среду обитания человека и заражения персонала, в подразделениях, где ведут работы с ПБА, должен быть план ликвидации аварии, запас дезинфицирующих средств, активных в отношении возбудителей, с которыми проводят исследования.

В подразделении, проводящем работу с ПБА, в специально отведенном месте хранят гидропульт (автомакс), комплекты рабочей (для переодевания пострадавших) и защитной (для сотрудников, ликвидирующих последствия аварии) одежды, аварийную аптечку.

В состав аварийной аптечки входит: спирт этиловый 70 г (два флакона по 100 мл), 2 — 3 навески перманганата калия для приготовления 0,05% раствора (0,0125 г перманганата калия + 25 мл воды), набор антибиотиков специфического действия и химиотерапевтических препаратов, стерильная дистиллированная вода, шприц для приготовления растворов антибиотиков, глазные пипетки, 5% настойка йода, ножницы с закругленными браншами, перевязочные средства (вата, бинты и пр.), жгут и нашатырный спирт.

Кроме вышеперечисленного, в аптечке вирусологической лаборатории должны быть 1% раствор борной кислоты, интерферон или индуктор интерферона; в аптечке микологической лаборатории — 1% раствор борной кислоты или навески для приготовления раствора (0,25 г борной кислоты + 25 мл воды); в лаборатории, проводящей работу с ботулиническим токсином — гомологичные ботулинические антитоксические сыворотки.

В «чистой» зоне или в медицинском изоляторе, в зависимости от вида возбудителя и характера работ, хранят запас средств (аптечку) экстренной профилактики, включая набор антибиотиков специфического действия, химиотерапевтические препараты экстренной профилактики, интерферон или индукторы интерферона, специфические иммуноглобулины, гомологичные ботулинические антитоксические сыворотки.

Срок годности препаратов и комплектность аптечки проверяет ответственный врач, назначенный руководителем подразделения, или врач медицинского изолятора.

2.15.2. В организации, проводящей работу с ПБА, прорабатывают различные варианты аварий (аварийных ситуаций) и определяют порядок действий сотрудников и должностных лиц организации в этих условиях. На основании этого составляют план мероприятий по ликвидации аварий во время работы с ПБА, который согласовывает комиссия по контролю соблюдения биологической безопасности и утверждает руководитель организации.

2.15.3. Объем мероприятий по ликвидации аварии зависит от характера выполняемой работы, вида и свойств возбудителя, масштабов аварии:

• авария с разбрызгиванием ПБА, т.е. с образованием аэрозоля (бой пробирок, флаконов или колб с жидкой культурой; бой чашек и пробирок с культурами на агаре с конденсатом; разбрызгивание бактериальной суспензии из пипетки или шприца; разбрызгивание тканевой жидкости при вскрытии трупов зараженных животных или больных людей; аварии на вакуумной установке в процессе сушки вирулентных культур, а также другие аварии, ведущие к контаминации воздуха или окружающих предметов, например авария при транспортировании ПБА в автоклавную и между подразделениями);
• авария без разбрызгивания ПБА (касание петлей с инфицированным материалом края чашки, пробирки, флакона, кристаллизатора, трещина на чашке Петри, пробирке, флаконе с биологическим материалом, падение на стол твердой частицы при обжигании петли после посева, касание поверхности посева на твердой питательной среде и т.п.);
• авария, связанная с нарушением целостности кожных покровов;
• авария, связанная с нарушением целостности изолирующего костюма или пневмокостюма.

2.15.4 Порядок действий сотрудников при аварии.

2.15.4.1 При аварии с разбрызгиванием ПБА:

• все находящиеся в помещении лица немедленно прекращают работу и, задержав дыхание, выходят из заразного помещения в предбокс, плотно закрывают дверь, включают аварийную сигнализацию и сообщают о случившемся руководителю подразделения;
• руки обрабатывают дезинфицирующим раствором или спиртом, если лицо не было защищено, то его обильно обрабатывают 70-град. этиловым спиртом;
• слизистые глаз, носа и рта обрабатывают препаратами из аварийной аптечки; рот и горло прополаскивают 70-град. этиловым спиртом, в нос закапывают раствор марганцовокислого калия 1:100000 или 1% раствор борной кислоты, а при аварии с вирусами затем закапывают интерферон или индуктор интерферона;
• защитную одежду, начиная с косынки или шлема, обильно смачивают дезинфицирующим раствором, снимают ее, погружают в дезинфицирующий раствор или помещают в бикс (бак) для автоклавирования;
• открытые части тела протирают 70-град. этиловым спиртом;
• принимают гигиенический душ;
• надевают чистую рабочую одежду;
• в глаза (можно и в нос) закапывают растворы антибиотиков или других средств, к которым чувствителен возбудитель, с которым проводили работу;
• при попадании на открытые участки кожи ботулинического токсина его смывают большим количеством воды с мылом (смывные воды автоклавируют);
• при аварии с ботулиническим токсином глаза и рот промывают водой и разведенной до 10 МЕ/мл антитоксической сывороткой, вводят сыворотку или анатоксин в зависимости от сроков вакцинации (ревакцинации);
• при аварии с другими видами ПБА вводят иммуноглобулин или проводят экстренную химиопрофилактику с учетом видовой принадлежности ПБА и наличия препаратов;
• если авария произошла при работе с неизвестным возбудителем, применяют сочетание антибиотиков резерва.

Порядок проведения дезинфекционных мероприятий:

• сотрудники, участвующие в ликвидации аварии, должны быть одеты в противочумный костюм I типа или изолирующие костюмы;
• для обработки используют дезинфицирующий раствор, эффективный в отношении соответствующего инфекционного агента;
• дезинфекцию помещения проводят, разбрызгивая из гидропульта (автомакса) дезинфицирующий раствор от входной двери и далее, продвигаясь по обработанной территории и орошая перед собой все предметы (пол, стены, потолок) и воздушную среду;
• через 2 часа после первичной обработки собирают тампонами, смоченными дезинфицирующим раствором, осколки разбитой посуды, погружая их в емкость с дезинфицирующим раствором; лабораторную посуду с посевами, находившуюся в момент аварии на рабочих поверхностях, погружают в емкость с дезинфицирующим раствором или обтирают салфеткой, смоченной дезинфицирующим раствором, и помещают в емкость для автоклавирования;
• по окончании дезинфекции воздух и поверхности в помещении обеззараживают бактерицидными лампами по режимам согласно нормативным документам;
• вытяжная вентиляция во время дезинфекции и последующей экспозиции должна оставаться включенной;
• сотрудник, проводивший дезинфекционную обработку, выходит в предбокс (шлюз) и снимает защитную одежду, погружая ее в дезинфицирующий раствор;
• спустя два часа проводят уборку помещения, после чего работа может быть возобновлена.

2.15.4.2 При аварии без разбрызгивания ПБА:

• не выходя из помещения, накладывают тампон с дезинфицирующим раствором на место контаминации ПБА поверхности объекта;
• включают аварийную сигнализацию, вызывают руководителя подразделения или лицо, его замещающее, и продолжают дезинфекционную обработку места аварии;
• после окончания дезинфекционной обработки сотрудник выходит из помещения, где произошла авария, снимает и погружает в дезинфицирующий раствор защитную одежду;
• открытые части тела обрабатывают дезинфицирующим раствором или 70-град. спиртом.

2.15.4.3 При аварии, связанной с нарушением целостности кожных покровов:

• работу прекращают;
• включают аварийную сигнализацию;
• руки обрабатывают дезинфицирующим раствором, снимают перчатку и выдавливают из ранки кровь в дезинфицирующий раствор;
• на место ранения ставят на 4 — 5 мин. компресс из дезинфицирующего раствора или 70-град. этилового спирта;
• при работе с сибирской язвой место ранения тщательно промывают водой с мылом и смазывают 5% настойкой йода, без применения дезинфицирующих растворов;
• при работе с вирусами I — II групп кровь выдавливают в сухую стерильную салфетку и обрабатывают ранку 5% настойкой йода без применения дезинфицирующего раствора;
• при работе с ботулиническим токсином место ранения промывают водой и разведенной антитоксической сывороткой (10 МЕ/мл).

2.15.4.4 При аварии, связанной с нарушением целостности изолирующего или пневмокостюма во время работы необходимо:

• устранить повреждение подручными средствами (пластырь, салфетка с дезинфектантом, корнцанг);
• провести дезинфекцию наружной поверхности пневмокостюма и, по возможности, не отключаясь от системы воздухоснабжения, следовать в санитарный пропускник; при этом операции по переключению между воздухораздаточными постами системы воздухоснабжения пневмокостюма осуществляет напарник.

В случае разрыва перчатки поверх нее надевают запасную, а во время обеззараживания поверхности костюма снимают запасную и порванные перчатки и обрабатывают их изнутри и снаружи дезинфицирующим раствором.

Если работающий в «заразной» зоне сотрудник, одетый в пневмокостюм, потерял сознание, помощь ему оказывает напарник. Он проверяет наличие доступа воздуха в пневмокостюм потерявшего сознание сотрудника, при необходимости осуществляет подключение к воздухораздаточному посту системы воздухоснабжения, а затем принимает меры к его эвакуации из зоны.

Руководитель подразделения организует доставку пострадавшего санитарным транспортом с сопровождающим в специальное лечебное учреждение, информирует о случившемся руководителя организации, а также принимает меры по локализации и ликвидации аварии силами аварийной бригады.

2.15.5. По сигналу «авария» любой сотрудник, принявший сигнал, немедленно извещает о случившемся руководителя подразделения или замещающего его специалиста.

Руководитель подразделения сообщает об аварии комиссии по контролю соблюдения требований биологической безопасности и руководителю организации.

2.15.6. Прибывшие на место аварии руководитель подразделения и представитель комиссии по контролю соблюдения требований биологической безопасности оценивают ситуацию, определяют объем мероприятий по локализации и ликвидации последствий аварии и докладывают руководителю организации, организуют и контролируют действия сотрудников, участвующих в ликвидации аварии.

2.15.7. Руководитель подразделения и пострадавшие при аварии представляют письменные объяснения руководителю организации, в которых отражают время и место аварии, характер выполняемой работы, обстоятельства аварии, вид микроорганизма, группу патогенности, вирулентность и чувствительность к антибактериальным препаратам, были ли нарушения требований биологической безопасности при работе, принятые меры.

2.15.8. Председатель комиссии по контролю соблюдения требований биологической безопасности подает докладную записку на имя руководителя организации, в которой подробно излагает следующие сведения: дату и время аварии, фамилии, должности пострадавших, характер аварии, дает детальную характеристику возбудителя, сведения о вакцинации пострадавших, излагает ход эксперимента, предлагает объем мероприятий по ликвидации последствий, делает запись в журнале учета аварий и происшествий.

2.15.9. Руководитель организации на основании докладной записки санкционирует дальнейшие действия по ликвидации последствий аварии в соответствии с имеющимся планом мероприятий по ликвидации аварий.

2.15.10. После ликвидации аварии, а при необходимости и проведения профилактического лечения либо изоляции сотрудника председатель комиссии по контролю соблюдения требований биологической безопасности составляет и заносит в журнал общее заключение.

2.15.11. Обо всех несчастных случаях и ошибках, происшедших при работе с ПБА, сотрудники ставят в известность руководителя подразделения или представителя комиссии по контролю соблюдения требований биологической безопасности.

2.15.12. Руководитель подразделения может временно (до принятия решения руководителем организации) отстранить от работы с биологическим материалом лиц, допустивших нарушения настоящих санитарных правил.

2.15.13. Лица, систематически нарушающие настоящие санитарные правила, могут быть отстранены от работы с ПБА распоряжением руководителя организации.

2.15.14. Обо всех авариях с ПБА, при которых назначается профилактическое лечение, руководитель организации сообщает в Департамент госсанэпиднадзора Минздрава России и Противочумный центр Минздрава России.

2.15.15. Во всех подразделениях, работающих с ПБА, не реже одного раза в год проводят плановые тренировочные занятия по ликвидации аварий.

2.16. Требования к организации работ с аэрозолями микроорганизмов I — II групп патогенности (опасности).

2.16.1. Сотрудники, работающие в зонированных помещениях или посещающие «заразную» зону, обслуживающий инженерно-технический персонал, сотрудники службы биобезопасности, режима и охраны подлежат вакцинации. Список вакцинируемых согласовывается со службой биобезопасности.

2.16.2. Сотрудники, работающие в зонированных помещениях, независимо от характера выполняемых работ проходят ежедневный утренний медицинский осмотр в смотровом кабинете для получения медицинского допуска к работам. Смотровой кабинет организуется и размещается в непосредственной территориальной близости к научно-лабораторному корпусу, в котором проводятся работы, или непосредственно в «чистой» зоне этого корпуса.

2.16.3. Инструктаж по соблюдению требований к организации работ с аэрозолями микроорганизмов I — II групп патогенности (опасности) проводится перед началом работ ежедневно. Комиссионная проверка знаний требований биобезопасности при работах с аэрозолями проводится не реже одного раза в год, а также при перерывах в работе, превышающих 1 месяц.

2.16.4. В микробиологических лабораториях следует различать два основных вида работ, связанных с инфекционными аэрозолями ПБА I — II групп патогенности (опасности):

• Работы по контролю контаминации лабораторной среды аэрозолями ПБА I — II групп патогенности, образующимися в результате технологических процессов (центрифугирование, лиофильная сушка, содержание инфицированных животных и др.);
• экспериментальные работы с искусственно созданными аэрозолями.

2.16.5. Работы первого вида направлены на определение биозагрязнений воздуха.

Работы второго вида направлены на экспериментальное изучение аэрозолей ПБА I — II групп патогенности с использованием аэрозольных камер.

2.16.6. Работы первого вида проводят в лабораторных и технологических помещениях, в вивариях.

2.16.7. Работы второго вида проводят в специально выделенных лабораторных и технологических помещениях «заразной» зоны с использованием аэрозольных камер:

• статических;
• динамических;
• статико-динамических.

2.16.8. В статических камерах проводят диспергирование суспензий ПБА внутри рабочего объема и последующий отбор аэрозольных проб в заданные интервалы времени.

2.16.9. В динамических камерах проводят непрерывное диспергирование суспензий ПБА в поток воздуха рабочего объема с одновременным отбором проб аэрозоля.

2.16.10. В статико-динамических камерах после выдержки аэрозоля в объеме статической части поток аэрозоля направляется в динамическую часть, отбор проб аэрозоля проводят в заданные интервалы времени. Для аэрогенного заражения лабораторных животных должны применяться отсеки экспонирования, обеспечивающие нахождение головы животных в аэрозоле ПБА заданное время. При этом конструкция отсеков экспонирования должна предотвращать контаминацию шерсти тел животных.

2.16.11. По величине рабочего объема аэрозольные камеры делятся на: малые объемом до 0,1 м3, средние объемом от 0,1 м3 до 1,0 м3 и большие объемом более 1,0 м3.

2.16.12. Малые камеры должны размещаться в боксах биологической безопасности (ББ) III класса или специальных герметичных укрытиях. Средние и большие камеры должны размещаться в отдельных помещениях «заразной» зоны. Вход в такие помещения должен иметь тамбур-шлюз с дезинфекционным душем.

2.16.13. Конструкции любых видов аэрозольных камер должны быть герметичными, обеспечивать постоянное разряжение внутри рабочего объема не менее 150 Па (15 мм водяного столба) и оборудованы системой очистки (деконтаминации) воздуха.

2.16.14. Система очистки воздуха включает фильтры тонкой очистки (ФТО): одну ступень на входе воздуха и две ступени на выходе.

2.16.15. Для малых и средних камер допускается установка системы очистки воздуха и вентиляционного агрегата в одном помещении с аэрозольной камерой. Для больших камер ФТО должны устанавливаться в фильтр-камерах отдельных технологических помещений «заразной» зоны. Вентиляционные агрегаты для больших камер устанавливают в технологических помещениях «чистой» зоны.

2.16.16. Воздуховоды должны быть герметичными, выполненными из нержавеющей стали, стыки на воздуховодах должны быть цельносварными со 100% гамма-дефектоскопией качества сварных швов. При этом на границах зон воздуховоды должны иметь электроприводные гермоклапаны со стороны «заразной» зоны с минимальным удалением от границы зон.

2.16.17. Управление работой аэрозольных камер должно осуществляться с помощью пультов. Для малых и средних камер допускается размещение пультов управления в одном помещении совместно с камерой. При этом управление ими может быть частично ручным с помощью вентилей и клапанов.

2.16.18. Большие аэрозольные камеры должны управляться с пультов, расположенных в помещениях «чистой» зоны.

2.16.19. Аэрозольные камеры (установки) должны размещаться в боксированных лабораторных помещениях «заразной» зоны, имеющих максимальный уровень защиты. Непосредственно к помещению с аэрозольной камерой должны примыкать боксированные лабораторные помещения для содержания инфицированных животных и их вскрытия. При этом указанные помещения должны сообщаться между собой посредством передаточных шлюзов.

2.16.20. Содержание инфицированных лабораторных животных производится в шкафах, оборудованных вытяжной вентиляцией.

2.16.21. Боксовые помещения для размещения аэрозольной камеры, содержания зараженных животных и их вскрытия должны быть оборудованы механической приточно-вытяжной вентиляцией с фильтрами тонкой очистки воздуха. В помещениях должно поддерживаться разряжение 200 — 250 Па (20 — 25 мм водяного столба).

2.16.22. Каждый блок помещений, в котором выполняется отдельный технологический цикл, должен иметь автономную приточно-вытяжную вентиляцию. Динамическая аэрозольная камера должна иметь технологическую вентиляцию, удаляющую воздух непосредственно из камеры.

2.16.23. Производительность каждой вентсистемы рассчитывается таким образом, чтобы воздушные потоки были направлены в сторону аэрозольных установок. При неработающем аэрозольном блоке движение воздуха направлено в сторону помещений с зараженными животными.

2.16.24. Приточная вентиляция должна иметь блокировку, которая прекращает подачу воздуха в помещения при уменьшении в них разрежения вследствие открытия дверей, тамбуров, передаточных шлюзов или выключении вытяжной вентиляции.

2.16.25. Подача сжатого воздуха на распылительную аэрозольную установку должна автоматически отключаться при прекращении работы технологической вентиляции.

2.16.26. Аэрозольные лаборатории оборудуют дублирующей системой энергоснабжения, автономным (резервным, аварийным) источником питания (дизель-электрогенератор).

2.16.27. Фильтры для очистки воздуха после установки в системы приточно-вытяжной вентиляции должны быть проверены на проскок по масляному туману и произведены замеры их сопротивления.

2.16.28. В период эксплуатации замеры сопротивления фильтров должны проводиться ежедневно с отметкой в специальном журнале.

2.16.29. Смена фильтров должна проводиться при нарушении параметров депрессионного режима (изменение скорости воздушных потоков, кратности воздухообмена), при повреждении фильтров (снижение сопротивления, увеличение коэффициента проскока), при увеличении их сопротивления в 2 раза, уменьшении скорости воздушного потока в боксирующих устройствах.

2.16.30. Проверка герметичности аэрозольных камер должна проводиться ежегодно методом обмыливания.

2.16.31. Водопровод, обеспечивающий водой лабораторию аэрозолей, должен быть оборудован устройством для разрыва водной струи в виде гидрозатвора, предупреждающего выход воздуха из заразных помещений по трубам в случае прекращения подачи воды.

2.16.32. После окончания эксперимента камерные установки изнутри подвергаются дезобработке.

2.16.33. По завершении работ камерные установки, помещения, где расположены камеры и находящееся в помещениях оборудование подвергаются дезобработке.

2.16.34. Для дезобработки (в том числе заключительной) аэрозольных камер, оборудования и помещений, в которых расположены камеры, используются дезсредства, эффективность которых подтверждена экспериментально в отношении конкретного используемого в работе возбудителя.

2.16.35. Сточные воды из заразных помещений подлежат обязательному химическому и термическому обеззараживанию.

2.16.36. Все виды работ в помещениях «заразной» зоны проводят в пневмокостюмах.

2.16.37. Для каждого структурного подразделения, проводящего экспериментальные работы на аэрозольных установках, разрабатывают рабочие инструкции, определяющие режимы безопасной работы с ПБА в конкретных условиях, с учетом характера работ, используемых видов оборудования, средств индивидуальной защиты персонала и особенностей применяемых технологий.

(п. 2.16 введен Изменениями и дополнениями № 1, утв. Постановлением Главного государственного санитарного врача РФ от 12.05.2010 № 55)

III. Требования к работе в госпиталях, изоляторах и обсерваторах в очагах заболеваний, вызванных микроорганизмами I — II групп патогенности

3.1. При возникновении случаев заболеваний, вызванных микроорганизмами I — II групп патогенности (чума, холера, заболевания, вызванные вирусами I группы патогенности), разворачивают инфекционный и провизорный госпитали, изолятор и обсерватор.

3.2. Инфекционный и провизорный госпитали, изолятор организуют на базе инфекционной или многопрофильной больницы. Разрешается также организация указанных временных специализированных медицинских организаций в изолированных помещениях типа школьных зданий, общежитий и т.п., а также в палатках с выделением обслуживающего персонала и соблюдением настоящих санитарных правил.

3.3. Больных (подозрительных) чумой, холерой и заболеваниями, вызванными вирусами I группы патогенности, с целью изоляции и лечения госпитализируют в инфекционный госпиталь или изолированное помещение (бокс) инфекционного стационара с отдельными входами для больных и обслуживающего персонала.

Больных с симптомами, не исключающими указанные заболевания, для изоляции и медицинского наблюдения с целью установления диагноза госпитализируют в провизорный госпиталь или специально приспособленное помещение в инфекционном или соматическом стационарах.

Лиц, подвергшихся реальной опасности заражения чумой, холерой и заболеваниями, вызванными вирусами I группы патогенности в результате контакта с больными (трупами) людьми, животными и другими объектами, которые могут являться источниками инфицирования, госпитализируют в изолятор.

3.4. Больных остальными инфекциями госпитализируют в инфекционное отделение любой больницы. При этом больных сибирской язвой, сапом, мелиоидозом, лихорадкой Ку, крымской геморрагической лихорадкой (КГЛ), глубокими микозами, орнитозом помещают в изолированные палаты или боксы.

3.5 В «заразном» отделении госпиталя предусматривают:

• приемное отделение с отдельным входом для больных и кладовой для хранения одежды больных до отправки ее в дезинфекционную камеру;
• отделение для больных, в котором должны быть предусмотрены палаты (боксы) для раздельного размещения больных по срокам поступления, клиническим формам и степени тяжести болезни;
• раздаточную пищи;
• комнату для обеззараживания инфицированного материала (выделения больных, судна, белье и т.д.);
• процедурную;
• помещение для выписки больных с санитарным пропускником;
• санитарный пропускник для персонала (комнаты для надевания и снятия защитной одежды, душевая);
• палаты для регидратации (в госпитале для больных холерой);
• рентгеновский кабинет, оборудованный передвижной аппаратурой (в госпитале для больных чумой);
• операционную;
• туалет для слива обеззараженных отходов и выделений больных.

3.6. В приемном отделении осматривают поступающих больных, оказывают экстренную помощь, берут материал для бактериологического (вирусологического) исследования, проводят санитарную обработку, переодевают больного, готовят одежду больного к отправке в дезинфекционную камеру, составляют первичные документы на поступившего больного, при необходимости начинают специфическое лечение. Приемное отделение оборудуют в соответствии с его назначением и необходимостью проведения текущей и заключительной дезинфекции.

В кладовой одежду хранят в индивидуальных мешках, сложенных в баки или полиэтиленовые мешки, внутренняя поверхность которых должна быть обработана раствором инсектицида.

3.7. В отделении госпиталя должны быть палаты для больных со смешанными инфекциями, для беременных и рожениц, а также аппаратура и инструментарий для оказания экстренной хирургической и акушерско-гинекологической помощи.

3.8. Пищу для больных доставляют в посуде кухни к служебному входу «чистого» блока и там перекладывают из посуды кухни в посуду буфетной госпиталя. В буфетной пищу раскладывают в посуду отделений и направляют в раздаточную отделения, где пищу распределяют по порциям и разносят по палатам. Посуду, в которой пища поступила в отделение, обеззараживают кипячением, после чего бак с посудой передают в буфетную, где ее моют и хранят до следующей раздачи. Раздаточную снабжают всем необходимым для обеззараживания остатков пищи. Индивидуальную посуду обеззараживают после каждого приема пищи.

3.9. Обеззараженные медицинские отходы утилизируют в соответствии с требованиями санитарных правил по сбору, хранению и удалению отходов лечебно-профилактических учреждений.

3.10 В «чистой» половине располагают помещения для обслуживающего персонала:

• гардеробную для верхней одежды;
• санитарный пропускник (желательно отдельно для мужчин и женщин);
• туалетные;
• буфетную;
• бельевую;
• комнаты для дежурного персонала (для оформления историй болезни, других документов и отдыха);
• подсобные помещения (аптека и т.п.).

3.11. За персоналом, обслуживающим больных легочной формой чумы, заболеваниями, вызванными вирусами I группы патогенности, и подозрительных на эти заболевания, устанавливают постоянное медицинское наблюдение, он проживает на территории госпиталя без права выхода за его пределы.

3.12. Доставку в стационар больных осуществляет бригада эвакуаторов на специально выделенном автотранспорте. В состав бригады включают врача или среднего медицинского работника, прошедших инструктаж по вопросам соблюдения требований биологической безопасности, двух санитаров и шофера. Шофер эвакуационной бригады при наличии изолированной кабины должен быть одет в комбинезон, при отсутствии ее — в тип костюма аналогично членам бригады.

3.13. При перевозке больных легочной формой чумы, заболеваниями, вызываемыми вирусами I группы патогенности, КГЛ или с подозрением на эти заболевания эвакуаторы меняют защитную одежду после каждого больного.

3.14. После доставки больного в стационар транспорт и предметы, использованные при транспортировании, обеззараживают силами бригады эвакуаторов на территории госпиталя на специально оборудованной площадке со стоком и ямой (приложение № 1). По окончании каждого рейса персонал, сопровождавший больного, обязан продезинфицировать обувь и руки (в перчатках) и полиэтиленовые (клеенчатые) фартуки, дополнительно надеваемые при массовых перевозках. Все члены бригады после смены обязаны пройти санитарную обработку.

3.15. Всю работу в госпитале по уходу и лечению больных проводят в защитной одежде.

3.16. Перед выпиской больной проходит санитарную обработку. Условия выписки больных из госпиталя определены по каждой инфекции в соответствующих документах.

3.17. Постельные принадлежности выбывшего из госпиталя больного сдают в дезинфекционную камеру, а кровать и тумбочку обеззараживают.

3.18. В госпитале, где находятся больные с заболеваниями, вызванными микроорганизмами I группы патогенности (кроме бубонной формы чумы), а также II группы патогенности (КГЛ, легочная форма сапа), устанавливают противоэпидемический режим максимальной изоляции.

3.19. В госпитале, где находятся больные туляремией, сибирской язвой, бруцеллезом, сапом, мелиоидозом и другими заболеваниями, вызванными возбудителями II группы патогенности, устанавливают противоэпидемический режим, предусмотренный для соответствующей инфекции.

3.20. В холерном госпитале устанавливают противоэпидемический режим, аналогичный для отделений с острыми кишечными инфекциями.

3.21. Больных, подлежащих провизорной госпитализации, размещают индивидуально или небольшими группами по срокам поступления, по клиническим формам и по тяжести заболевания.

3.22. Устройство, порядок и режим работы провизорного госпиталя устанавливают как для инфекционного госпиталя.

3.23. При подтверждении в провизорном госпитале предполагаемого диагноза больных переводят в соответствующие отделения инфекционного госпиталя.

В палате провизорного отделения после перевода больного проводят заключительную дезинфекцию в соответствии с характером инфекции. Оставшимся больным (контактным) проводят санитарную обработку, переодевают в чистое белье, по возможности, переводят в другую палату и при необходимости приступают к профилактическому лечению. Время пребывания контактных больных увеличивается на срок инкубационного периода выявленного заболевания.

3.24. Срок выписки больных из провизорного госпиталя определяют конкретно в каждом случае, но не короче инкубационного периода подозреваемого заболевания.

3.25. Устройство и режим изолятора аналогично в инфекционном госпитале.

3.26. В госпиталях и изоляторе не должно быть лишних предметов. Оборудование и мебель должны быть гладкими, легко моющимися, устойчивыми к действию дезинфицирующих средств.

3.27. Выделения больных и изолированных лиц (мокрота, моча, испражнения и т.д.) подлежат обязательному обеззараживанию. Методы обеззараживания применяются в соответствии с характером инфекции (приложение № 1).

3.28. В госпиталях и изоляторе ежедневно проводят тщательную текущую дезинфекцию, после освобождения их — заключительную дезинфекцию.

3.29. Контроль соблюдения требований биологической безопасности в инфекционном, провизорном госпиталях, изоляторе и обсерваторе осуществляют специалисты территориальных центров госсанэпиднадзора.

3.30. Лица, находящиеся в карантинной зоне по чуме, могут выехать за ее пределы после обсервации по истечении установленного срока. Прохождение обсервации удостоверяют справкой установленной формы.

3.31. Лица, находящиеся в карантинной зоне по холере, могут выехать за ее пределы после обсервации по истечении установленного срока. В ходе обсервации проводят однократное обследование на вибриононосительство. О прохождении обсервации выдают справку установленной формы.

3.32. Обсерваторы развертывают в обособленных помещениях (административных зданиях, школах, профилакториях, гостиницах, детских и спортивных лагерях, на пассажирских судах и т.п.), специально приспосабливаемых для изоляции и медицинского наблюдения за выезжающими за пределы зоны карантина здоровыми лицами, не бывшими в контакте с больными.

3.33. В обсерваторе предусматривают приемную, палаты, комнаты для медицинского и обслуживающего персонала, для взятия материала, хранения личных вещей обсервируемых, буфетную, санпропускник и подсобные помещения.

Медицинский и обслуживающий персонал проживает на территории обсерватора без права выхода за его пределы. Для работы в обсерваторе разрешается мобилизация медицинских работников и другого обслуживающего персонала из числа обсервируемых.

3.34 В обсерватор помещают только здоровых людей.

3.35. В обсерваторе проводят медицинский осмотр с целью выявления лиц с температурой или желудочно-кишечными расстройствами и другими сигнальными симптомами особо опасных инфекций.

3.36. Заполнение отделений или палат обсерватора проводят одномоментно. Обсервируемых размещают по срокам поступления, по возможности небольшими группами с принятием мер к исключению общения с лицами из других помещений.

3.37. При выявлении в обсерваторе больного с повышенной температурой или с острым кишечным заболеванием его переводят в провизорный госпиталь. Лиц, контактировавших с заболевшим, изолируют на месте до установления диагноза. При подтверждении диагноза их переводят в изолятор.

При недостаточной разобщенности для остальных обсервируемых увеличивают продолжительность обсервации на срок инкубационного периода выявленного заболевания с момента госпитализации больного и проведения заключительной дезинфекции.

В случае получения отрицательных результатов лабораторного исследования первоначальный срок обсервации не изменяют.

3.38. После освобождения отделения обсерватора проводят заключительную дезинфекцию и повторное его заполнение.

3.39. Стационары должны находиться под круглосуточной охраной воинских или милицейских нарядов.

3.40. В госпиталях, изоляторе и обсерваторе работу по лечению и уходу за больными выполняют врачи и медицинские сестры, прошедшие подготовку по вопросам карантинных и других особо опасных инфекций, подтвержденную зачетом по полученным знаниям. Младший и обслуживающий персонал проходит подготовку на рабочем месте. К работе допускают персонал, не имеющий противопоказаний к лечению специфическими препаратами и антибиотиками.

3.41. Медицинский персонал, привлекаемый к работе в госпиталях, изоляторах и обсерваторах, допускают к работе без вакцинации при условии отсутствия противопоказаний к лечению специфическими препаратами и антибиотиками. За ним устанавливают медицинское наблюдение на время работы в очаге.

3.42. По окончании работы в госпиталях и изоляторах персонал проходит обсервацию, срок которой регламентируется соответствующими нормативными документами.

3.43. Организацию мероприятий настоящих санитарных правил в госпиталях, изоляторах и обсерваторах обеспечивают руководители организаций, задействованных в выполнении комплексного плана мероприятий по санитарной охране территории.

IV. Требования к патолого-анатомической работе в очагах заболеваний, вызванных микроорганизмами I — II групп патогенности

4.1. Все трупы людей, умерших от инфекционных заболеваний, вызываемых микроорганизмами I — II групп патогенности (кроме вирусов I группы), подлежат патолого-анатомическому, бактериологическому (вирусологическому), серологическому исследованиям в установленном порядке.

4.2. Вскрытие трупов лиц, умерших от заболеваний, вызванных вирусами I группы патогенности, осуществляется в установленном порядке.

4.3. Не допускается в процессе вскрытия трупов слив необеззараженных жидкостей в канализацию.

4.4. Инструментарий, защитные костюмы персонала и все предметы, соприкасавшиеся с трупом, а также транспорт, на котором перевозили труп, подлежат тщательному обеззараживанию (приложение № 1).

4.5. Перевозить труп умершего от чумы, геморрагических лихорадок, вызванных вирусами I группы, сибирской язвы, мелиоидоза к месту погребения можно на любом транспорте в металлическом или плотно закрытом деревянном гробу, обитом внутри клеенкой. Во избежание вытекания трупной жидкости швы в клеенке должны лежать сверху вниз и располагаться на боковых сторонах гроба. Труп должен быть завернут в материал, пропитанный дезинфицирующим раствором.

Перевозку трупа на кладбище или в крематорий осуществляет эвакуационная бригада в сопровождении специалистов противочумных учреждений или отделов особо опасных инфекций центров госсанэпиднадзора.

4.6. На дно могилы засыпают хлорную известь. Труп, уложенный в гроб, засыпают сверху хлорной известью и плотно закрывают крышкой.

4.7. В виде исключения при отсутствии гроба допускается захоронение трупов людей, завернутых в простыню, смоченную дезинфицирующим раствором. На дно могилы и на уложенный труп насыпается хлорная известь.

4.8. Кремацию и захоронение трупов людей, умерших от инфекционных болезней, вызванных микроорганизмами I — II групп патогенности, осуществляют в общих крематориях и на общих кладбищах с соблюдением требований настоящих санитарных правил.

4.9. Трупы павших или вынужденно забитых верблюдов на энзоотичных по чуме территориях подлежат вскрытию в установленном порядке. Труп животного затем сжигают или закапывают. Захоронение трупов верблюдов производят в ямах глубиной 2 метра. Труп и верхний слой земли обильно посыпают хлорной известью.

Места изоляции больных верблюдов, порядок уничтожения трупов и дезинфекции определяет ветеринарная служба. Захоронение трупов верблюдов осуществляют работники ветеринарных организаций под контролем специалистов противочумных учреждений.

V. Требования к порядку выезда сотрудников организаций, работающих с ПБА

5.1. Сотрудники, непосредственно работающие с ПБА I группы и возбудителем холеры или посещающие помещения «заразной» зоны, а также непосредственно работающие на энзоотичной по чуме территории, перед отпуском, командировкой, увольнением (далее — при выезде) обязаны пройти обсервацию.

5.2. Сотрудники, работающие с микроорганизмами II группы патогенности (кроме возбудителя холеры), обсервацию не проходят.

5.3 Срок обсервации составляет максимальный инкубационный период для данной инфекции:

• при работе с возбудителем чумы или непосредственно на энзоотичной по чуме территории — 6 суток с ежедневной термометрией;
• при работе с возбудителем холеры — 5 суток;
• при одновременной работе в помещении с возбудителями чумы и холеры — 6 суток;
• при работе с высококонтагиозными вирусами I группы — 21 день.

5.4 В период обсервации посещение «заразной» зоны не допускается.

5.5. За сотрудником устанавливают медицинское наблюдение с ежедневной термометрией или с целью выявления симптоматического комплекса острого кишечного заболевания, которое проводит врач изолятора (здравпункта).

5.6. В случае если сотрудник в период обсервации контактировал с лицом, работающим с ПБА и имеющим повышенную температуру или симптомы острого желудочно-кишечного заболевания, выезд в командировку, начало отпуска, увольнение и т.п. не разрешается до снятия подозрения на особо опасную инфекцию.

5.7. В случае возникновения у проходящего обсервацию сотрудника какого-либо заболевания выезд в командировку, начало отпуска, увольнение и т.п. откладывают до выздоровления.

5.8. Лицам, работающим в пределах «чистой» зоны организации и не контактировавшим с лабораторными сотрудниками, имеющими повышенную температуру или симптомы острого желудочно-кишечного заболевания неустановленной этиологии, разрешается выезд в командировку, уход в отпуск, увольнение и т.п. без прохождения обсервации.

5.9. Сроки обсервации устанавливают приказом по организации с извещением обсервируемого лица.

5.10. Разрешение на выезд оформляют удостоверением, которое выдают на руки. Сотрудники, командированные в противочумные учреждения, сдают удостоверение руководителю этого учреждения, получая при выезде аналогичное. Во всех других случаях удостоверение сохраняется у выехавшего сотрудника и сдается по возвращении в организацию.

5.11. Выезд в командировку без прохождения обсервации сотрудников, работающих с возбудителями чумы, холеры, вирусами I группы патогенности, возможен по разрешению Департамента госсанэпиднадзора Минздрава России в составе не менее двух человек.

Обязательно проведение обсервации в течение установленного срока, как в пути, так и по прибытии в пункт назначения. При появлении у кого-либо из группы повышенной температуры или симптомов острого желудочно-кишечного заболевания проводится срочная изоляция в ближайшем противочумном или медицинском учреждении и посылается экстренное извещение по месту работы.

5.12. Переезды сотрудников противочумных учреждений в зоне, обслуживаемой данным или другим противочумным учреждением (кроме г. г. Москвы и Санкт-Петербурга), совершаются без предварительной обсервации, если время пути между населенными пунктами, в которых имеются противочумные учреждения, не превышает вместе с ожиданием в пункте пересадки 24 часов.

VI. Организация контроля

6.1. Контроль за соблюдением настоящих санитарных правил по биологической безопасности осуществляют органы и учреждения государственной санитарной службы:

• Противочумный центр Минздрава России — в организациях, выполняющих работу с ПБА I группы, на территории Российской Федерации;
• противочумные учреждения (Противочумный центр, противочумные станции, научно-исследовательские противочумные институты) — в центрах госсанэпиднадзора, выполняющих работы с ПБА II группы, в прикрепленных субъектах Российской Федерации;
• центры госсанэпиднадзора в субъектах Российской Федерации — в организациях, выполняющих работы с ПБА II группы на обслуживаемой территории.

6.2. В каждой организации, работающей с ПБА I — II групп патогенности, создают комиссии по контролю соблюдения требований биологической безопасности.

В организациях с численностью работающего персонала свыше 100 человек ряд функций может быть возложен на специализированный отдел (отделение, лабораторию).

6.3. Организацию методического руководства по вопросам контроля выполнения требований биологической безопасности при работе с ПБА I — II групп, анализ деятельности организаций по этому разделу, подготовку информационных материалов осуществляет Противочумный центр Минздрава России.

I. БАКТЕРИИ, НЕ ОБРАЗУЮЩИЕ СПОР

<1> Режимы дезинфекции при холере.

<2> Режимы дезинфекции при чуме и холере.

II. БАКТЕРИИ, ОБРАЗУЮЩИЕ СПОРЫ

III. ВИРУСЫ И ХЛАМИДИИ

IV. РИККЕТСИИ

V. ГРИБЫ

• при попадании заразного материала экспозиция увеличивается до 4 мин.;
• отсчет времени обеззараживания при кипячении начинается с момента кипения воды.

Примечание. Кроме указанных обеззараживающих средств допускается применение других изученных и разрешенных к применению в Российской Федерации в установленном порядке обеззараживающих средств, эффективных в отношении микроорганизмов I — II групп патогенности.

1. Бактерии, не образующие споры

1. Хлорамин Б (содержание активного хлора — АХ, не менее 24%)

0,5%, 1%, 2%, 3%-ные (по препарату) растворы

2. Хлорная известь (содержание АХ не менее 25%)

сухое вещество

0,5%, 1%, 2%-ные (по препарату) осветленные растворы

10%-ные (по препарату) осветленный и не осветленный растворы

20%-ные (по препарату) хлорно-известковое молоко

3. Известь белильная термостойкая (содержание АХ не менее 25%)

сухое вещество

0,5%, 1%, 2%-ные (по препарату) осветленные растворы

10%-ные (по препарату) осветленный и не осветленный растворы

4. Кальция гипохлорит нейтральный КГН (содержание АХ 45 — 54%)

сухое вещество

0,15%-ные (по АХ) растворы

0,25%-ные (по АХ) растворы

0,6%-ные (по АХ) растворы

0,25%, 0,5%, 1%, 5% (по АХ) осветленные растворы

5% (по препарату) осветленный и не осветленный растворы

5. Двуосновная соль гипохлорита кальция — ДСГК (содержание АХ не менее 30%)

сухое вещество

1%-ный (по препарату) осветленный раствор

5%-ный (по препарату) осветленный и не осветленный растворы

6. Пресепт, таблетки (содержание активного хлора в таблетках весом 1 г — 0,288 — 0,355 г, весом 5 г — 1,44 — 1,76)

0,028%, 0,056%, 0,112%, 0,168%-ные по АХ растворы;

Пресепт, гранулы (содержание активного хлора — 27,9 — 34,1%)

7. ДП-2 (содержание АХ не менее 30%)

сухое вещество

0,2%-ные (по препарату) растворы

8. Клорсепт, таблетки (содержание АХ не менее 30%)

0,1%, 0,2%-ные (по АХ) растворы

9. Гипохлорит натрия (содержание активного хлора не менее 14%)

1%-ный (по АХ) раствор

10. Водорода перекись медицинская (содержание перекиси водорода не менее 30%)

3%-ный раствор (по перекиси водорода)

11. Водорода перекись медицинская с моющим средством (3%-ный раствор перекиси водорода с 0,5% синтетического моющего средства)

12. Велтолен (содержание клатрата мочевины с дидецилметиламмоний бромидом — 20%)

1% (по препарату) раствор

13. Ника-Дез (содержание алкилдиметилбензиламмоний хлорида — 10%, полигексаметиленгуанидин гидрохлорид — 8%, спирт этиловый — 20%)

2%-ный (по препарату) раствор

14. Гамма-Д (содержание алкилдиметилбензиламмоний хлорида — 0,9%, метасиликат натрия — 20%)

4%, 6%-ный (по препарату) растворы

15. РИК-Д (содержание алкилдиметилбензиламмоний хлорида — 1,8%, метасиликата натрия — 40%) 2%, 3%, 8%-ный (по препарату) растворы

16. Бриллиант (содержание алкилдиметилбензиламмоний хлорида — 0,9%, глютаровый альдегид — 0,8%) 0,5%, 2%, 3%-ные (по препарату) растворы

17. Септодор (смесь четырех ЧАС — 50%)

0,1%, 0,2%, 1%-ный раствор

18. Дезэфект (содержит смесь 2 четвертичных аммониевых соединений — 9,5%)

2,3%, 3,8%-ные (по препарату) растворы

19. Септодор-форте (содержит смесь 4 четвертичных аммониевых соединений — 37,5% и глутаровый альдегид — 12,5%)

0,2%, 0,5%, 1%-ные (по препарату) растворы

20. Лизол А (содержание фенолов 50%)

5%-ный (по препарату) раствор

21. Формалин

3%, 10%, 20%, 40%-ный (по формальдегиду) раствор

22. Аммиак

25%-ный (по ДВ) водный раствор (для нейтрализации формальдегида применяется соотношение 1:1 и для активации хлорсодержащих препаратов 1:8)

23. Кипячение

Вода

2%-ный раствор пищевой соды

2%-ный раствор кальцинированной соды

24. Обработка водяным насыщенным паром под давлением (автоклавирование)

0,20 МПА (2,0 кгс/см2), 132 \pm 2 °C

0,15 МПА (1,5 кгс/см2), 126 \pm 2 °C

0,11 МПА (1,1 кгс/см2), 120 \pm 2 °C

25. Спирт этиловый 70%-ный

26. Обработка горячим воздухом — 180 °C

27. Сжигание

28. Обработка в дезинфекционных камерах: паровоздушный, паровой и пароформалиновый методы

29. Аэрозольный метод обеззараживания

30. Газовый метод (дезинфекция парами формальдегида)

31. Ультрафиолетовое излучение

2. Бактерии, образующие споры

1. Хлорамин Б (содержание активного хлора — АХ, не менее 24%)

1 — 4%-ные активированные растворы, содержащие АХ 0,25 — 1%

2. Хлорная известь или белильная термостойкая известь (содержание АХ не менее 25%)

сухое вещество

20%-ный осветленные и не осветленные растворы, содержащие не менее 5% АХ

4%-ный активированные осветленные растворы, содержащие не менее 1% АХ

3. Кальция гипохлорит нейтральный (КГН) — содержание АХ 45 — 54%

сухое вещество

15%-ные осветленные растворы, содержащие не менее 5% АХ

2%-ные активированные осветленные растворы, содержащие не менее 1% АХ

4. Двуосновная соль гипохлорита кальция — ДСГК (содержание АХ не менее 30%)

сухое вещество

4% (по препарату) активированный осветленный раствор, содержащий не менее 1,0% АХ

5. ДП-2 (содержание АХ не менее 30%)

1,2%-ный по АХ раствор при температуре 50 °C и 20 °C

3%-ный по АХ раствор

6. Клорсепт, таблетки (содержание АХ не менее 30%)

1,5%-ный по АХ раствор

7. Тепсихлор 70 А (содержание АХ 67,5%)

сухое вещество

5%-ный по АХ раствор

3,5%-ный по АХ активированный раствор

8. Пресепт, таблетки (содержание активного хлора в таблетках весом 1 г — 0,288 — 0,355 г, весом 5 г — 1,44 — 1,76 г)

1,68%-ный по АХ раствор

9. Водорода перекись медицинская (содержание перекиси водорода не менее 30%) 3%-ный по ПВ раствор с 0,5% моющего средства (Прогресс, Новость, Лотос, Астра) при 50 °C

6%-ный по ПВ раствор с 0,5% моющего средства (Прогресс, Новость, Лотос, Астра) при 20 и 50 °C

10%-ный по ПВ раствор

6%-ный по ПВ раствор с 1% муравьиной кислоты и 0,1% ПАВ

10. ПВК (содержание перекиси водорода — 30%)

2%, 3%, 4%-ный (по ПВ) раствор

3% по ПВ раствор при 50 °C

11. Велтолен (содержание клатрата мочевины с дидецилметиламмоний бромидом — 20%)

2,5%-ный раствор при 50 — 55 °C

12. Велтодез (содержание клатрата дидецилдиметиламмоний бромида с мочевиной — 20%)

2,5% раствор при температуре 50 — 55 °C

5%-ный раствор при 50 — 55 °C

13. Велтолен-экстра (содержание клатрата дидецилдиметиламмоний бромида с мочевиной — 10%)

5%-ный раствор при температуре 50 — 55 °C

8%-ный раствор при температуре 50 — 55 °C

14. Септодор-форте (содержит смесь 4 ЧАС — 37,5% и глутаровый альдегид — 12,5%)

5%-ный раствор при 50 — 55 °C

10%-ный раствор

15. Ника-Дез (содержание алкилдиметилбензиламмоний хлорида — 10%, полигексаметиленгуанидин гидрохлорид — 8%, спирт этиловый — 20%)

5%, 15%-ный (по препарату) раствор

16. Гамма-Д (содержание алкилдиметилбензиламмоний хлорида — 0,9%, метасиликат натрия — 20%)

10%, 12%-ный (по препарату) растворы

17. РИК-Д (содержание алкилдиметилбензиламмоний хлорида — 1,8%, метасиликата натрия — 40%)

8%-ный раствор

18. Формалин (содержание формальдегида 40%)

20%, 40%-ные по формальдегиду водные растворы

5%-ный по формальдегиду раствор с 0,5% мыла при 55 — 60 °C

0,2%-ный по формальдегиду раствор с 0,5% мыла или ОП-10 при 60 °C

19. Едкий натр

10%-ный по препарату раствор при температуре 70 °C

20. Кипячение

Вода

2%-ный раствор пищевой соды

2%-ный раствор кальцинированной соды

21. Обработка водяным насыщенным паром под давлением (автоклавирование)

0,20 МПА (2,0 кгс/см2), 132 \pm 2 °C

22. Прокаливание

23. Сжигание

24. Сухой горячий воздух (180°)

25. Обработка в дезинфекционных камерах: паровоздушный метод, пароформалиновый, паровой методы

26. Аэрозольный метод обеззараживания

3. Вирусы и хламидии

1. Хлорамин Б (содержание активного хлора — АХ, не менее 24%)

1%, 3%, 4%-ный (по препарату) растворы

0,5%, 1,5%-ный (по препарату) активированные растворы хлорамина Б

2. Хлорная известь (содержание АХ не менее 25%)

сухое вещество

3%, 10%-ные (по препарату) осветленный и не осветленный растворы

20%-ное (по препарату) хлорно-известковое молоко

3. Известь белильная термостойкая (содержание АХ не менее 25%)

сухое вещество

3%, 10%-ные (по препарату) осветленный и не осветленный растворы

4. Кальция гипохлорит нейтральный КГН (содержание АХ 45 — 54%)

сухое вещество

0,6%, 0,9%-ные (по АХ) растворы

0,6%, 0,9%-ные (по АХ) осветленные растворы

5. Двуосновная соль гипохлорита кальция — ДСГК (содержание АХ не менее 30%)

сухое вещество

1%, 1,5%, 5%, 7%-ные (по препарату) осветленный и не осветленный растворы

6. Сульфохлорантин Д (содержание АХ не менее 15%)

0,2%-ный (по препарату) раствор

7. ДП-2 (содержание АХ не менее 30%)

сухое вещество

0,1%, 0,5% (по препарату) раствор

8. Хлорэффект, таблетки массой 0,5 г; 1,0 г; 4,0 г (содержание АХ 30 — 45%)

0,2% (по АХ) раствор

9. Водорода перекись медицинская (содержание перекиси водорода не менее 30%)

3%, 6%-ный раствор (по перекиси водорода)

10. Водорода перекись медицинская с моющим средством

(3%-ный раствор перекиси водорода с 0,5% моющего средства)

11. ПВК (содержание перекиси водорода — 30%)

3%-ный (по ПВ) раствор

12. Аммиак

25% (по ДВ) водный раствор (для нейтрализации формальдегида применяется соотношение 1:1 и активации хлорсодержащих препаратов 1:8)

13. Обеззараживание сухим жаром в воздушном стерилизаторе

14. Кипячение

Вода

2%-ный раствор пищевой соды

2%-ный раствор кальцинированной соды

15. Обработка водяным насыщенным паром под давлением (автоклавирование)

0,20 МПА (2,0 кгс/см2), 132 \pm 2 °C

0,15 МПА (1,5 кгс/см2), 126 \pm 2 °C

0,11 МПА(1,1 кгс/см2), 120 \pm 2 °C

16. Спирт этиловый 70%

17. Сжигание

18. Обработка в дезинфекционных камерах: паровоздушный, паровой и пароформалиновый методы

19. Аэрозольный метод обеззараживания

20. Газовый метод (дезинфекция парами формальдегида)

21. Ультрафиолетовое излучение

4. Риккетсии

1. Хлорамин Б (содержание активного хлора — АХ, не менее 24%)

1%, 3%-ный (по препарату) растворы

0,5% (по препарату) активированный раствор хлорамина Б

2. Хлорная известь или известь белильная термостойкая

сухое вещество

20%-ные (по препарату) осветленный и не осветленный растворы, содержащие не менее 5% АХ

3%-ный осветленный раствор, содержащий не менее 1% АХ

3. Кальция гипохлорит нейтральный (КГН)

сухое вещество

15%-ные осветленный или не осветленный растворы, содержащие не менее 5% АХ

1,5%-ные раствор, содержащий не менее 0,5% АХ

4. Водорода перекись медицинская (содержание перекиси водорода не менее 30%)

6%-ный раствор (по перекиси водорода)

3%-ный раствор (по перекиси водорода) с 0,5% моющего средства.

5. Формалин — 20%-ный раствор формальдегида

6. Лизол А (содержание фенолов 50%)

8%-ный (по препарату) раствор

7. Кипячение

Вода

2%-ный раствор пищевой соды

2%-ный раствор кальцинированной соды

8. Обработка водяным насыщенным паром под давлением (автоклавирование)

0,20 МПА (2,0 кгс/см2), 132 \pm 2 °C

0,11 МПА (1,1 кгс/см2), 120 \pm 2 °C

9. Спирт этиловый 70%

10. Сжигание

11. Обработка в дезинфекционных камерах: паровоздушный, паровой и пароформалиновый методы

5. Грибы

1. Хлорамин Б (содержание активного хлора — АХ, не менее 24%)

1% (по АХ) активированный раствор

5% (по препарату) раствор

2. Кальция гипохлорит нейтральный (КГН)

15%-ный осветленный раствор, содержащий не менее 5% активного хлора

3%-ный (по препарату) раствор

3. Водорода перекись медицинская (содержание перекиси водорода не менее 30%)

3%, 6%-ный раствор (по перекиси водорода) с 0,5% моющего средства

10%-ный раствор (по перекиси водорода)

4. Растворы формалина — 5 - 10%

5. Растворы лизола А — 5 - 10%

6. Кипячение

Вода

2%-ный раствор пищевой соды

2%-ный раствор кальцинированной соды

7. Обработка водяным насыщенным паром под давлением (автоклавирование)

0,20 МПА (2,0 кгс/см2), 132 \pm 2 °C

0,15 МПА (1,5 кгс/см2), 126 \pm 2 °C

0,11 МПА (1,1 кгс/см2), 120 \pm 2 °C

8. Сжигание

9. Прокаливание

10. Ультрафиолетовое излучение

11. Аэрозольный метод обеззараживания

12. Обработка в дезинфекционных камерах: паровоздушный и пароформалиновый методы.

(справочное)

Бактерии

I группа

1. Yersinia pestis чумы

II группа

1. Bacillus anthracis сибирской язвы

2. Brucella abortus Brucella melitensis бруцеллеза Brucella suis

3. Francisella tularensis туляремии

4. Burkholderia mallei сапа

5. Burkholderia pseudomallei мелиоидоза

6. Vibrio cholerae O1 токсигенный холеры

7. Vibrio cholerae non O1 (O139) холеры токсигенный

II группа

1. Rickettsia prowazeki эпидемического сыпного тифа и болезни Брилля

2. Rickettsia typhi крысиного сыпного тифа

3. Rickettsia rickettsii пятнистой лихорадки

4. Rickettsia tsutsugamushi лихорадки цуцугамуши

5. Coxiella burnetii коксиеллеза (лихорадка Ку)

Вирусы (в связи с отсутствием биноминальной номенклатуры для вирусов обозначения даются в русской транскрипции)

I группа

1. Filoviridae: вирусы Марбург и Эбола геморрагических лихорадок

2. Arenaviridae: вирусы Ласса, Хунин, Мачупо, геморрагических лихорадок Себиа, Гуанарито

3. Poxviridae: Род Ortopoxvirine

     вирус натуральной оспы (Variola)      натуральной оспы человека
     вирус оспы обезьян (Monkeypox)        оспы обезьян

4. Herpesviridae: обезьяний вирус B хронического энцефалита и энцефалопатии

II группа

1. Togaviridae:

     вирусы лошадиных энцефаломиелитов     комариных энцефалитов,
     (Венесуэльский ВНЭЛ, Восточный ВЭЛ,   энцефаломиелитов,
     Западный ЗЭЛ)                         энцефаломенингитов

 вирусы лихорадок
 Семлики, Бибару, Эвергладес,          лихорадочных заболеваний
 Чикунгунья, О'Ньонг-Ньонг,
 Карельской, Снндбис, реки Росс,
 Майяро, Мукамбо, Сагиума

2. Flaviviridae: вирусы комплекса клещевого энцефалита энцефалитов, энцефаломиелитов
   • Клещевого энцефалита (КЭ), Алма- Арасан, Апои, Лангат, Негиши, Повассан, Шотландского энцефаломиелита овец Болезни леса Киассанур, Омской геморрагических лихорадок геморрагической лихорадки (ОГЛ) вирусы комплекса японского энцефалита энцефалитов, (ЯЭ), Западного Нила, Ильеус, Росио, менингоэнцефалитов Сент-Луис, энцефалит Усуту, энцефалит долины Муррея, Карши, Кунжин, Сепик, лихорадочных заболеваний Вессельс-борн, Зика, Риобраво, Денге, Сокулук

     Желтой лихорадки                      геморрагической лихорадки
     вирус гепатита C                      парентерального гепатита,

                                       гепатоцеллюлярной карциномы
                                       печени

3. Bunyaviridae, Род Bunyavirus:

     Комплекс Калифорнийского энцефалита,  энцефалитов, энцефало-
     Ла Кросс, Джеймстаун - каньон,        миелитов, менингоэнцефалитов
     зайцев-беляков, Инко, Тягиня          и лихорадочных заболеваний с

                                       менингеальным синдромом и
                                       артритами лихорадочных

     комплекс C-вирусы Апеу, Мадрид,       заболеваний с миозитами и
     Орибока, Осса, Рестан и др.           артритами

 Род Phlebovirus:

     вирусы москитных лихорадок Сицилии,   энцефалитов и лихорадочных
     Неаполя, Рифт-валли, Тоскана и др.    заболеваний с артритами и
     Род Nairovirus:                       миозитами
     вирус Крымской геморрагической        геморрагической лихорадки

 лихорадки-Конго;
 болезни овец Найроби, Ганджам;        лихорадки с менингеальным
                                       синдромом энцефалита
 Дугбе
 Род Hantavirus:

     вирусы Хантаан, Сеул, Пуумала,        геморрагических лихорадок с
     Чили, Аидо и др.                      почечным синдромом (ГЛПС) и с

                                       легочным синдромом

4. Reoviridae, Род Orbivirus:

     вирусы Кемерово, Колорадской          лихорадок с менингеальным
     клещевой лихорадки, Синего языка      синдромом и артритами

 овец, Чангвинола, Орунго и др.

5. Rhabdoviridae, Род Lyssavirus:

     вирус уличного бешенства              бешенства
     Дикования, Лагос-бат                  псевдобешенства и

                                       энцефалопатий

6. Picornaviridae, Род Aphtovirus: вирус ящура ящура

7. Arenaviridae:

     вирусы лимфоцитарного хориоменин-     астенических менингитов и
     гита, Такарибе, Пичинде               менингоэнцефалитов

8. Hepadnaviridae: вирусы гепатитов B парентеральных гепатитов

9. Retroviridae: вирусы иммунодефицита человека СПИДа (ВИЧ-1, ВИЧ-2)

     вирус Т-клеточного лейкоза            Т-клеточного лейкоза человека
     человека (HT  )

             LV

10. Nodaviridae: вирусы гепатитов Д (дельта) и E инфекционных гепатитов

11. Unconventional agents: возбудители медленных нейро- инфекций=подострых губчатых энцефалопатий (Prion Diseases)

     Куру                                  подострой энцефалопатии
     Агент CJD-возбудитель болезни         болезни Крейцфельда - Якоба,
     Крейцфельда-Якоба                     синдрома Герстманна-

                                       Страусслера

     Возбудитель трансмиссивной губчатой   амиотрофического
     энцефалопатии человека                лейкоспонгиоза (Белоруссия)
     Возбудитель оливопонтоцеребеллярной   оливопонтоцеребеллярной
     атрофии человека                      атрофии I типа (Якутия,

                                       Восточная Сибирь)
 Скрепи                                подострой энцефалопатии
 овец и коз

     Возбудитель энцефалопатии             трансмиссивной энцефалопатии
     норок                                 норок
     Хроническая изнуряющая болезнь        болезни хронической усталости
     копытных                              оленей и лосей в неволе

     Возбудитель губчатой энцефалопатии    "коровьего бешенства"

 крупного рогатого скота

Хламидии

II группа

1. Chlamydophila psittaci орнитоза-пситтакоза

Грибы

II группа

1. Blastomyces dermatitidis бластомикоза

2. Histoplasma capsulatum гистоплазмоза

3. Coccidioides immitis кокцидиоидомикоза

4. Paracoccidioides brasiliensis паракокцидиоидомикоза (южноамериканская

                                       бластомикоза)

Яды биологического происхождения

II группа

1. Ботулинические токсины всех типов

2. Холерный токсин

3. Столбнячный токсин

Примечания. 1. Аттенуированные штаммы возбудителей I — II групп относят к III группе патогенности.

2. По мере открытия новых возбудителей инфекционных болезней списки будут дополняться.

(рекомендуемое)

ПРИ РАБОТЕ С ПБА В МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЯХ

(рекомендуемое)

ИССЛЕДОВАНИИ ТРУПОВ ЛЮДЕЙ И ЖИВОТНЫХ

Защитная одежда для проведения лабораторных и других видов работ в стационарных условиях

Каждый сотрудник лаборатории должен быть обеспечен рабочей одеждой для проведения работ, не связанных с ПБА: пижамами или комбинезонами — три комплекта, тапочками кожаными — две пары, носками — три пары, халатами медицинскими — два.

Для работы с ПБА I — II групп каждый сотрудник должен быть обеспечен защитной одеждой и обувью: халатами противочумными — шесть, шапочками медицинскими или малыми косынками — три, большими косынками или капюшонами — три, средствами защиты органов дыхания (респираторы, ватно-марлевые маски), зрения (очки-консервы), кожных покровов, специальной обувью (водонепроницаемые бахилы, галоши, сапоги); в специализированных лабораториях — изолирующими костюмами типа КЗМ-1 с противогазами или пневмокостюмами (типа «Антибелок») — один, пневмошлемами — один, а также другими видами спецодежды и обуви, предусмотренными нормами.

При работе в стационарных, временных (полевых или передвижных) лабораториях, лечебно-профилактических учреждениях персонал использует противочумные костюмы I — IV типов, изолирующие костюмы типа КЗМ-1 и другие средства, разрешенные к применению в установленном порядке.

В стационарных максимально изолированных лабораториях, оснащенных полным комплексом инженерно-технических систем биологической безопасности, персонал при работе с микроорганизмами I — II групп патогенности использует пневмокостюмы типа «Антибелок-5», пневмошлемы (типа ЛИЗ) или их аналоги, разрешенные к применению в установленном порядке. При авариях, аварийных ситуациях и для ликвидации их последствий персонал применяет аварийный комплект защитной одежды типа Л-1, «Корунд» или их аналоги с фильтрующим противогазом, разрешенные к применению в установленном порядке.

В зависимости от характера выполняемой работы, степени ее опасности для персонала, используют строго определенные типы защитной одежды.

Существуют 4 основных типа противочумных костюмов:

I тип — комбинезон (пижама), носки, тапочки, большая противочумная косынка (120 x 120 x 150 см) или капюшон, противочумный халат, ватно-марлевая маска (из марли 125 x 50 см со слоем ваты 25 x 17 x 1,5 см весом 20 г) или противопылевой респиратор или фильтрующий противогаз, плотно прилегающие очки-консервы или полимерная пленка одноразового использования (17 x 39 см с учетом 6 см с каждой стороны для привязывания тесемок длиной по 30 см), резиновые перчатки, сапоги резиновые (или водонепроницаемые бахилы), полотенце. При необходимости (вскрытие трупов людей или крупных животных) дополнительно надеваются прорезиненные фартук, нарукавники и вторая пара перчаток.

II тип — комбинезон (пижама), носки, тапочки, большая косынка (капюшон), противочумный халат, ватно-марлевая маска (респиратор), резиновые перчатки, сапоги (или водонепроницаемые бахилы), полотенце. Отличается от костюма I типа отсутствием очков.

III тип — комбинезон (пижама), носки, тапочки, большая косынка, противочумный халат, резиновые перчатки, защитная обувь (глубокие галоши, сапоги или водонепроницаемые бахилы), полотенце.

IV тип — комбинезон (пижама), носки, тапочки, шапочка (малая косынка), противочумный (хирургический) халат.

Порядок надевания противочумного костюма

Противочумный костюм надевают до входа в помещение, где ведется работа с ПБА, в строго определенной последовательности.

Порядок надевания следующий: рабочую одежду и обувь, большую косынку (капюшон) надевают так, чтобы закрыть лоб до бровей, шею до подбородка, большую часть щек; концы косынки завязывают на шее сзади. Противочумный халат надевают так, чтобы косынка или капюшон были заправлены под него. Тесемки у ворота халата и пояс завязывают спереди на левой стороне петлей, после этого закрепляют тесемки на рукавах.

Ватно-марлевую маску (респиратор, противогаз и т.д.) надевают на лицо так, чтобы верхний край ее доходил до нижней части орбит, а нижний — должен находиться под подбородком. Верхние тесемки завязывают петлей на затылке, а нижние — на темени (по типу пращевидной повязки). По бокам крыльев носа закладывают ватные тампоны, чтобы воздух не фильтровался помимо маски.

Очки (целлофановая пленка) должны быть пригнаны, стекла натирают карандашом (для предупреждения их запотевания) или кусочком сухого мыла. В местах неплотного прилегания маски закладывают ватные тампоны. Затем надевают перчатки, предварительно проверив их на целостность.

С левой стороны за пояс халата закладывают полотенце.

Перед входом в «заразную» зону обувают резиновые сапоги (водонепроницаемые бахилы).

При необходимости использования фонендоскопа его надевают раньше капюшона или большой косынки.

При проведении патологоанатомического вскрытия трупа человека, крупных животных дополнительно надевают клеенчатый полиэтиленовый фартук, такие же нарукавники и вторую пару перчаток, полотенце закладывают за пояс фартука с правой стороны.

Порядок снятия противочумного костюма

Защитный костюм снимают вне помещения, где работают с ПБА (комната для снятия защитной одежды, предбокс), медленно в строго определенном порядке. После снятия каждой части костюма руки в перчатках погружают в дезинфицирующий раствор. При выходе из «заразного» блока в помещение для снятия СИЗ ноги в резиновых сапогах (галошах, водонепроницаемых бахилах) поочередно ставят в таз с дезинфицирующим раствором и протирают сверху вниз салфеткой (тампоном), смоченной в дезинфицирующем растворе. Затем в течение 1 — 2 минут моют руки в перчатках дезинфицирующим раствором, после этого приступают к снятию костюма. Первым вынимают полотенце и погружают его в бак с дезинфицирующим раствором или бикс для последующего автоклавирования. Фартук протирают смоченным в дезинфицирующем растворе тампоном, снимают и складывают наружной стороной внутрь, снимают нарукавники и вторую пару перчаток, если была необходимость в их применении. Очки (целлофановую пленку) снимают, оттягивая их двумя руками вперед, вверх и назад за голову и опускают в 70%-ный этиловый спирт (целлофан погружают в дезинфицирующий раствор). Развязывают и снимают маску, сворачивая наружной стороной внутрь, не касаясь при этом лица наружной стороной. Маску опускают в емкость с мыльным раствором (для последующего кипячения) или дезинфицирующим раствором. Развязывают тесемки ворота халата, пояс и, опустив верхний край перчаток, развязывают тесемки рукавов, снимают халат, сворачивая наружную его часть внутрь, погружают в емкость для обеззараживания. Снимают косынку, собирая все концы на затылке в одну руку, погружают в емкость для обеззараживания. Снимают сапоги (водонепроницаемые бахилы или галоши). Снимают перчатки, при подозрении на нарушение целостности проверяют в дезинфицирующем растворе, но не воздухом. Руки тщательно обрабатывают 70%-ным этиловым спиртом и моют с мылом.

Защитную одежду, предназначенную для работы в очагах инфекционных заболеваний, госпиталях, изоляторах, блоках для работы с инфицированными животными, обеззараживают сразу после использования полным погружением в дезинфицирующий раствор. В случаях, когда обеззараживание проводят автоклавированием, кипячением или в дезинфекционной камере, костюм складывают соответственно в биксы, баки или мешки для камерного обеззараживания.

После работы в микробиологических комнатах защитную одежду по мере загрязнения, но не реже одного раза в неделю меняют, обеззараживают (режим обеззараживания в соответствии с нормативами) и передают в стирку.

Порядок и правила работы в пневмокостюмах

К работе в костюме допускаются лица, не имеющие медицинских противопоказаний к ношению защитной одежды, прошедшие практическое обучение, инструктаж по правилам работы и сдавшие зачет.

Подбор пневмокостюма осуществляется в соответствии с их размерами:

№ 1 — для лиц ростом до 169 см,

№ 2 — для лиц ростом от 170 до 176 см,

№ 3 — для лиц ростом выше 176 см.

Температура подаваемого в подкостюмное пространство воздуха должна быть не ниже +22 °C и не выше +27 °C.

Перед использованием проверке на централизованном специальном участке подлежат пневмокостюмы на целостность и комплектные к ним фильтры тонкой очистки воздуха (В-0,4) на оценку коэффициента проскока. Результаты проверки фиксируются в специальных журналах. Выдача проверенных костюмов и фильтров производится под личные росписи лиц, получающих их для работы. Непосредственно перед заходом в зону каждый исполнитель визуально проверяет полученный пневмокостюм на целостность и делает об этом запись в соответствующем журнале.

Правила работы, порядок надевания-снятия пневмокостюмов регламентируются в соответствующих рабочих инструкциях. По окончании работы пневмокостюмы подвергаются обработке в дезинфицирующем душе и далее термохимической обработке в парогазовых передаточных камерах с последующей их проверкой на целостность.

Защитная одежда для проведения зоолого-паразитологических работ в полевых условиях

Для проведения полевых работ с дикими позвоночными и беспозвоночными животными сотрудники должны быть обеспечены соответствующей сезону защитной одеждой.

В теплое время года — хлопчатобумажным рабочим костюмом (брюки и куртка, защитный противоэнцефалитный костюм, комбинированный костюм по защите от гнуса и клещей), сапогами кирзовыми и резиновыми болотными при работе в пойменных биотопах, брезентовыми рукавицами и головным убором. На одного работника должно быть по два комплекта костюма и три пары хлопчатобумажных перчаток.

В холодное время года — хлопчатобумажным костюмом, телогрейкой или утепленной курткой с непромокаемым верхом, ватными брюками, сапогами кирзовыми или валенками с калошами, брезентовыми и теплыми рукавицами, головным убором (типа шапки-ушанки или фуражки с наушниками).

Для работ по истреблению грызунов все рабочие должны быть обеспечены комбинезоном, носками или чулками, обувью (сапоги) и рукавицами.

1. Бактериологический контроль работы стерилизаторов проводят после монтажа и ремонта аппаратуры, а также в процессе его эксплуатации (плановый — 2 раза в год и при получении неудовлетворительных результатов контроля).

Контроль эффективности работы стерилизаторов осуществляют бактериологическим методом, используя биотесты на основании гибели спор тест-культуры.

Биотесты представляют собой флаконы из трубки стеклянной для лекарственных средств ФИ/1-5 НС 1 ТУ 64-0709-10-88 (инсулиновые флаконы) или чашечки из алюминиевой фольги (диск размером 14 мм с луночкой-вдавлением от неоточенного края карандаша), содержащие высушенные споры тест-культуры Bac. stearothermophilus BKM B-718, помещенные в пакеты из упаковочной бумаги (ОСТ 42-21-2-85). Упакованные тесты нумеруют и размещают в контрольные точки паровых стерилизаторов (5 — 10 тестов). По окончании стерилизации биотесты подвергают бактериологическому исследованию.

2. Штамм Bac. stearothermophilus BKM B-718 — подвижная термофильная палочка, по Граму окрашивается положительно, культивируется при температуре 55 \pm 1 °C, исключающей развитие других широко распространенных микроорганизмов. Споры овальные, расположенные центрально. На мясопептонном бульоне (pH 7,3 \pm 0,1) через 24 часа образует помутнение среды, на мясопептонном агаре (pH 7,3 \pm 0,1) — слабо выпуклые колонии диаметром 2 — 4 мм с ровным краем. Штамм не патогенен для человека и животных. Штамм получен из Всесоюзной коллекции микроорганизмов института биохимии и физиологии микроорганизмов, хранится в музее культур НИИ дезинфектологии (117246, г. Москва, Научный проезд, 18).

Приготовление биотеста

В ампулу с лиофилизированной культурой вносят 0,2 мл стерильной водопроводной воды и оставляют на 30 мин. при комнатной температуре.

Одну-две капли культуры засевают в 2 пробирки с бульоном (МПБ, Хоттингера, бульон питательный сухой) с 0,5% глюкозы. Суточную бульонную культуру засевают в пробирки на скошенный агар (Хоттингера, мясопептонный, сухой питательный). Для получения спор культуру, выращенную на твердой питательной среде, смывают 5 мл стерильной водопроводной воды и переносят во флаконы со скошенным картофельно-пептонным агаром. Взвесь покачиванием флакона равномерно распределяют по поверхности среды, инкубируют при 55 °C в течение 10 — 12 суток в наклонном положении агаром вверх. Для создания достаточной влажности в термостат помещают открытые емкости с водой. На 7, 10 и 12 сутки культуру проверяют на интенсивность спорообразования. Достаточным количеством считают 80 — 90% спор в поле зрения. Культуру смывают стерильной дистиллированной водой. В целях освобождения от вегетативных клеток суспензию прогревают на водяной бане при температуре 65 — 70 °C течение 30 мин., центрифугируют трехкратно с частотой вращения 33, 33с-1 (2000 об./мин.) по 15 мин., промывая осадок стерильной дистиллированной водой после каждого центрифугирования. Отмытые споры суспендируют в стерильной дистиллированной воде в соотношении 1:1 по объему. Суспензию спор хранят в холодильнике при температуре 4 °C в стерильных пробирках, закрытых ватно-марлевыми пробками с резиновыми колпачками (срок хранения 2 года).

Чистоту культуры на всех этапах культивирования контролируют высевом на агаровые пластинки.

Для определения титра жизнеспособных спор 0,1 мл исходной суспензии десятикратно разводят до 10^{- 7} стерильной дистиллированной водой, высевая на 3 агаровые пластинки по 0,1 мл ориентировочно из 10^{5} — 10^{7} (предел разведения зависит от титра полученных спор). Посевы инкубируют в течение 48 часов, проводят подсчет выросших колоний. Титр жизнеспособных спор в исходной суспензии определяют как среднее арифметическое число колоний с учетом разведения исходной суспензии и объема пробы для посева.

Пример расчетов. Предположим, что при посеве на три чашки Петри с агаром суспензии в разведении 1:100 000 ( 10^{5} ), подсчитано 140, 110 и 134 колонии. Аналогичные высевы из разведений 10^{6} привели к образованию 12, 14 и 16 колоний; из 10^{7} — 5, 3 и 7 колоний. Вычисляем общее число колоний, а затем среднее количество колоний для каждого разведения 128, 14 и 5.

Из расчета посевной дозы (0,1 мл на каждую чашку) вычисляем титр жизнеспособных спор в 1 мл исходной суспензии с учетом разведения, далее находим среднее арифметическое число колоний:

128 x 10 x 10^{5} = 12,8 x 10^{7} ;

14 х 10 х 10^{6} = 14,0 х 10^{7} ;

5 x 10 x 10^{7} = 50,0 x 10^{7} .

Таким образом, титр исходной суспензии составит:

(12 x 8 + 14,0 + 50,0) х 10^{7} : 3 = 2,5 х 10^{8} спор в 1 мл.

Исходная суспензия должна содержать не менее 2,5 х 10^{7} — 2,5 х 10^{8} спор в 1 мл. Споры в количестве 5 х 10^{5} — 5 х 10^{6} вносят из исходной суспензии с помощью дозатора пипеточного (ТУ 64-1-3329-81) в 0,02 мл в носители (стерильные инсулиновые флакончики с ватно-марлевой пробкой или чашечки из алюминиевой фольги, разложенные в чашки Петри), подсушивают в термостате при 37 °C или в эксикаторе над осушителем (силикагель, хлористый кальций) при комнатной температуре в течение 24 часов.

Для определения фактической обсемененности исследуют не менее трех биотестов от каждой группы. Во флаконы (чашечки) вносят по 1,0 мл стерильной дистиллированной воды (чашечки из алюминиевой фольги отмывают в широкогорлых пробирках с бусами в 10 мл) и встряхивают в течение 10 мин. на аппарате для встряхивания жидкостей с последующим высевом на 3 агаровые пластинки по 0,1 мл суспензии из трех последовательных десятикратных разведений.

3. Определение устойчивости спор тест-культур к действию водяного насыщенного пара под избыточным давлением проводят при температуре 120 \pm 2 °C.

Биотесты в упаковочной бумаге помещают в стерилизационной коробке в камеру парового стерилизатора. После набора давления в водопаровой камере 0,11 \pm 0,01 МПа (1,1 \pm 0,1 кгс/см2) проводят продувку парового стерилизатора (вытеснение воздуха паром из камеры парового стерилизатора) в течение 10 мин. при открытом спускном кране и давлении в стерилизационной камере от 0,01 до 0,02 МПа (от 0,1 до 0,2 кгс/см2). После продувки доводят давление пара в стерилизационной камере до 0,11 \pm 0,01 МПа (1,1 \pm 0,1 кгс/см2), температура 120 \pm 2 °C и через 5 мин. (времени выживания спор тест-культуры) с момента установления давления спускают пар. Для уменьшения времени воздействия пара до и после экспозиции подъем давления проводят максимум в течение 8 мин., спуск — в течение 3 мин.

Аналогичное исследование проводят в течение 15 мин. времени выдержки (время гибели спор тест-культуры). Контроль температуры осуществляют максимальными термометрами. По окончании времени выдержки биотесты вынимают из стерилизатора и проводят бактериологическое исследование.

Партию биотестов считают годными для использования, если показатели устойчивости спор тест-культуры соответствуют вышеописанным требованиям.

4. Для определения эффективности работы стерилизатора в обеззараженные биотесты и контрольный тест (без стерилизации) стерильно вносят по 5 мл питательной среды, инкубируют при 55 °C в течение 7 суток при ежедневном просмотре посевов, делая высевы на агаровые пластинки из проросших емкостей.

При использовании полусинтетической среды с индикатором феноловым красным рост тест-культуры определяют по изменению красного цвета среды (pH 7,7 \pm 0,1) на желто-оранжевый (pH 6,7 \pm 0,1) за счет разложения глюкозы с образованием кислоты.

В целях исключения ложного отрицательного результата (при наличии роста тест-культуры отсутствует изменение цвета питательной среды) флаконы (пробирки) должны быть плотно закрыты стерильными резиновыми пробками (N 7,5; 12,5).

Отсутствие роста тест-культуры указывает на эффективность работы стерилизатора. Рост других культур микроорганизмов относят за счет вторичного обсеменения.

При наличии роста тест-штаммов проводится повторный контроль на удвоенном количестве биотестов. Если и при повторной проверке тест-культуры не инактивируются, осуществляют тщательный контроль технического состояния аппарата и контрольно-измерительных приборов. При отсутствии роста тест-культур в контрольном биотесте (не подвергшемся стерилизации) устанавливается причина (нежизнеспособность тест-культуры, несоблюдение методики приготовления биотестов, питательных сред, условий культивирования).

5. Для спорообразования используют:

• картофельно-пептонный агар (пептон — 5,0, мел — 1,0, агар — 25,0, картофельная вода — 1 000 мл), pH 7,1 \pm 0,1. Сырой картофель (200 г очищенного картофеля на 1 л водопроводной воды) тщательно моют, очищают от кожуры и глазков, нарезают мелкими ломтиками, заливают водопроводной водой и кипятят 30 мин. после закипания (молодой картофель употреблять нельзя). Отвар отстаивают и фильтруют в холодном состоянии через ватно-марлевый фильтр. Доводят объем фильтрата до первоначального. Устанавливают pH 7,1 \pm 0,1. Добавляют пептон и агар. Нагревают, помешивая до полного расплавления агара, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, после чего добавляют мел. Разливают по флаконам, стерилизуют при 120 °C в течение 30 мин. После стерилизации среду во флаконах скашивают;
• пшеничный агар (пшеничная крупа «Артек» или «Полтавская» — 500,0, агар — 25,0, дистиллированная вода — 1 000 мл), pH — 7,3 \pm 0,1.

Пшеничную крупу «Артек» («Полтавская») заливают дистиллированной водой. Через 12 часов настой аккуратно сливают, не выжимая, доводят до первоначального объема, добавляют агар и растапливают на водяной бане или в автоклаве (текучим паром 1 час). Остывший агар выкладывают на противень и срезают осадок. Агар растапливают на водяной бане, постоянно помешивая. Устанавливают pH 7,3 \pm 0,1. Разливают во флаконы. Стерилизуют текучим паром по 1 часу в течение 3 суток. После стерилизации среду скашивают.

6. Для контроля используют бульон Хоттингера pH 7,3 \pm 0,1, агар Хоттингера pH 7,3 \pm 0,1, питательный бульон сухой pH 7,1 \pm 0,1 (Дагестанский НИИ питательных сред), питательный агар сухой pH 7,3 \pm 0,1 (Дагестанский НИИ питательных сред), среду питательную для контроля стерильности сухую (предприятие Центрального НИИВС им. И.М. Мечникова) pH 7,0 \pm 0,1, бульон из перевара кровяных сгустков, полусинтетическую среду с индикатором феноловым красным pH 7,7 \pm 0,1 (аммоний фосфорно-кислый однозамещенный — NH4H2PO4 — 1,0 г; магний серно-кислый — MgSO4 — 0,2 г, калий хлористый — KCl — 0,2 г, глюкоза — 5,0 г, феноловый красный — 0,02 г, бульон Хоттингера с содержанием аминного азота — 140 — 160 мг — 200 мл, дистиллированная вода — 800 мл, pH 7,7 \pm 0,1. Компоненты смешивают и растворяют при нагревании на водяной бане, доводят pH до 7,7 \pm 0,1, разливают во флаконы, стерилизуют при 110 °C в течение 30 мин.

Приложение 8

(справочное)

Химические тесты для контроля температурных параметров режима работы паровых и воздушных стерилизаторов

и воздушных стерилизаторов» № 15/6-5 от 28.02.91)

параметров режимов работы воздушных стерилизаторов <1>

Химические индикаторы в паровом стерилизаторе размещают в каждой обеззараживаемой емкости и два — в самой камере, в воздушных стерилизаторах — от 5 до 15 в зависимости от емкости камеры.

Вместо химических тестов могут быть использованы термовременные индикаторы (ТВИ), контролирующие температуру и время стерилизации (ТВИ ИС-160 и ИС-180) при воздушной стерилизации, а при паровой стерилизации (ИС-120 и ИС-132) и наличия пара. Индикаторы представляют собой полоски длиной 2 — 3 см, отрываемые от бумажной ленты с нанесенным на нее индикаторным слоем, цвет которого необратимо меняется только при соблюдении режимов стерилизации, утвержденных ГОСТ 22649-83 и ОСТ 42-21-2-85.

(рекомендуемое)

1. Замену фильтров тонкой очистки типа ФТО приточных и вытяжных систем проводят в процессе планово-предупредительных ремонтов при достижении предельно допустимого перепада давлений, установленного проектом или службой главного инженера организации, исходя из требований непревышения (исключения возможности превышения):

• предельно допустимого сопротивления фильтрующих элементов по условиям прочности фильтрующего материала для предотвращения его повреждения, равного 150 мм р. ст. 1 500 Па);
• предельного сопротивления фильтров по условиям поддержания предусмотренных проектом расходов воздуха.

Замена фильтров тонкой очистки других типов осуществляется при увеличении исходного сопротивления фильтра при номинальной производительности в 2 раза.

Внеплановые замены фильтров тонкой очистки осуществляются в случаях превышения нормативного значения коэффициентов проницаемости.

2. Перед демонтажем проводят предварительную дезинфекцию фильтра и магистрального воздуховода парами формалина либо аэрозольным способом (прилож. 1).

3. Распыление дезинфектанта осуществляется при работающей вентиляции. По окончании распыления вентиляция выключается и по истечении времени экспозиции фильтр может быть снят.

4. Работу по демонтажу фильтра проводят в костюме IV типа с использованием резиновых перчаток (под рабочими рукавицами) и респиратора.

5. Снятый фильтр помещают в крафт-мешок или другую упаковку и переносят для автоклавирования или сжигания установленным порядком.

6. Работы по замене фильтра осуществляются техническим персоналом под наблюдением сотрудника подразделения, отвечающего за соблюдение требований биологической безопасности.

7. Перед запуском в эксплуатацию фильтр должен быть проверен на проскок (по масляному туману, с использованием биологического аэрозоля или другим способом). В процессе эксплуатации фильтр проверяется на проскок.

8. Контроль эффективности фильтров тонкой очистки воздуха проводится регулярно в соответствии с графиком организации. Рекомендуемая периодичность проверки фильтров ФТО:

• фильтров технологических систем и первых каскадов (при наличии двух и более каскадов) вытяжных систем — через каждые 3 месяца непрерывной работы;
• фильтров приточных систем и фильтров всех каскадов вытяжных систем — через каждые 6 месяцев непрерывной работы;
• при циклической работе — не реже одного раза в год.

9. Для создания аэрозоля в качестве модели используют культуры B. prodigiosum (S. marcescens, Chromobacterum prodigiosum) или E. coli, а также специальные устройства-распылители. В целях минимального рассеивания бактериального аэрозоля в окружающую среду и направления факела аэрозоля в отверстие воздуховода перед фильтром применяют специальную насадку. Для определения счетной концентрации и фракционно-дисперсного состава биологического аэрозоля используют импактор микробиологический БП-50 или другие приборы аналогичного типа.

10. Для оценки защитной эффективности ФТО проводится следующее:

10.1. Отбор проб аэрозоля осуществляют двумя импакторами одновременно до прохождения фильтра (контроль) и после прохождения его (опыт). По результатам роста тест-штамма на агаровых пластинках до и после прохождения фильтра судят об его защитной эффективности. Используют односуточную культуру тест-штамма в концентрации 5 x 10^{8} — 1 x 10^{9} м. к. в мл. Для проведения опыта приборы монтируют в следующей последовательности: насадку устанавливают на отверстии воздуховода перед фильтром с помощью болтов, шланги компрессора надевают на конец форсунки распылителя. К входному и выходному отверстиям воздуховода после фильтра присоединяют через шланги два микробиологических импактора БП-50, подключают к сети компрессор и оба аспиратора (пылесос бытовой). Перед началом опыта проверяют работу компрессора и скорость движения воздуха через импактор. Опыт проводят при работающей вентиляции.

10.2. В колбу распылителя заливают приготовленную взвесь тест-штамма, после чего вставляют форсунку. Устанавливают распылитель на уровне отверстия воздуховода, включают компрессор и оба импактора. Соблюдаются следующие условия: скорость распыления по жидкости Q_{\text{ж}} = 1 мл/мин., скорость распыления по воздуху V = 50 л/мин., время распыления — 10 мин., средний диаметр аэрозольных частиц d_{\text{ср}} = 2,4 мкм (lg d = 0,389), максимальный диаметр частиц d_{max} = 7 мкм при логарифмически нормальном распределении (среднее квадратичное отклонение lg d = 0,229); скорость отбора проб аэрозоля импактором БП-50 V = 50 л/мин., время отбора проб аэрозоля — 10 мин. По истечении срока отключают сначала компрессор, а затем импакторы. Чашки Петри вынимают из импакторов и инкубируют при 37 °C в течение 2 суток. После проведения опыта установку дезинфицируют.

10.3. Допускается использование других методик и процедур проведения проверки ФТО при условии соблюдения основных технических параметров опыта.

11. Учет результатов проводят через 24 и 48 часов. В популяции B. prodigiosum наряду с типично окрашенными колониями могут появляться различные по цвету варианты: розовые, слабо розовые, с розовым центром. Об эффективности задержания исследуемым фильтром аэрозольных частиц судят по отношению числа аэрозольных частиц, осевших до фильтра и после него. Эффективность фильтра выражают в процентах. При исправных фильтрах не должно быть роста колоний тест-культуры на чашках после фильтра, в то время как до фильтра (для обеспечения достоверности испытаний) их должно быть не менее 200 колоний на чашках (положительный контроль).

12. Проверка боксов биологической безопасности II и III классов проводится при установке их в лаборатории, ежегодно в процессе эксплуатации, а также после каждого перемещения бокса.

Схема контроля фильтра при работающей вентиляционной системе

Обозначения: 1. Фильтр Д-13 (Д-15); 2. Воздуховод вентиляционной системы; 3. Штуцер для отбора пробы; 4. Насадка распылителя; 5. Распылитель; 6. Импактор ДП-50; 7. Компрессор; 8. Аспиратор отбора пробы; 9. Соединительные шланги; -> Направление воздушного потока.

1. Юридические лица независимо от организационно-правовых форм и форм собственности и индивидуальные предприниматели, проводящие работу с микроорганизмами I — II групп патогенности, должны проводить исследование сточных вод на наличие в них микроорганизмов, используемых в работе.

2. Отбор сточных вод необходимо проводить из всех колодцев канализационной системы организации перед ее выходом в общий коллектор.

3. Отбор сточных вод для исследования проводят одним из двух способов:

• тампонами, приготовленными из марлевых салфеток размером 10 x 15 см в 10 — 15 слоев, которые закрепляют у места взятия воды и через сутки, поместив в стерильную емкость, доставляют в лабораторию;
• емкостями объемом не менее 1 л.

При необходимости проводят дехлорирование сточных вод добавлением 2,0 мл 1,5% раствора серноватисто-кислого натрия (гипосульфита), простерилизованного в автоклаве, на 500 мл сточных вод.

4. Кратность отбора проб определяется руководителем организации в зависимости от вида возбудителя, характера и объемов проводимых работ, по согласованию с территориальными учреждениями государственной санитарно-эпидемиологической службы.

5. При наличии в организации локальных очистных сооружений необходимо проводить определение остаточной концентрации активного вещества применяемого дезинфекционного средства в сточных водах перед их выходом в общий коллектор.

6. Отбор сточных вод и их лабораторное исследование проводят в соответствии с нормативно-методическими документами, при соблюдении требований биологической безопасности.

В каждой организации должны быть разработаны рабочие инструкции по исследованию сточных вод с учетом местных условий и особенностей.

7. Результаты исследований фиксируют в специальном журнале, за подписью лиц, проводивших исследование.

1. Комиссия по контролю соблюдения требований биологической безопасности в организации (далее — комиссия) является исполнительно-консультативным органом, контролирующим порядок проведения работы с биологическим материалом в диагностических, научно-исследовательских и производственных лабораториях.

2. Комиссия создается в организациях, на базе которых проводятся любые виды работы (диагностические, исследовательские, производственные) с ПБА.

3. Комиссия в составе не менее 3 — 5 человек, компетентных в вопросах безопасности работы с ПБА, назначается приказом по организации сроком на 5 лет.

Председателем комиссии назначается заместитель руководителя организации по эпидемиологическим вопросам (науке) или специалист, имеющий соответствующие знания и опыт работы.

4. В своей деятельности комиссия руководствуется настоящими санитарными правилами, другими нормативными документами по обеспечению биологической безопасности и указаниями руководителя организации.

5. Комиссия по административной линии подчиняется руководителю организации, ответственному за состояние безопасности работы с биологическим материалом.

6. В целях обеспечения безопасности работы с биологическим материалом при проведении диагностических, исследовательских и производственных работ комиссия решает следующие задачи:

• организация и проведение постоянного контроля соблюдения регламентированного порядка обеспечения биологической безопасности в организации;
• организация и проведение комплекса мероприятий, направленных на предупреждение аварийных ситуаций и ликвидацию их последствий;
• контроль подготовленности персонала к работе с ПБА и организация наблюдения за состоянием здоровья;
• осуществление контроля выполнения требований соответствующих нормативных документов, а также распоряжений руководителя организации и предложений комиссии организации;
• проведение анализа состояния биологической безопасности и разработка комплекса мер по ее совершенствованию;
• подготовка отчетных и других документов по вопросам биологической безопасности.

7. В соответствии с возложенными на нее задачами комиссия проводит следующий комплекс мероприятий:

• осуществляет плановый и периодически внеплановый контроль выполнения регламентированного порядка обеспечения биологической безопасности;
• осуществляет контроль своевременной диспансеризации персонала, контролирует регламентированный порядок иммунопрофилактики, ведет учет лиц с повышенной чувствительностью к антибиотикам и имеющих противопоказания к вакцинации;
• в случае аварии при работе с биологическим материалом разрабатывает и представляет руководителю организации план мероприятий по ликвидации ее последствий;
• проводит анализ установленных нарушений правил безопасности, предпосылок к этому, причин аварий и представляет руководителю организации план мероприятий по повышению эффективности системы биологической безопасности;
• оформляет необходимые документы для получения (продления) разрешения на проведение работы с ПБА;
• проводит проверку знаний по вопросам обеспечения биологической безопасности персонала, работающего с ПБА;
• контролирует установленный порядок выезда сотрудников, выдает и принимает обсервационные удостоверения (при отсутствии врача изолятора);
• готовит отчет о работе комиссии за год и представляет его в установленном порядке к 01.02 следующего за отчетным года;
• имеет план работы, утвержденный руководителем организации, нормативные и другие документы, необходимость которых определяется ее задачами и функциями.

8. В целях эффективной реализации своих задач комиссия имеет следующие права:

• требовать от руководителей подразделений и отдельных лиц безусловного выполнения правил биологической безопасности, а также ходатайствовать перед руководителем организации об устранении имеющихся нарушений;
• проводить самостоятельно или с привлечением других квалифицированных специалистов плановые и внеплановые проверки соблюдения правил биологической безопасности в организации;
• ходатайствовать перед руководителем организации о приостановлении работы с ПБА в случае невозможности выполнения правил биологической безопасности или их систематического нарушения, а также о приостановлении или лишении допуска к работе с биологическим материалом отдельных лиц;
• возбуждать мотивированное ходатайство перед учреждением, выдавшим разрешение, о приостановлении использования или запрещении внедрения в практику новых лабораторных методик, видов оборудования, дезинфектантов и т.п., не обеспечивающих необходимого уровня биологической безопасности;
• рассматривать документы и давать заключения;
• заслушивать на заседании комиссии руководителей подразделений, сотрудников организации.

УДОСТОВЕРЕНИЕ

(Ф., И., О.) _________________________________________________, занимающему должность ___________________________________, в соответствии с п. ________ санитарных правил «Безопасность работы с микроорганизмами I — II групп патогенности», утвержденных _________, разрешен выезд в _________________ с _______________ 20 г.

Подпись руководителя организации

Печать

Контроль качества мертиолята натрия

Мертиолят (тиомерсаль) — белый или кремоватый порошок, хорошо растворим в воде. При 20 °C 1 часть порошка должна без остатка раствориться в 1 части дистиллированной воды, а также в 30 частях 95°-ного этилового спирта. Раствор бесцветный или светло-желтый. Мертиолят почти не растворим в бензоле и эфире. Свежеприготовленный 1%-ный раствор мертиолята должен иметь pH 6,0 — 8,0.

Для проверки препарата к 0,05 г порошка добавляют 5 мл дистиллированной воды. После добавления к раствору 1 мл 10%-ного раствора азотно-кислого серебра должен выпасть белый осадок. Если к аналогичному раствору мертиолата добавить 1 мл 10%-ного раствора сульфита меди, то должен появиться осадок зеленого цвета.

Для контроля на ртутные соли готовят раствор из 0,1 г порошка в 5 мл дистиллированной воды. После добавления к раствору мертиолята 1,0 мл свежеприготовленного раствора сульфида натрия выпадает белый осадок. Последний не должен менять цвета в течение 30 мин. в темном месте.

Для количественного контроля 0,3 г препарата растворяют в 10 мл воды, добавляют 1,5 г растертого перманганата калия и хорошо перемешивают. Через 5 мин. в колбу осторожно добавляют при постоянном перемешивании по каплям 5 мл концентрированной серной кислоты. Через 5 — 10 мин. выделяющийся осадок растворяют при постепенном добавлении 4 — 8 мл 3%-ного раствора перекиси водорода. К обесцвеченному раствору прибавляют по каплям 5% раствор перманганата калия до не исчезающего розового окрашивания (разложение перекиси водорода). Раствор вновь обесцвечивают добавлением по каплям 4%-ного раствора щавелевой кислоты. Полученный раствор после добавления 5 мл 10%-ного раствора железоаммиачных квасцов медленно титруют 0,1 н раствором роданида аммония до изменения окраски; 1 мл 0,1 н раствора роданида аммония соответствует 0,01003 г ртути или 0,02024 г мертиолята.

Контроль качества формалина

Полноценный формалин должен содержать 37 — 40% формальдегида. Такой раствор формальдегида учитывают как цельный формалин. Обычно коммерческий препарат содержит значительно меньше формальдегида. Поэтому необходимо произвести соответствующий перерасчет при изготовлении его рабочих растворов. Определение концентрации формалина проводят ареометрически при 15 °C. В цилиндр наливают формалин, доведенный до 15 °C, и опускают ареометр, который определяет плотность формалина. Исходя из плотности, учитывают содержание формальдегида по следующей шкале:

1,002 = 1%; 1,004 = 5%; 1,028 = 10%; 1,043 = 15%;

1,056 = 20%;

1,071 = 25%; 1,085 = 30%; 1,090 = 32%; 1,096 = 34%;

1,102 = 36%;

1,106 = 38%; 1,111 = 40%.

В последующем при изготовлении растворов формалина учитывают содержание формальдегида следующим образом. Например, необходимо приготовить 1%-ный раствор формалина, а имеющийся у нас формалин содержит только 25% формальдегида. В этом случае на 100 мл 0,85%-ного раствора хлористого натрия берут не 1 мл формалина, а 1,6 мл и т.д.

Наиболее целесообразно антибактериальную активность формалина определить следующим образом. В приготовленную взвесь органов нормального животного, например белой мыши, внести взвесь, содержащую в 1 мл 1 млрд живых бактерий ЕВ, добавить формалин из расчета содержания 1% полноценного формалина, перемешать и оставить при комнатной температуре. Через 2 — 4 часа провести контрольный высев на пластинку с агаром и поставить при 28 °C. При отсутствии роста на пластинке через двое суток инкубации формалин можно признать пригодным к применению.

Метод определения неспецифического действия формалина на антиген может быть осуществлен путем постановки РНАт с материалом, прогретым при 56 °C в течение 30 мин.

Для установления неспецифического действия формалина необходимо добавить его в концентрации 1 — 2% к культуре ЕВ, выращенной при 37 °C, с концентрацией 1 млрд м. к. в 1 мл, выдержать взвесь не менее 4 часов, затем развести до концентрации 1 млн м. к. в 1 мл и с этой взвесью поставить РПГА с чумным антительным диагностикумом.

1 — биопробная

2 — вскрывочная

3 — полевая комната

4 — бактериологическая

5 — предбокс

6 — комната для снятия п/ч костюма

7 — комната для надевания п/ч костюма

8 — комната для загрузки материала в автоклав

9 — комната обеззараживания инвентаря для содержания б/п животных

10 — комната для разгрузки автоклава

11 — комната для разборки обеззараженного материала (моечная)

<pre class="legal-pre">┌─┬─┐                            ┌─┐
│ │ │ - окно (дверь) для приема  │X│ - шлюз (передаточное окно)
└─┴─┘   полевого материала       └─┘</pre>
┌───┐
│   │ - проходной автоклав
└───┘