---
title: "\"Методика определения токсического действия вытяжек из материалов и изделий на половых клетках крупного рогатого скота\""
issuer: "Министерство здравоохранения СССР"
status: действует
canonical: "https://bukva.ai/docs/metodika-opredeleniya-toksicheskogo-deystviya-minzdrav-sssr-ministerstvo"
---

## "Методика определения токсического действия вытяжек из материалов и изделий на половых клетках крупного рогатого скота"

# "Методика определения токсического действия вытяжек из материалов и изделий на половых клетках крупного рогатого скота"

(утв. Минздравом СССР 27.11.1985)


<div align="right">

<a id="p100001"></a>Утверждена<br>
Начальником Управления<br>
по внедрению новых<br>
лекарственных средств<br>
и медицинской техники

</div>

<div align="center">

**Э.А.БАБАЯНОМ**

</div>

27 ноября 1985 года

<a id="p100002"></a>**МЕТОДИКА**
**ОПРЕДЕЛЕНИЯ ТОКСИЧЕСКОГО ДЕЙСТВИЯ ВЫТЯЖЕК ИЗ МАТЕРИАЛОВ**

<div align="center">

**И ИЗДЕЛИЙ НА ПОЛОВЫХ КЛЕТКАХ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА**

</div>


<a id="p100003"></a>В связи со все увеличивающимся объемом разработок новых материалов и изделий особое значение приобретает разработка экспресс-методов на биологических тест-объектах и тест-системах. Эти методы можно применять в следующих случаях: а) при отборе оптимальных лабораторных образцов материалов и изделий на первом этапе их разработки; б) при оценке различных технологий переработки материалов в изделие; в) при выборе оптимального способа стерилизации изделия; г) при незначительном изменении рецептуры материала; д) при изменении сферы применения хорошо изученного материала.


## 1. <a id="p100004"></a>ПРИНЦИП МЕТОДИКИ


<a id="p100005"></a>Визуально под микроскопом наблюдают двигательную активность сперматозоидов быка, подвергавшихся воздействию водных экстрактов из полимерных материалов, до полного прекращения прямолинейно-поступательного движения.


## 2. <a id="p100006"></a>ТЕСТ-ОБЪЕКТ


<a id="p100007"></a>В качестве биологического тест-объекта экспресс-метода используется замороженная в парах жидкого азота гранулированная сперма быка. Сперму замораживают в виде гранул весом 0,1 - 0,2 г. При низкотемпературной консервации обменные процессы в сперме полностью приостанавливаются. Замороженную сперму можно получать на станциях искусственного осеменения или в Республиканском банке семени Госагропрома СССР.


## 3. <a id="p100008"></a>ЭТАПЫ ВЫПОЛНЕНИЯ



### <a id="p100009"></a>3.1. Приготовление опытной и контрольной проб


<a id="p100010"></a>Для определения степени токсичности вытяжку необходимо сравнивать с контрольным раствором. Контрольной пробой служит глюкозо-цитратная среда (состав среды: глюкоза - 4 г, цитрат натрия - 0,58 г, вода дистиллированная до 100 мл). Опытным образцом является водный экстракт из полимерного материала или изделие, приготовленное в соответствии с научно-методическими документами для данного вида изделий. Изотонию достигают путем добавления сухих реактивов глюкозы (4 г) и цитрата натрия (0,58 г) на 100 мл вытяжки.


### <a id="p100011"></a>3.2. Приготовление пробы спермы


<a id="p100012"></a>Перед оттаиванием замороженной спермы отмеривают пипеткой в пробирку 0,5 мл контрольной пробы. Четыре пробирки с глюкозо-цитратной средой ставят в водяную баню при температуре +40 °C. Охлажденным до температуры жидкого азота длинным анатомическим пинцетом извлекают из сосуда Дьюара гранулу спермы и быстро опускают в нагретый раствор. В одной пробирке оттаивают только одну гранулу спермы. Сразу после оттаивания содержимое пробирок сливают в одну колбочку и тщательно перемешивают (маточный раствор).


### <a id="p100013"></a>3.3. Ход определения


<a id="p100014"></a>Из маточного раствора оттаянной разбавленной спермы добавляют 0,3 мл суспензии сперматозоидов в 1 мл опытного образца. Аналогично поступают и с контрольной пробой. Конечная концентрация сперматозоидов в образцах - 6 - 7 млн/мл. Все пробирки с опытными и контрольными растворами должны быть помещены в водяную баню при температуре + 40 °C в течение всего эксперимента.


### <a id="p100015"></a>3.4. Оценка результатов


<a id="p100016"></a>Главным критерием оценки функционального состояния сперматозоидов принимается длительность их движения. Оценка подвижности производится микроскопированием капли спермы из опытных и контрольных проб каждые 10 - 15 минут. Предметный столик микроскопа должен быть постоянно нагрет до температуры +40 °C. Время подвижности сперматозоидов определяется как среднее между двумя последними измерениями, из которых первое определение регистрирует наличие хотя бы одной - двух поступательно-подвижных клеток, а второе - полное прекращение поступательного движения.
<a id="p100017"></a>Степень токсичности испытуемого раствора определяется отношением величин времени подвижности сперматозоидов в опыте и контроле:

                             опыт
<a id="p100018"></a>                        Т = ------ x 100,
                            контр.

<a id="p100019"></a>где:

<div align="center">

<a id="p100020"></a>Т - степень токсичности;<br>
<a id="p100021"></a>опыт - время подвижности сперматозоидов в испытуемом растворе;<br>
<a id="p100022"></a>контр. - время подвижности сперматозоидов в контрольном растворе.<br>
<a id="p100023"></a>Результаты опытов обрабатываются статистическим методом парных сравнений по Стьюденту.

</div>




<a id="p100024"></a>

---
