Методические указания по лабораторным исследованиям на гистомоноз (тифлогепатит) птиц
Актуально на 11.11.2026.
Как цитировать: "Методические указания по лабораторным исследованиям на гистомоноз (тифлогепатит) птиц". https://bukva.ai/docs/metodicheskie-ukazaniya-po-laboratornym-gosagroprom-sssr-6
(одобрены Госагропромом СССР 29.12.1985)
Примечание
Документ включен в Перечень нормативной документации, разрешенной для использования в государственных ветеринарных лабораториях при диагностике болезней животных, рыб, пчел, а также контроля безопасности сырья животного и растительного происхождения (утв. Россельхознадзором 30.07.2009 № 02-03-48/563).
1.1. Гистомоноз — протозойная болезнь птиц, вызывающая Histomonas meleagridis. Протекает остро и хронически. Болеют в основном индюшата и цыплята 3 — 4-месячного возраста.
1.2. Диагноз на гистомоноз ставят на основании результатов микроскопического исследования с учетом эпизоотологических, клинических и патологоанатомических данных.
1.3. Для исследования в лабораторию доставляют 3 — 4 больных живых птиц.
1.4. Лабораторные исследования на гистомоноз птиц включают обнаружение гистомонад в патологическом материале методом световой микроскопии и их дифференциацию.
2. Микроскопическое исследование.
2.1. Материал для исследования берут сразу после убоя птицы. Со слизистой оболочки синуса делают соскоб. Слепые кишки, соскоб и печень помещают в физиологический раствор 38 — 40 °C и pH 7,2 — 7,4.
2.2. Из содержимого слепых кишок готовят раздавленные капли. Каплю содержимого слепых кишок помещают на предметное стекло, накрывают покровным и исследуют в раздавленной капле под малым, а затем под средним увеличением микроскопа в затемненном поле зрения. Живые гистомонады совершают вращательные или толчкообразные движения.
2.3. Со слизистой оболочки слепых кишок на границе пораженной и здоровой тканей делают соскоб.
2.4. Из соскобов слепых кишок, синуса и пораженных участков печени готовят 3 — 4 тонких мазка.
2.4.1. Для дифференциации к капле соскоба добавляют каплю свежей неконсервированной крови кролика, смешивают, из капли смеси готовят тонкий мазок.
2.5. Мазки высушивают на воздухе, фиксируют метиловым спиртом в течение 3 — 5 мин или этиловым — 20 — 25 мин, окрашивают по Романовскому в течение 40 — 50 мин (1 — 2 капли красителя азур-эозина на 1 мл дистиллированной воды, pH 7,0 — 7,2, температурой 18 — 20 °C), промывают дистиллированной водой, высушивают и исследуют под иммерсионной системой микроскопа.
2.6. При микроскопии необходимо учитывать, что в окрашенных мазках встречаются жгутиковые и безжгутиковые формы гистомонад. Первые — продолговатые или овальные, бывают с одним, реже — с 3 — 4 жгутиками, вторые — овальные или круглые. Цитоплазма гистомонад окрашивается в голубой цвет, ядро — в темно-красный, жгутики — в розовый. Ядро гистомонад чаще расположено эксцентрично, имеет неправильную округлую или подковообразную форму.
3. Гистомонад необходимо дифференцировать от трихомонад и эймерий. Дифференциация основана на различии в морфологии возбудителей и их локализации. При определении возбудителя пользуются следующей таблицей.
4. Результат исследования считают положительным при обнаружении в мазках гистомонад.
5. Срок исследования — 1 - 2 дня.