Методические указания по комплексной диспансеризации крупного рогатого скота

(одобрены Госагропромом СССР 18.08.1988)

МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ

Изложена методика проведения комплексной диспансеризации крупного рогатого скота.

Предназначены для ветеринарных врачей.

Одобрены Главным управлением ветеринарии Госагропрома СССР 18 августа 1988 г.

ВВЕДЕНИЕ

XXVII съезд КПСС определил стратегическое направление на ускорение социально-экономического развития страны, улучшение жизни нашего народа. В утвержденных на XXVII съезде «Основных направлениях экономического и социального развития СССР на 1986 — 1990 годы и на период до 2000 года» предусмотрен значительный рост производства продуктов животноводства — молока, мяса, яиц, шерсти, кожно-мехового сырья и др.

Намечено довести в 1990 году производство мяса до 21 млн. тонн (в убойном весе), молока — до 106 — 110 млн. тонн.

Увеличение производства молока, мяса и другой животноводческой продукции будет осуществляться, главным образом, путем интенсификации животноводства, дальнейшего перевода его на промышленную основу, повышения продуктивности скота.

В этих условиях особое значение приобретает своевременный контроль за состоянием обмена веществ и здоровья животных.

Комплексная диспансеризация — система плановых профилактических и лечебных мероприятий, направленных на создание здоровых высокопродуктивных стад животных, уменьшение и ликвидацию внутренних незаразных, акушерско-гинекологических, хирургических и других болезней. Это прогрессивная форма ветеринарного обслуживания, позволяющая осуществлять контроль за состоянием обмена веществ у животных в целом по стаду, своевременно выявлять субклинические формы болезней, разобраться в сложном комплексе причин, вызывающих их, намечать пути профилактики и лечения.

Результаты диспансеризации позволяют активно влиять на технологию животноводства, совместно с агрономической, зоотехнической и другими службами участвовать в создании биологически полноценной кормовой базы, отвечающей особенностям обмена веществ и уровню стабильной высокой продуктивности животных, — необходимого условия научно-технического прогресса в животноводстве и ветеринарии, успешного решения Продовольственной программы страны.

На промышленных комплексах и крупных специализированных фермах диспансеризация должна проводиться систематически, быть составной частью технологического процесса. Однако она не может заменить повседневной ветеринарной работы, противоэпизоотических мероприятий.

Диспансеризацию животных проводят ветеринарные специалисты хозяйств с участием зоотехников, агрономов, управляющих, начальников цехов, бригадиров ферм. Лабораторные исследования крови, рубцового содержимого и других биологических субстратов осуществляют ветеринарные лаборатории. Химический состав кормов определяют агрохимлаборатории, качество кормов — ветлаборатории.

1. МЕТОДИКА ПРОВЕДЕНИЯ ДИСПАНСЕРИЗАЦИИ КОРОВ И НЕТЕЛЕЙ ПО ВНУТРЕННИМ НЕЗАРАЗНЫМ БОЛЕЗНЯМ

1.1. Принцип метода. В основу методики диспансеризации животных при внутренних незаразных болезнях, включая алиментарные и эндокринные болезни, положены принципы выборочной совокупности и непрерывности. Первый достигается путем обследования контрольных ферм (дворов, секций) и контрольных групп животных, второй — благодаря проведению основной, наиболее полной, и промежуточной (текущей) диспансеризации без значительного увеличения общего объема исследований.

1.2. Контрольные дворы (фермы, секции) определяют главный ветеринарный врач и главный зоотехник хозяйства, где должны быть такие же условия кормления и содержания животных, как и на смежных дворах (фермах).

Контрольные группы животных подбирают ветеринарные специалисты, которые проводят диспансеризацию с учетом возраста и физиологического состояния.

При диспансеризации молочных коров и нетелей выделяют четыре контрольные группы: 1) коровы в первые три месяца лактации; 2) коровы 6 — 7 месяцев лактации; 3) сухостойные животные; 4) нетели за 2 — 3 месяца до отела.

На промышленных комплексах по интенсивному выращиванию и откорму бычков контрольными группами служат животные первого, второго и третьего периодов выращивания и откорма.

Необходимость такого принципа отбора контрольных групп животных вызвана тем, что клинико-биохимические показатели зависят от стадии лактации, сроков беременности, периода выращивания и откорма.

При очередной диспансеризации контрольные группы животных подбирают вновь.

1.3. Объем и сроки проведения диспансеризации. Диспансеризацию делят на основную и текущую. Основную проводят раз в год (январь-февраль), текущую — раз в квартал.

Основная диспансеризация включает анализ производственных показателей по животноводству и ветеринарии, ветеринарный осмотр животных, клиническое обследование контрольных групп, исследование их крови, мочи, молока; анализ кормления и содержания скота, анализ полученных данных, заключение и предложения, мероприятия по профилактике и терапии.

При текущей (промежуточной) диспансеризации проводят ветеринарный осмотр всех животных, исследуют мочу и молоко от контрольных групп (кровь — по усмотрению врача), анализируют рационы, полученные данные, дают заключение и предложения, намечают мероприятия по профилактике и терапии.

На крупных фермах проводят полное клиническое обследование 10 — 20% поголовья коров и нетелей, исследование мочи — у 10 — 20%, крови — 5%, молока тех коров, у которых в моче обнаружены ацетоновые тела.

1.4. Анализ производственных показателей по животноводству и ветеринарии (синдроматика стада).

Анализируют молочную продуктивность, затраты кормов на единицу продукции, заболеваемость скота незаразными и заразными болезнями, выход телят на 100 коров, их потери (падеж, вынужденный убой, мертворожденность), учитывают массу новорожденных телят, степень выбраковки коров и др.

Анализ этих показателей следует проводить в динамике, за ряд предыдущих лет. Он дает представление об общем состоянии фермы, стада, наиболее вероятной причине нарушения обмена веществ и других болезней животных.

1.5. Ветеринарный осмотр животных. При проведении основной и промежуточных диспансеризаций на контрольных фермах (дворах, секциях) проводят ветеринарный осмотр всех животных.

При поголовном осмотре обращают внимание на общее состояние, упитанность, состояние шерстного покрова, венчика, копытного рога и костяка, реакцию при вставании и т.д. Хорошее общее состояние, живая быстрая реакция на оклик, блестящий шерстный покров, средняя упитанность характерны для здоровых животных. Матовость шерстного покрова и глазури копытного рога, заломы рогового башмака, дистрофия или ожирение, болезненность при вставании, движении, хруст в суставах, провислость спины и слабость костяка являются свидетельством патологии обмена веществ у животных.

1.6. Клиническое обследование контрольных групп животных. Для того чтобы иметь представление о клиническом статусе в стаде при проведении основной диспансеризации, осуществляют полное клиническое обследование контрольных групп животных. Определяют упитанность, состояние лимфоузлов, частоту сердечных сокращений, характер сердечных тонов, частоту и глубину дыхания, ритм и силу сокращения рубца, состояние печени, костяка, органов движения, вымени и мочеполовых органов. Исследуют предлопаточные лимфоузлы и лимфоузлы коленной складки. При их увеличении животных исследуют на лейкоз в соответствии с существующей инструкцией.

Состояние сердечной деятельности определяют путем аускультации сердца, устанавливая частоту, силу и ритм сердечных сокращений, усиление, ослабление сердечных тонов, расщепление или раздвоение их, шумы сердца и др. При кетозе отмечают преимущественно учащение сердечных сокращений, ослабление, глухость, расщепление, раздвоение сердечных тонов.

Состояние органов дыхания оценивают первоначально по частоте и глубине дыхания, при наличии каких-либо признаков патологии проводят дополнительные исследования. Частоту дыхания подсчитывают при спокойном состоянии животного. Наличие большого числа животных с учащенным поверхностным дыханием свидетельствует о патологии обмена веществ.

На фермах, где отмечают кетоз, хронический ацидоз рубца, учащенное поверхностное дыхание бывает у 20 — 25% животных.

У высокопродуктивных коров нередко констатируют хронические бронхиты, очаговые пневмонии, альвеолярную эмфизему легких и другие болезни органов дыхания.

Первоначальное представление о состоянии желудочно-кишечного тракта дают результаты исследования рубца. Частоту движений рубца подсчитывают за 2 мин. При установлении редких или частых слабых, неритмичных сокращений рубца исследуют книжку, сычуг, сетку, чтобы выявить первичную причину гипотонии, атонии или гипертонии преджелудков. Важно исключить травматический ретикулит, ретикулоперитонит, закупорку книжки и другие первичные заболевания преджелудков.

Частые случаи гипотонии и атонии преджелудков у коров встречаются при ацидозе рубца, остеодистрофии и гипокобальтозе. Нередко они проявляются при кетозе, а также резком переводе животных с одного вида корма на другой.

Печень животного исследуют пальпацией и перкуссией области печеночного притупления. При значительных патологических процессах в печени область ее притупления увеличивается в каудальном направлении, доходя по линии седалищного бугра до 13-го ребра, и опускается краниовентрально.

Увеличение печени встречается преимущественно у животных при высококонцентратном, силосно-бардяном, силосно-жомовом типах кормления.

Для оценки состояния костяка исследуют последние хвостовые позвонки, ребра, поперечные отростки поясничных позвонков и других костей. В случаях расстройства минерального обмена, обеднения костяка солями кальция, фосфора, магния у животных обнаруживают истончение и рассасывание последних хвостовых позвонков, ребер, лопатки и других костей. На ребрах, маклоке и других костях устанавливают фиброзные утолщения, иногда величиной с кулак, деформацию грудной клетки.

При исследовании органов движения обращают внимание на наличие хромоты, состояние суставов, венчика, копытец. Частые случаи деформации копытцевого рога, воспаления венчика, бурситов, артритов могут быть следствием нарушения обмена веществ у животных.

При исследовании мочеполовых органов осматривают область подгрудка, нижнюю часть живота и другие участки тела животного с тем, чтобы выявить отеки, определяют чувствительность почек. Осматривают область таза, крупа и вульвы с целью обнаружения истечений из наружных половых органов и установления вагинитов, эндометритов, метритов, задержаний последа и других болезней.

Клинические формы маститов выявляют осмотром и пальпацией молочной железы, обнаружением хлопьев и сгустков в молоке (секрете) при пробном сдаивании на фильтровальную бумагу.

Результаты клинического исследования записывают в специальный журнал или диспансерную карту.

1.7. Исследования крови, мочи, молока, рубцового содержимого. Для того чтобы иметь наиболее полное представление об уровне и состоянии обмена веществ, необходимо провести лабораторные исследования крови, мочи и молока, а в ряде случаев и рубцового содержимого.

1.7.1. Исследование крови. При основной и промежуточной диспансеризации перед взятием крови проводят полное клиническое обследование животных. Кровь берут от клинически здоровых животных, не имеющих признаков травматического ретикулита, перикардита, гнойного мастита, эндометрита, задержания последа и других первичных заболеваний органов и систем, которые могут оказать влияние на показатели крови. На фермах с однотипным кормлением кровь берут от 20 — 30 животных контрольных групп (по 5 — 7 животных в каждой группе).

1.7.1.1. Кровь для исследования берут утром в 2 сухие чистые пробирки: в одну — для получения цельной крови, в другую — для получения сыворотки. В пробирку для получения цельной крови или плазмы предварительно вносят противосвертывающее средство (антикоагулянт).

В расчете на 10 мл крови берут 10 — 20 мг лимонно-кислого или щавелево-кислого натрия, 2 — 3 капли 1-процентного раствора гепарина (1 — 2 мг, или 50 ед.), 10 — 15 капель 10-процентного раствора этилендиаминтетрауксусной кислоты натриевой соли (ЭДТА-натрия, трилон Б). Добавление указанных выше средств в больших количествах недопустимо, так как их высокая концентрация вызывает в крови различные изменения — до гемолиза включительно.

Кровь отправляют в лабораторию в день ее взятия. Исследование проводят по единым унифицированным методикам.

При пересылке на исследование крови в лабораторию ветеринарный врач или фельдшер составляет список животных с обязательным указанием, от какой контрольной группы или в какой физиологической фазе находятся животные.

Перечень исследуемых показателей крови зависит от характера предполагаемой патологии, а также от возможностей лаборатории.

1.7.1.2. Перед анализами сыворотку крови центрифугируют в течение 10 мин. при 3000 об./мин., чтобы удалить форменные элементы крови, которые искажают результаты исследования.

1.7.1.3. Общими показателями при проведении диспансеризации являются гемоглобин, число лейкоцитов, резервная щелочность, общий белок сыворотки крови, общий кальций, неорганический фосфор, каротин; специфическими — кетоновые тела, сахар, магний, сулемовая или другая печеночная пробы, микроэлементы, витамины А, С и Е и др.

Определение кетоновых тел и сахара в крови служит для диагностики кетоза, магния — для диагностики гипомагниемии, сулемовая проба — для определения функций печени; микроэлементов и витаминов — в целях обнаружения недостаточности их в организме животного.

1.7.1.4. Гемоглобин крови определяют гемиглобинцианидным методом. Наборы для определения гемоглобина этим методом готовит НПО «Биолар» (Латвия).

    Снижение  уровня  гемоглобина  (олигохромемия) бывает при неполноценном
кормлении,  недостатке  в рационах белка, минеральных и других веществ, при
плохих   зоогигиенических   условиях   содержания   (темные,  сырые,  плохо
вентилируемые   помещения),   хронических  токсикозах.  Это  особенно  ярко

проявляется при патологии обмена веществ, связанной с недостатком кобальта, железа, меди и витамина B . Низкий уровень гемоглобина крови обнаруживают 12 при кетозе, поражении печени, нитратно-нитритном токсикозе.

1.7.1.5. Количество лейкоцитов определяют с помощью счетных камер или автоматических счетчиков.

При наличии в 1 мкл крови животного в возрасте 2 — 4 лет более 12 тыс., а 7 и старше лет — свыше 10 тыс. лейкоцитов необходимо провести дифференциальную диагностику клеток для обнаружения лейкоза (по инструкции).

1.7.1.6. Общий белок сыворотки крови определяют с помощью рефрактометра или биуретовым методом.

В организме животных концентрация общего белка сыворотки крови находится в довольно постоянных пределах и изменяется при глубокой патологии обмена веществ, заболевании печени и других органов.

Снижение общего белка сыворотки крови (гипопротеинемия) отмечается при длительном недокорме, алиментарной остеодистрофии, плохом усвоении белков корма, вследствие хронических расстройств желудочно-кишечного тракта, недостатка лимитирующих аминокислот, макро- и микроэлементов, витаминов. К гипопротеинемии приводят большие потери белка при нефрозах и нефритах, а также снижение его синтеза при циррозах печени.

Повышение общего белка сыворотки крови (гиперпротеинемия) в условиях интенсивного ведения животноводства бывает значительно чаще, чем гипопротеинемия.

Причиной гиперпротеинемии могут быть белковый перекорм, острые гепатиты, дистрофии и другие болезни печени. При этом количество общего белка сыворотки крови повышается за счет высокомолекулярных, крупнодисперсных фракций его — глобулинов при одновременном снижении уровня альбуминов. У высокопродуктивных коров количество общего белка сыворотки крови повышается чаще при кетозе и осложнении его вторичной остеодистрофией.

По данным ряда авторов, содержание общего белка сыворотки крови у коров в летний период при использовании долголетних культурных пастбищ выше, чем зимой; у высокопродуктивных коров выше, чем у низкопродуктивных. Уровень его перед отелом несколько снижается, но названные изменения не выходят за пределы нормы. Говорят о гипопротеинемии, если уровень общего белка сыворотки крови ниже 7,2 г%, гиперпротеинемии — выше 8,6 г%.

У молодых животных уровень общего белка сыворотки крови несколько ниже, чем у взрослых.

1.7.1.7. Резервную щелочность плазмы крови определяют диффузионным методом с помощью сдвоенных колб по Кондрахину (распоряжение главка ГУВ МСХ СССР от 26 марта 1976 г. № 117-7).

В организме животных постоянство кислотно-щелочного равновесия (рН) поддерживается четырьмя основными буферными системами: гемоглобиновой, бикарбонатной, фосфатной, белковой. В клинической практике большое значение придается бикарбонатной буферной системе, так как она наиболее лабильна и быстрее других систем реагирует на различные сдвиги в организме. Состояние бикарбонатной буферной системы оценивают по определению резервной щелочности (запасов бикарбонатов) плазмы крови.

    Величина  резервной щелочности крови измеряется количеством углекислого
газа  (мл),  выделенного  из  100  мл плазмы крови, и выражается в объемных
процентах CO  (об. % CO ) или в мл CO  на 100 мл плазмы крови.
            2          2             2

В ветеринарной практике часто встречаются с явлением компенсированного метаболического ацидоза, проявляющегося в снижении резервной щелочности крови вследствие поступления в организм избытка кислых (фосфор, хлор, сера) и недостатка щелочных (натрий, кальций, калий, магний) элементов, кормления преимущественно концентратами или кислыми кормами (жом, барда, силос). Снижение резервной щелочности крови происходит при ацидозе рубца, кетозе, остеодистрофии и других формах нарушения обмена веществ. Состояние компенсированного ацидоза часто отмечают в стойловый период, когда в организме животных накапливается большое количество недоокисленных продуктов обмена, кислот, которые связывают бикарбонаты и другие щелочные компоненты крови.

Резервная щелочность снижается при расстройствах желудочно-кишечного тракта, нефритах, а также септических процессах, вследствие выведения из организма большого количества натрия.

1.7.1.8. Кальций в крови находится в виде ионов и в связанном с белками состоянии. Общий кальций определяют комплексонометрическим методом с индикатором флюорексоном или мурексидом.

Снижение уровня кальция в крови отмечается при длительном недостаточном поступлении его с кормом и водой и плохом усвоении вследствие дефицита витамина Д, болезней желудочно-кишечного тракта, нарушении оптимального соотношения кальция и фосфора.

Гипокальциемия наступает при остеодистрофии, пастбищной тетании, послеродовом парезе, нарушении функций щитовидной и паращитовидных желез, заболеваниях печени (уменьшается всасывание кальция в кишечнике), а также при повышении концентрации в крови фосфора, нарушении соотношения между этими элементами).

При уменьшении содержания кальция в крови до 7 мг% у животных наступают нервные расстройства (тетания, судороги).

Повышение уровня кальция в крови может быть при передозировке витамина Д, острых панкреатитах. При гиперфункции паращитовидных желез содержание кальция в крови увеличивается, а фосфора уменьшается из-за усиленного выделения его с мочой.

1.7.1.9. Неорганический фосфор сыворотки крови определяют с ванадат-молибденовым реактивом («Ветеринария». 1972. № 7). При хранении сыворотки крови количество неорганического фосфора увеличивается за счет расщепления его органических соединений, поэтому кровь сразу после взятия рекомендуется осаждать равным объемом 20-процентной ТХУ и исследовать фильтрат. Безбелковый фильтрат в закрытых пробирках в холодильнике можно хранить 5 — 7 дней.

Снижение уровня неорганического фосфора в крови (гипофосфатемия) отмечается при недостатке этого элемента в кормах, плохом его усвоении вследствие заболеваний желудочно-кишечного тракта или печени, нарушения соотношения кальция и фосфора в кормах.

Гипофосфатемию наблюдают при остеодистрофии, однако уменьшение количества фосфора в крови не всегда совпадает во времени с клинической картиной этого заболевания. В начальный период заболевания, когда костяк еще богат запасами солей фосфора, гипофосфатемии может не быть.

Гиперфосфатемия наступает при гиперфункции паращитовидных желез, нефритах, нефрозах, мышечном перенапряжении. В хозяйствах с высококонцентратным типом кормления коров отмечается повышение уровня неорганического фосфора в крови.

Важное диагностическое значение имеет соотношение в крови кальция и фосфора. У здоровых животных при нормальном уровне обмена веществ этот коэффициент равен 1,6 — 2,0. Повышение этого показателя более 3 (или снижение менее 1,5) указывает на патологию фосфорно-кальциевого обмена.

1.7.1.10. Неорганический магний сыворотки крови определяют по цветной реакции с титановым желтым или с магоном. Снижение магния в крови отмечается при пастбищной тетании (до 1,5 — 1,2 мг% и ниже), алиментарной остеодистрофии, послеродовом парезе, транспортной болезни у коров. Гипомагниемия наступает вследствие поступления в организм избытка калия (с молодой травой) или азота.

1.7.1.11. Сахар (глюкозу) крови определяют по цветной реакции с о-толуидином, глюкозооксидазным методом, по Сомоги-Нельсону. Концентрация сахара в крови быстро снижается вследствие распада глюкозы (гликолиза), поэтому сразу после взятия крови необходимо приготовить из нее безбелковый фильтрат.

В безбелковом фильтрате, хранящемся в холодильнике в закрытых пробирках, глюкозу можно исследовать в течение 3 — 5 дней.

Снижение уровня сахара в крови (гипогликемия) бывает при кетозе, вторичной остеодистрофии и некоторых других болезнях обмена веществ, а также поражениях печени из-за токсикоза. Значительную гипогликемию у коров отмечают в первые дни после отела вследствие большого расхода энергии при родах.

Наиболее часто снижение уровня сахара в крови является следствием дефицита легкоусвояемых углеводов в кормах, избыточного потребления глюкозы организмом при высококонцентратном типе кормления, преобладании в рационах кислых кормов, содержащих в большом количестве уксусную и масляную кислоты.

Повышение содержания сахара в крови (гипергликемия) может быть стойким или непродолжительным. Непродолжительная гипергликемия бывает при скармливании скоту больших количеств сахаристых кормов, а также при испуге, высокой температуре, стрессовом состоянии. Стойкая гипергликемия наблюдается при сахарном диабете вследствие гиперфункции островковой ткани поджелудочной железы, продуцирующей инсулин и переводящей сахар в гликоген. Незначительная гипергликемия бывает при ацидозе рубца.

1.7.1.12. Кетоновые тела (бета-оксимасляная кислота, ацетоуксусная кислота и ацетон) являются промежуточными продуктами обмена жиров, углеводов и белков.

Количественное определение кетоновых тел в крови в ветеринарной практике преимущественно проводят йодометрическим методом. Обнаружить кетоновые тела в сыворотке крови можно с помощью реактива Лестраде и реактивных полосок. Чувствительность реакции — около 10 мг% ацетона и ацетоуксусной кислоты или около 25 мг% и более общего количества кетоновых тел.

У здоровых коров в цельной крови общее количество кетоновых тел составляет 1 — 6 мг%, причем на долю бета-оксимасляной кислоты их приходится в 3 — 4 раза больше, чем ацетона и ацетоуксусной кислоты. При кетозе соотношение меняется в сторону увеличения ацетона и ацетоуксусной кислоты.

Наибольшая концентрация кетоновых тел в крови здоровых животных бывает в первые 3 месяца лактации и последний месяц стельности. У высокопродуктивных коров концентрация кетоновых тел в крови выше, чем у низкопродуктивных.

Стойкое повышение кетоновых тел в крови (гиперкетонемия) встречается при кетозе, достигая 25 мг% и выше. Наибольшая их концентрация бывает в начальный период заболевания; при хроническом течении, потере аппетита и проявлении признаков вторичной остеодистрофии содержание в крови кетоновых тел в пределах нормы или немного выше ее. При развитии вторичной остеодистрофии вследствие кетоза кетонурию не выявляют.

Повышение уровня кетоновых тел в крови наступает при усиленном распаде жиров, в фазе интенсивной лактации, при гиперфункции щитовидной и поджелудочной железы.

Причиной гиперкетонемии может быть скармливание животным большого количества силоса, сенажа, кислого жома и других кормов, содержащих в избытке уксусную и масляную кислоты. Накоплению в крови кетоновых тел способствует высокая концентрация аммиака, который тормозит реакцию окисления ацетил-КОА в цикле трикарбоновых кислот.

Умеренная вторичная кетонемия может быть при травматическом перикардите, ретикулоперитоните, эндометрите, задержании последа, хирургической инфекции и других септических процессах. Вторичная кетонемия (кетонурия) носит нестойкий характер и исчезает с устранением основного заболевания.

1.7.1.13. Определяют каротин в сыворотке крови колориметрическим методом с использованием эфира или бензина («Ветеринария». 1973. № 2). Витамин А в сыворотке крови определяют по методике Бессея в модификации А.А. Анисовой, витамин Е — по Биеру в модификации Р.Ш. Киселевич и С.И. Скварко, витамин С — по Климову. Снижение содержания в крови витаминов — признак развития гиповитаминозов.

В случае необходимости определяют мочевину в сыворотке крови по цветной реакции с диацетилмонооксимом или уреазным методом с использованием наборов реактивов фирмы «Лахема» (ЧССР), натрий и калий в плазме крови — на пламенном фотометре, йод в сыворотке крови — по Драгомировой, медь, цинк, кобальт, марганец в цельной крови — спектрометрически или на атомно-абсорбционном спектрофотометре. Для характеристики липидного обмена определяют триглицериды по реакции с ацетилацетоном после экстракции смесью гептана и изопропилового спирта, холестерин — по Ильку и другие вещества.

Нормативы биохимических показателей крови у здоровых животных приведены в табл. 1.

Таблица 1

НОРМАТИВЫ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРОВИ У КЛИНИЧЕСКИ ЗДОРОВЫХ ЖИВОТНЫХ

<*> Данные у новорожденных телят по Н.И. Блинову.

1.7.2. Исследование мочи. При диспансеризации животных исследованию мочи придают большое значение, т.к. в моче в ряде случаев можно установить патологические сдвиги, связанные с нарушением обмена веществ, а также с развитием других болезней.

Исследуют мочу от 10 — 20% животных контрольных групп (по 15 — 20 голов в группе). Для исследования подбирают животных, не имеющих клинических признаков эндометрита, тяжелого, клинически выраженного мастита, задержания последа, травматического ретикулита, атонии преджелудков.

Мочу исследуют непосредственно на ферме, определяя реакцию (рН), наличие ацетоновых (кетоновых) тел, по усмотрению врача — белок, билирубин, уробилиноген и др. вещества. Для анализа используют мочу, взятую в утренние часы.

Собирают мочу при самопроизвольном мочеиспускании или побуждают животных к мочеиспусканию легким массажем в области вентральной части половых губ вблизи клитора.

1.7.2.1. Определение реакции мочи (рН). Реакцию мочи чаще определяют с помощью универсальной индикаторной бумаги или реактивных (диагностических) полосок сразу после взятия образцов, так как при стоянии она ощелачивается вследствие образования карбоната аммония.

У здоровых коров рН мочи колеблется в пределах 7,0 — 8,6. Сдвиг реакции мочи в кислую сторону наступает при ацидотическом состоянии в организме, вызванном содержанием животных на рационах с преобладанием в них концентратов или кислых кормов. Сдвиг рН мочи в кислую сторону отмечается при кетозе, ацидозе рубца, воспалительных процессах в желудочно-кишечном тракте, пневмониях и некоторых других воспалительных процессах.

Смещение реакции мочи в щелочную сторону наступает при алкалозе рубца, а также при поступлении в организм большого количества натрия и других щелочных элементов. Оно бывает также при циститах, пиелитах в результате брожения мочи и разложения мочевины.

1.7.2.2. Определение ацетоновых (кетоновых) тел в моче. Для определения ацетоновых тел в моче используют качественную пробу с реактивом Лестраде, основанную на реакции нитропруссида натрия с ацетоном и ацетоуксусной кислотой с появлением вишнево-фиолетового окрашивания. Чувствительность пробы по ацетону и ацетоуксусной кислоте — около 10 мг%. Реактив Лестраде готовят путем смешивания и тщательного растирания в ступке 1 части нитропруссида натрия, по 20 частей серно-кислого аммония и карбоната натрия безводного.

На фильтровальную бумагу насыпают около 0,1 г реактива и на него наносят 2 — 3 капли мочи. Появление через 30 — 60 с сиреневого или темно-фиолетового окрашивания свидетельствует о наличии в моче кетоновых тел. Слабое окрашивание смеси в розовый цвет с сиреневым оттенком означает, что в моче кетоновых тел не менее 20 мг%, в темно-фиолетовый — свыше 200 мг%. Кетоновые тела в моче можно обнаружить с помощью набора реактивов для экспресс-анализа ацетона в моче, выпущенного МПО «Реагент» (Рига), реактивных полосок. Значительная, стойкая кетонурия, обнаруживаемая у большого числа животных, свидетельствует о развитии кетоза. Умеренная, непродолжительная кетонурия может быть при дистонии преджелудков, эндометрите, гнойном мастите, задержании последа. В госплемзаводах и других специализированных хозяйствах исследование мочи на наличие кетоновых тел необходимо проводить 6 — 8 раз в год, это позволит своевременно выявить начальные стадии развития кетоза, ацидоза и алкалоза рубца и др. болезней.

1.7.3. Исследование молока. При проведении диспансеризации коров в молоке определяют наличие кетоновых тел, а также используют данные о содержании жира и некоторых других веществ.

Кетоновые (ацетоновые) тела в молоке определяют непосредственно на ферме или в лаборатории с помощью тех же экспресс-методов, которые применяют для обнаружения кетоновых тел в моче. При наличии кетоновых тел высокой концентрации реактив Лестраде с молоком дает вишнево-розовое окрашивание. Чем больше содержится кетоновых тел в молоке, тем интенсивнее окраска. С молоком здоровых коров качественная проба дает отрицательные результаты. Обнаружение с помощью реактива Лестраде или другой пробы кетоновых тел в молоке указывает на развитие кетоза.

В молоке здоровых коров общее количество кетоновых тел (ацетон, ацетоуксусная и бета-оксимасляная кислоты) составляет 6 — 8 мг%.

В результате параллельных определений кетоновых тел в крови и молоке йодометрическим методом установлена прямая положительная связь между этими показателями. Следовательно, в стадах, где превалирующей патологией обмена веществ у коров является кетоз, во время промежуточной диспансеризации можно исследовать вместо крови молоко. Выраженная кетонолактия с концентрацией кетоновых тел выше 20 мг% отмечается у животных при развитии кетоза.

1.7.4. Исследование рубцового содержимого. Диагностическое значение имеют рН, уровень молочной кислоты, аммиака, количество инфузорий, их подвижность, видовой состав и другие показатели.

Для исследования рубцовое содержимое берут утром через 3 — 4 ч после кормления, с помощью ротопищеводного зонда и шприца Жанэ.

Первые порции содержимого рубца с наличием слюны выливают, так как они искажают результаты исследований.

Полученное содержимое отфильтровывают через 4 слоя марли от кормовых масс, консервируют 6 — 8 каплями хлороформа или толуола; в случае хранения или длительной транспортировки заливают слоем вазелинового масла (1 мл).

Для подсчета инфузорий пробу рубцовой жидкости консервируют 10-процентным раствором формалина.

1.7.4.1. Определение рН. рН рубцовой жидкости определяют рН-метром или индикаторной бумагой, реактивными полосками. Оптимальный рН рубцового содержимого у коров, нетелей составляет 6,5 — 7,2. Снижение рН до 6,0 и ниже свидетельствует о развитии ацидоза рубца, сдвиг рН выше 7,2 характерен для алкалоза рубца.

Ацидоз рубца развивается при поедании большого количества кормов, богатых сахарами и крахмалом (свекла, кормовая патока, зерновые злаковые, картофель и другие). Причина алкалоза рубца — поедание большого количества зернобобовых, а также недоброкачественных (подгнивших) кормов и высоких доз мочевины.

1.7.4.2. Определение молочной кислоты в рубцовом содержимом проводят методом Гордона и Квасля в модификации А.П. Кротковой, Н.В. Курилова.

Молочная кислота в содержимом рубца находится в норме в следовых концентрациях (не превышает 0,2 ммоль/л). При избыточном углеводном питании (кормовая, полусахарная свекла более 25 кг в сутки), использовании больших количеств зерновых крахмалистых концентратов содержание молочной кислоты в рубцовой жидкости резко возрастает, вызывая снижение рН рубцовой среды, а позднее — развитие ацидотического состояния в организме. Снижение рН и накопление молочной кислоты в рубцовом содержимом изменяет видовой состав и подвижность инфузорий.

1.7.4.3. Количество инфузорий в содержимом рубца определяют в счетной камере с сеткой Горяева. Метод подсчета простейших в рубцовой жидкости не отличается от техники, используемой для подсчета лейкоцитов крови (см. Клиническая лабораторная диагностика в ветеринарии. М.: Агропромиздат, 1985).

В рубцовом содержимом находится около 100 видов инфузорий, общая их численность варьирует от 200 до 1200 тыс./мл и зависит от состава рациона, вида кормов.

При использовании травостоя пастбищ, на сбалансированном сено-силосно-концентратном рационе их количество колеблется от 400 до 500 тыс./мл, при одностороннем высококонцентратном, силосном кормлении или при использовании гранулированных кормов — 150 — 200 тыс./мл.

Количество инфузорий уменьшается при снижении рН рубцового содержимого ниже 6,5 или повышении более 7,2.

1.7.4.4. Аммиак в рубцовом содержимом определяют микродиффузионным методом Конвея.

При оптимальном уровне рН (6,5 — 7,2) уровень аммиака в рубцовом содержимом составляет 6,5 — 25 мг% с колебаниями по сезонам года: в зимний период — 6,5 — 20 мг%, в летний, при использовании травы долголетних культурных пастбищ, — 20 — 25 мг%.

При ацидозе рубца происходит угнетение образования аммиака (распада кормового протеина), его количество снижается до 5 — 2 мг%, а иногда — до следов.

При алкалозе рубца, вызванном поступлением карбамида или азотсодержащих солей в больших количествах, когда рН среды превышает 7,2, в содержимом рубца аммиак в первые же часы возрастает до 60 — 70 мг% и удерживается на высоком уровне в рубце и крови в течение первых суток после скармливания.

1.8. Анализ кормления и содержания животных. При выяснении влияния кормления на состояние обмена веществ и здоровья животных необходимо определить уровень и тип кормления, степень удовлетворения потребности в основных элементах питания и биологически активных веществах.

1.8.1. Уровень кормления, который определяют сопоставлением общего количества кормовых единиц рациона с нормами ВИЖа, может быть нормальным, повышенным или сниженным. Сниженный уровень сопутствует развитию остеодистрофии, повышенный — кетоза. Для высокого уровня кормления характерно наличие большого числа животных с признаками ожирения.

1.8.2. Структуру рациона определяют путем вычисления процентного содержания каждого вида корма в общем количестве кормовых единиц. Процентное соотношение различных видов кормов по питательности в общем количестве скормленных за год кормов характеризует тип кормления. К концентратному типу относят кормление при расходе 400 г и более концентратов на 1 кг молока с 4% жира, к полуконцентратному — с расходом 200 — 300 г, к малоконцентратному — 110 — 120 г и к объемистому — с расходом концентратов до 100 г на 1 кг молока (А.П. Дмитроченко).

Исходными данными для вычисления структуры потребляемых кормов за год или определенный период служат данные бухгалтерского учета о расходе кормов для различных групп животных, которые есть в каждом хозяйстве.

1.8.3. При анализе кормления животных важно определить содержание в рационах клетчатки, выраженное в процентах к сухому веществу. Для этого подсчитывают содержание сухого вещества в рационе и количество клетчатки.

В 1 кг корма содержится сухих веществ (кг): грубых кормов — 0,85; зеленых — 0,18; силоса — 0,2; корнеплодов — 0,1 — 0,12; концентратов — 0,9; зерна злаковых и бобовых — 0,88 — 0,9.

В сухом веществе содержится клетчатки (%): сена — 27 — 33; соломы — 32 — 46; зеленых кормов — 16 — 20; силосованных — 22 — 28; комбикорма — 7 - 10; зерна злаковых — 2 - 10; зерна бобовых — 4 - 7; корнеплодов — 1,0.

ПРИМЕР РАСЧЕТА КЛЕТЧАТКИ В РАЦИОНЕ КОРОВ С УДОЕМ 25 КГ

Содержание клетчатки в таком рационе составит:

3,482 x 100

----------- = 18,4%. 18,85

Ее количество в рационе можно определить по табличным данным. Недостаток в рационах клетчатки ведет к нарушению рубцового пищеварения и обмена веществ, развитию руменита, ацидоза рубца, кетоза и других болезней, появлению диареи, снижению кислотности молока.

При избытке в рационах клетчатки снижается переваримость питательных веществ корма.

1.8.4. Для выяснения степени обеспеченности потребности животных в основных элементах питания проводят зоотехнический анализ рационов разных групп животных. Контролируемыми показателями являются: сухое вещество, кормовые единицы, переваримый протеин, кальций, фосфор, каротин, сахар, соль поваренная, отношение кальция к фосфору, сахара к протеину. В необходимых случаях подсчитывают содержание в кормах магния, серы, калия, микроэлементов, витаминов Д, Е.

При анализе рационов необходимо обращать внимание на состав комбикормов, учитывать их рецептуру, фактический набор компонентов, указанных в удостоверении, которое выдается заводом-изготовителем на каждую партию отправляемого корма.

Путем анализа рационов, сопоставления нормы питательных и других веществ с их содержанием в кормах делают заключение о полноценности и сбалансированности питания.

1.8.5. Оценивают качество кормов на основании органолептического анализа, результатов химического, микологического, бактериологического и токсикологического исследований.

Животным скармливают только доброкачественные корма.

1.8.5.1. Качество сена (сеяные бобовые, злаковые, смешанные и естественные сенокосы) оценивают по цвету, запаху, содержанию сухого вещества (не менее 85%), наличию ядовитых (не более 1%) и механических примесей. Содержание клетчатки в нем — 27 — 33%.

Классность сена определяют по массовой доле сырого протеина в сухом веществе (в зависимости от вида травостоя): 16 — 11% — I класс, 13 — 9% — II и 10 — 7% — III класс, а также по обменной энергии и кормовым единицам: I класс — 9,2 — 8,9 МДЖ, или 0,68 — 0,64 к. ед.; II — 8,8 — 8,5 МДЖ, или 0,62 — 0,58 к. ед.; III — 8,2 — 7,9 МДЖ, или 0,54 — 0,50 к. ед. Испорченные грубые корма (сено, солома, полова и др.) имеют затхлый, плесневелый и гнилостный запах, не свойственный им цвет, к скармливанию такие корма не допускают. Не разрешается скармливать животным сено, содержащее свыше 1% ядовитых и вредных растений, а также сено и солому, загрязненные илом, песком, землей и другими механическими примесями.

1.8.5.2. Силос хорошего качества имеет рН = 3,8 — 4,3, влажность не более 75%, желто-зеленый или желтый цвет, запах фруктовый, структура растений сохранена без ослизнений. Общее количество кислот в хорошем силосе 1,9 — 2,5%, из них на долю молочной кислоты приходится более 60%, масляной кислоты нет. Силос среднего качества — бурого цвета, с уксусным запахом. Плохой силос имеет темно-бурый или черный цвет, едкий аммиачный запах с оттенком запаха селедки или испорченного сыра. Структура корма разрушена, рН = 4,7 — 6,0. Соотношение кислот: молочной 29% и ниже, уксусной более 50%, масляной 21% и более. Испорченный силос грязно-зеленого цвета, навозного запаха, ткани растений разложившиеся, рН = 5 и выше.

Плохой и испорченный силос непригоден для скармливания животным. Силос с нормальными показателями рН, но с наличием 50% уксусной кислоты или содержанием масляной кислоты от 10 до 20% (по соотношению кислот) разрешают скармливать животным вместе с корнеплодами или после раскисления или обработки паром. Такой силос нельзя давать стельным коровам и глубокостельным нетелям.

1.8.5.3. Сенаж хорошего качества имеет фруктовый запах и специфический цвет, влажность 45 — 55%, рН = 4,2 — 5,4. У сенажа среднего качества слабый запах свежеиспеченного хлеба, он светло-коричневого, соломенного до желтого, темно-коричневого (клевер) цвета, с влажностью до 55%. Плохой испорченный сенаж имеет темно-коричневый или черный цвет, неприятный, навозоподобный запах, рН = 6 — 8. Такой сенаж непригоден для скармливания животным. Сенаж с влажностью более 55% оценивается, как силос. При оценке силоса и сенажа обращают внимание также на загрязненность их землей и пораженность плесенью. Корм, загрязненный землей или пораженный плесенью, удаляют и к скармливанию не допускают.

1.8.5.4. Доброкачественный жом светло-серого цвета, без запаха, содержит 0,1 — 0,2% органических кислот, масляная кислота отсутствует. Кислый жом плохого качества имеет грязно-серый цвет, запах масляной кислоты, рН = 3,4 — 4,4. Соотношение кислот: молочной — 20 — 25%, уксусной — 45 — 50%, масляной — до 30 — 35%. Общее количество кислот от 0,2 до 2,0%. Абсолютное количество масляной кислоты достигает 0,5 — 0,8%. Его нельзя скармливать сухостойным коровам и нетелям, лактирующим коровам и другим группам животных.

1.8.5.5. Для кормления скота используют преимущественно свежую барду. Не допускают к скармливанию животным барду, хранившуюся в открытых ямах длительное время. Такая барда имеет коричневый цвет и гнилостный запах. Соотношение кислот в ней: молочной до 25%, уксусной свыше 25%, масляной около 50% и более. Абсолютное количество масляной кислоты достигает 0,6%.

1.8.5.6. Доброкачественные концентрированные корма имеют соответствующий цвет и запах, влажность не более 15%.

Содержание вредных примесей (смеси ядовитых растений, спорыньи и головни) в фуражном зерне не должно быть более 1%, сорных примесей менее 8%. Не допускаются металлические примеси, стекло. Минеральные примеси (песок, земля, ил) не должны превышать в зернофураже 0,1 — 0,2%, в комбикорме, муке и отрубях — 0,8%.

В зерне, комбикорме и мучнистых кормах не допускается содержание плесени, а также сильно токсичных грибов.

Запрещается скармливать животным протравленное зерно. В хлопчатниковом жмыхе количество свободного госсипола не должно превышать 0,02%.

1.8.5.7. При оценке корнеплодов обращают внимание на загрязненность землей, пораженность гнилью и плесенью. Не разрешают скармливать загнившие, заплесневелые, мороженые, загрязненные землей корма.

1.8.5.8. В кормах необходимо учитывать содержание вредных и ядовитых веществ, предельно допустимые количества пестицидов, нитритов, нитратов и др. Предельно допустимое количество нитратов и нитритов в кормах для животных утверждено Главным управлением ветеринарии Госагропрома СССР по согласованию с Минздравом СССР (см. табл. 3).

Таблица 3

СОДЕРЖАНИЯ НИТРАТОВ И НИТРИТОВ В КОРМАХ

1.9. Во время диспансеризации проводят общую зоогигиеническую оценку ферм, учитывают состояние полов, стойл, боксов, дверей и других конструкций, устройство вентиляций и уровень воздухообмена, отопление, канализацию, способы уборки и удаления навоза, освещение, технологию содержания животных, раздачу кормов, распорядок дня, проверяют параметры температуры, влажности воздуха, содержания в нем аммиака, сероводорода и других газов (п. 7).

1.10 Анализ полученных данных.

При анализе результатов клинического исследования приводят в процентах число животных с болезнями сердца, тахикардией (свыше 80 ударов в минуту), учащенным поверхностным дыханием (свыше 30 в минуту), гипотонией и атонией преджелудков (менее трех сокращений рубца в 2 минуты), увеличением и болезненностью печени, истончением и остеолизисом последних ребер и хвостовых позвонков, маститами, бурситами, поражениями копытец и другими болезнями.

Результаты исследования мочи представляют так, чтобы было видно, какой процент исследованных проб в каждой из трех групп содержит ацетоновые тела (кетоновые), белок, низкий рН и др.

Результаты исследования крови сводят в таблицы с выделением трех групп животных, исчисляют процент проб с отклонениями от нормы исследуемых показателей.

2. АКУШЕРСКО-ГИНЕКОЛОГИЧЕСКАЯ ДИСПАНСЕРИЗАЦИЯ КОРОВ И НЕТЕЛЕЙ

Акушерско-гинекологическая диспансеризация — комплекс диагностических, лечебных и профилактических мероприятий, направленных на предупреждение, раннее выявление и лечение животных с заболеваниями половых органов и молочной железы, повышение их оплодотворяемости и продуктивности.

2.1 Анализ воспроизводства стада.

2.1.1. При анализе воспроизводства стада на ферме (хозяйстве) подсчитывают количество кормодней по коровам и половозрелым телкам за год. Так как на получение одного теленка затрачивается в среднем 315 дней (285 — плодоношение и 30 дней — послеродовой период), общее количество кормодней делят на 315 и находят количество телят, которое предусматривали получить за год. От этого количества отнимают практически полученный приплод и находят величину недополученного приплода. Умножив количество недополученного приплода за год на 315, определяют общее количество дней бесплодия.

2.1.2. Текущую характеристику состояния стада по воспроизводству проводят по следующим показателям (табл. 4).

Таблица 4

При проведении анализа воспроизводства стада маточное поголовье следует подразделить на восемь групп: 1) стельные; 2) в послеродовом периоде (3 — 4 недели после отела); 3) осемененные, но не проверенные на стельность; 4) не приходящие в охоту после отела через 25 — 30 дней и более; 5) с регулярными половыми циклами, многократно осемененные, но не оплодотворившиеся; 6) с нарушенным половым циклом; 7) с клинически выраженной патологией половых органов; 8) с клиническими признаками мастита.

Такое разделение маточного поголовья на группы позволяет более квалифицированно осуществлять дифференцированный подход к вопросам диагностики и профилактики бесплодия и яловости животных.

2.2. Акушерско-гинекологическое обследование коров и нетелей слагается из сбора анамнеза и клинического обследования, в случае необходимости проводят дополнительные лабораторные исследования.

2.2.1. Анамнестические сведения получают от лиц, которые постоянно наблюдают за животными (доярки, операторы, ветсанитар, техник по искусственному осеменению, бригадир фермы и др.), а также проверяя записи в книгах, журналах и карточках. Анамнез собирают по каждому животному (о состоянии здоровья, репродуктивных органах, отелах, задержании последа, болезнях, лечении, осеменении, удое и т.д.).

2.2.2. Клиническое обследование животного (наружное и внутреннее исследование половых органов).

При наружном исследовании пальпируют вульву, круп, седалищно-тазовые связки, брюшные стенки, определяют состояние кожи промежности и вульвы (выраженность складчатости кожи, наличие или отсутствие отечности, болезненности, повреждений, повышение местной температуры и др.). При выделении экссудата из наружных половых органов определяют его характер (цвет, запах, консистенцию и пр.).

Внутреннее исследование (вагинальное и ректальное).

При вагинальном исследовании осматривают слизистую преддверия влагалища, влагалища и влагалищной части шейки матки, определяют ее цвет, состояние поверхности, степень увлажненности, а также обращают внимание на форму, величину и положение шейки матки. При патологии на слизистой гениталий обнаруживают кровоизлияния, узелки, эрозии, сращения, рубцы, кисты, новообразования, скопления слизи или экссудата и др. Более детально исследуют влагалище и шейку матки пальпацией.

У здоровой коровы слизистая оболочка влагалища бледно-розового цвета, влажная. Влагалищная часть шейки матки расположена в центре краниальной части влагалища в виде бутона до 3 см в диаметре. Канал шейки матки обычно закрыт, кроме стадии возбуждения полового цикла, когда влагалищная часть шейки матки приобретает вид розетки диаметром до 5 см.

Ректальное исследование половых органов (шейки, тела, рогов матки, яйцепроводов и яичников) через стенку прямой кишки.

При ректальном исследовании коров и телок одновременно с диагностикой стельности определяют причины бесплодия животных. При ректальном методе диагностики заболеваний половых органов у бесплодных коров необходимо тщательно исследовать матку (шейку, тело, рога), яичники, диагноз следует ставить с учетом состояния матки и дисфункции яичников.

Выявление ранних сроков стельности (2 — 3 мес.) позволяет организовать контроль за оплодотворяемостью, своевременно принимать меры к повторному осеменению бесплодных животных, их лечению (при установлении причин бесплодия), правильно организовать работу на ферме по уходу, содержанию и кормлению, планировать удои, запуск коров, подготовку сухостойных коров и нетелей к отелу, получение приплода.

2.2.3. При акушерско-гинекологическом обследовании животных проводят лабораторные исследования: бактериологический и серологический контроль экссудата из влагалища, матки, шейки матки с целью выявления патогенных и условно патогенных микроорганизмов и определения их чувствительности к лекарственным препаратам.

Гистологическое исследование эндометрия, полученного методом биопсии, проводят для диагностики субклинических патологических состояний матки. При уточнении диагноза можно прибегать к цитологическому исследованию слизи (влагалищной или цервикальной).

Проведение комплексного обследования бесплодных животных дает возможность применить научно обоснованное лечение и значительно быстрее восстановить их воспроизводительную функцию.

2.2.4. При диагностике маститов проводят клиническое исследование вымени с пробным сдаиванием молока (секрета). При мастите характерны изменения внешнего вида вымени и секрета молочной железы. Клинически больными считают животных, у которых вымя увеличено в размере, болезненно, покрасневшее, повышена местная температура, молоко (секрет) изменены, содержат хлопья, сгустки, гной и т.д. Дифференцируют клинические формы мастита согласно классификации А.П. Студенцова (серозный, катаральный, фибринозный, гнойный, геморрагический и специфический).

2.2.5. Для диагностики скрытых маститов у лактирующих коров непосредственно на скотном дворе применяют 5-процентный водный раствор димастина или 2-процентный водный раствор мастидина и пробы отстаивания согласно «Методическим рекомендациям по борьбе с маститом коров», утвержденным МСХ СССР 1 июля 1983 года.

2.2.6. Особенности исследования вымени у коров в период запуска и сухостоя. Период запуска и сухостоя является наиболее удобным временем оздоровления коров, больных хроническим или подострым маститом, и профилактики послеродового мастита. Диагностика мастита в этот период затруднена, так как он чаще всего протекает со стертыми клиническими признаками. Поэтому всех коров за неделю до сухостоя, лучше в последний день запуска, нужно исследовать на мастит известными методами. Если при осмотре и пальпации не устанавливают признаков мастита, то проводят пробное сдаивание секрета и исследуют его быстрыми диагностическими тестами и пробой отстаивания.

Следует иметь в виду, что к концу лактации и во время запуска в секрете увеличивается количество соматических клеток, изменяются физико-химические свойства, в частности рН смещается в щелочную сторону. Поэтому димастиновая или мастидиновая пробы дают положительный результат во всех четвертях одинаково, но эта реакция выражена слабее, чем при воспалительных процессах.

При оценке результатов исследования необходимо принимать во внимание только резко положительные результаты из отдельных четвертей вымени. Положительные показания у запускаемых и сухостойных коров димастиновой или мастидиновой проб не являются основанием для постановки диагноза на мастит. Они в обязательном порядке должны подтверждаться результатами пробы отстаивания или бактериологическим исследованием. Если при отстаивании образуется осадок или при бактериологическом исследовании обнаружена патогенная микрофлора (стафилококки, стрептококки и др.), то в этом случае корову считают больной маститом.

У здоровых коров в начале сухостойного периода секрета вымени много, он жидкий, серовато- или желтовато-белого цвета без хлопьев. Через 3 — 4 недели секрета мало (3 — 5 мл); он вязкий, тягучий, клейкий (медообразный), желто-коричневого цвета, иногда серовато-белый или совсем отсутствует.

В пораженных четвертях вымени секрет жидкий, водянистый, иногда серый или прозрачный, содержит хлопья, сгустки и имеет разную степень реакции на растворы поверхностно-активных веществ.

Пробное сдаивание в первой декаде сухостойного периода, анализ секрета с последующим проведением лечебно-профилактических мероприятий позволяют в 80 и более процентах случаев предупредить возникновение мастита у коров в послеродовом периоде.

Для выделения и дифференциации основных возбудителей мастита и определения их чувствительности к антимикробным препаратам молоко (секрет) из положительно реагирующих и экссудат из больных четвертей вымени подвергают бактериологическому исследованию согласно «Методическим указаниям по бактериологическому исследованию молока и секрета вымени коров» и по «Определению чувствительности к антибиотикам возбудителей инфекционных болезней с.-х. животных», утвержденным Главным управлением ветеринарии МСХ СССР в 1983 и 1972 годах соответственно.

3. ДИСПАНСЕРИЗАЦИЯ БЫКОВ-ПРОИЗВОДИТЕЛЕЙ

3.1. Диспансеризацию быков-производителей проводят по методике, описанной в разделе 2. В дополнение к описанным методам клинического и лабораторного исследований осматривают мошонку, семенники, препуций, конечную часть пениса; ректально исследуют придаточные половые железы, ампулы спермиопроводов. При осмотре препуция и мошонки обращают внимание на их размеры, наличие повреждений, припухлости, истечений, эрозий, язв на коже и слизистой оболочке препуция и состояние волос. Пальпацией определяют тактильную и болевую чувствительность, а также температуру мошонки.

Половой член пальпируют через препуций. При наличии неровностей, уплотнений, узлов на конечной части пениса его осматривают вне препуция. Для этого делают проводниковую анестезию по В. Воронину или вводят 3 мл 2,5-процентного раствора рампуна.

Новообразования удаляют оперативным путем. При наличии акропоститов, баланопоститов необходимо исключить трихомоноз и кампилобактериоз (вибриоз); периорхитов, орхитов, эпидидимитов, фуникулитов исключить их туберкулезную или бруцеллезную этиологию.

Обращают внимание на отсутствие одного или обоих семенников (крипторхизм, гермафродитизм).

При исследовании органов движения обращают внимание на постановку, конфигурацию конечностей, координацию движений; характер движения быков перед садкой и после нее; во время моциона — наличие, вид и степень хромоты, состояние копытного рога, наличие заломов, состояние глазури и формы копытец. При необходимости проводят рентгенофотометрию последних хвостовых позвонков. Определяют степень проявления половых рефлексов, а также устанавливают качество спермы.

3.2. Один раз в квартал исследуют сперму и смывы из препуция на содержание микробных тел и колититр с учетом количества и вида содержащихся в ней микроорганизмов.

Определяют несколько групп микробной загрязненности спермы:

1. незначительно загрязненная — до 0,1 тыс. микробов в 1 мл спермы;

2. слабозагрязненная — до 2 тыс.;

3. среднезагрязненная — до 5 тыс.;

4. сильнозагрязненная — более 5 тыс.

Для осеменения используют сперму, содержащую не более 5 тыс. микробных тел в 1 мл; колититр неразбавленной спермы должен быть не более 1:10, а колититр из препуция не менее 1:100. Сперма непригодна к использованию, если колититр больше 1:10 или содержит вирусы, микоплазмы патогенные и токсические грибы или загрязнена патогенными или условно патогенными микроорганизмами.

При обнаружении повышенного количества непатогенной микрофлоры или наличии синегнойной палочки сперму исследуют трехкратно, с интервалом 6 — 10 дней. Если лечение в данном случае не эффективно, то животное выбраковывают.

С целью диагностики нарушения сперматогенеза в день взятия спермы необходимо исследовать ее на рН, дегидрогеназную активность; один раз в месяц — на содержание патологических по форме и мертвых спермиев в эякуляте. Оплодотворяющую способность спермы быков, которую определяют один раз в квартал, можно считать удовлетворительной, если после осеменения в первую половую охоту после отела не менее 60% коров остаются стельными.

3.3. Контролируя состояние обмена веществ, один раз в 15 дней исследуют мочу быков на содержание кетоновых тел и рН. Нормальной можно считать уровень кетоновых тел в моче по 4 — 6 мг% при рН = 7,2 — 8,6. Увеличение концентрации ацетона в моче более 10 — 15 мг% и изменение рН в кислую или щелочную сторону является показателем нарушения обмена веществ.

На основании анализа клинико-физиологических, биохимических исследований крови, мочи, спермы определяют состояние обмена веществ у быков-производителей; в случае установления отклонений устраняют причины, вызывающие нарушения.

4. ДИСПАНСЕРИЗАЦИЯ ПРИ ХИРУРГИЧЕСКИХ ЗАБОЛЕВАНИЯХ

При проведении комплексной диспансеризации животных обследуют на наличие травматических повреждений открытого и закрытого характера, гнойных и гнойно-некротических поражений, заболеваний кожного покрова, ротовой полости и зубов, глаз, заболеваний конечностей, проводят клинико-ортопедическое исследование пальца и копытец.

4.1 Исследование на наличие травматических повреждений.

Животных внимательно осматривают в покое и движении при выгоне их из скотных помещений или при передвижении к доильным установкам. Отмечают нарушение целостности кожи, асимметрию и дефигурацию в различных частях тела, анатомо-структурные изменения целостности мышц, связок, сухожилий, плоских и трубчатых костей, наличие хромоты. Определяют характер травматического повреждения (открытое, закрытое), его давность, загрязненность и наличие инородных тел.

4.2 Исследование на наличие заболеваний кожи.

Отмечают ссадины, царапины, потертости, облысение, шелушение эпидермиса, экземы, дерматиты, новообразования, раны, язвы, свищи, фолликулиты, фурункулы и т.д.

4.3 Исследование ротовой полости и зубов.

Методом анамнеза выясняют, наблюдались ли признаки нарушения приема корма и пережевывание его. Нарушения в приеме корма являются одним из клинических признаков наличия прикуса или заболевания мягких тканей или твердых тканей ротовой полости и зубов. Животных, у которых имеются признаки поражения ротовой полости и зубов, исследуют дополнительно; обращают внимание на положение головы при приеме корма, наличие припухлости и свищей в области челюстей. Осматривают ротовую полость, обращая внимание на состояние зубной системы, жевательной поверхности коренных зубов, наличие инородных тел, повреждений слизистой оболочки языка, твердого неба и десен, а также кариеса зубов.

В эндемических зонах обращают внимание на наличие признаков флюороза зубов. Характерными клиническими признаками этого заболевания является симметричность поражения зубов. На поверхности эмали резцов появляется диффузная бледно-желтая пигментация в виде единичных или множественных желтых, коричневых или темно-коричневых точек. Позднее отмечают разрушение зубов, они уменьшаются в размере, становятся шаткими, молочные резцы резко деформируются.

4.4 Исследование глаз.

Наружным осмотром обращают внимание на наличие слезотечения, цвет и характер выделений, консистенцию; наличие инородных тел, состояние кожи век (отек, кровоизлияние, ссадины, раны, опухоли, дерматиты и т.п.), состояние конъюнктивы (гиперемия, отек), роговицы (инфильтраты, язвы, рубцы).

При керато-конъюнктивитах инфекционной и инвазионной этиологии проводят лабораторные исследования. При риккетсиозе глаз исследуют мазки-соскобы с конъюнктивы и роговицы на наличие включений в эпителиальных клетках; при инфекционном керато-конъюнктивите проводят микробиологические исследования содержимого конъюнктивального мешка на наличие Moraxella bovis; при инвазионном керато-конъюнктивите промывают конъюнктивальный мешок и исследуют промывочную жидкость на наличие телязий; при инфекционном ринотрахеите (глазная форма) исследуют сыворотку крови больных животных (дважды, с интервалом в 10 дней) и мазки соскобов с конъюнктивы и роговицы на наличие вируса.

4.5 Исследование конечностей.

Проводят осмотр животного в покое, а при наличии выгульных площадок или доильных установок типа карусель и т.д. при движении, во время перегона.

Отмечают характер постановки конечностей и определяют ось пальцевых костей с фронтальной и боковой сторон.

При исследовании определяют также контуры свободных звеньев конечностей, мышечный тонус, наличие признаков парезов и параличей; состояние суставов, сухожильно-связочного аппарата, синовиальных влагалищ, бурс.

4.6 Исследование пальцев и копытец.

Учитывают постановку конечностей, ось пальцевых костей, угол наклона копытец, состояние роговой стенки, подошвы и мякиша (цвет и блеск капсулы, трещины, расседины, заломы, кольчатость, ранения, наличие тилом, ран, язвенных, гнойных и гнойно-некротических процессов).

При клинико-ортопедическом исследовании устанавливают степень отрастания или стирания подошвенной поверхности копытец, зоны наибольшего стирания, патологические изменения в области венчика (раны, флегмоны, асептические, хронические и острые воспалительные явления, стенки, подошвы (раны, язвы, флегмоны и т.д.), свода межкопытцевой щели (припухлость, свищи, язвы, раны, тиломы, фиксированные инородные тела в подошве и тканях свода межкопытцевой щели, раны и язвы кожи межпальцевого свода), а также другие гнойно-некротические процессы в области пальца и копытец и костно-суставной патологии в этой области.

При массовой деформации копытец выявляют наличие остеодистрофии у животных, используя для этих целей и ультразвуковую остеометрию.

При массовых гнойно-некротических поражениях копытец животных для дифференциальной диагностики исследуют на наличие тех или иных заболеваний путем лабораторных (бактериологические или биопроба) и клинических исследований.

В системе комплексной диспансеризации ортопедическую диспансеризацию необходимо проводить два раза в год (весной — апрель; осенью — октябрь).

При массовых и частых заболеваниях копытец разной этиологии дополнительно проводят текущую ортопедическую диспансеризацию раз в квартал. Выясняют частоту и характер заболеваний копытец, время проведения последней обрезки и расчистки их. Учитывают также условия содержания, кормления, характер животноводческих построек, вид полов, длину стойла, устройство кормушек и систему уборки навоза, характер подстилки, продуктивность и степень эксплуатации животных, продолжительность и условия моциона, наличие дезванн, степень использования их и периодичность смены дезрастворов, а также регулярность проведения дезинфекции и санации помещений.

В молочных комплексах с поточно-цеховой системой производства молока ортопедическую диспансеризацию, кроме того, проводят в период общей зооветеринарной подготовки стельных коров к переводу в цех сухостоя.

5. ЗООГИГИЕНИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ ЗА МИКРОКЛИМАТОМ В ПОМЕЩЕНИЯХ

5.1. Состояние микроклимата в животноводческих помещениях определяют раз в месяц в течение трех дней подряд утром, до начала работ, днем и вечером, после окончания работ.

Результаты исследований заносят в журналы и сравнивают с нормативными показателями (табл. 5).

Таблица 5

ПАРАМЕТРЫ МИКРОКЛИМАТА ПОМЕЩЕНИЙ ДЛЯ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА

Состояние отдельных факторов микроклимата контролируют в определенных точках.

По диагонали замеры проводят в трех точках помещения: в торцах, отступив от стен на 1 - 3 м, и в центре; по вертикали в зонах: 1-я зона для всех помещений - 0,60 м от потолка, две следующие - в помещениях для телят - 30 и 70 см от пола станка, а для крупного рогатого скота - 60 и 120 см от уровня пола стойла.

5.2. Температуру воздуха в помещениях измеряют ртутным или спиртовым термометрами, электротермометрами и термоанемометрами.

Продолжительность измерения температуры в одной точке не менее 10 мин.

Для непрерывной регистрации температуры в течение суток или недели используют самопишущие приборы - термографы М-16, М-16-Н.

5.3. Скорость движения воздуха определяют анемометрами и кататермометрами. Анемометр чашечный МС-13 и крыльчатый (ручной) типа АСО-3 используют для измерения скорости движения воздуха в вентиляционных каналах. При измерении малых скоростей воздуха (менее 1 м/с) используют кататермометры.

5.4. Влажность воздуха измеряют статическими (Августа) и аспирационными (Ассмана) психрометрами и гигрометрами. Для непрерывной регистрации и контроля относительной влажности воздуха в течение длительного периода применяют гигрографы.

Гигрографом типа М-ИА измеряют относительную влажность воздуха в пределах 30 - 100% в течение суток или недели в интервале температур 35 - 45 °С.

5.5. Содержание вредных газов (углекислого, аммиака, сероводорода) определяют специальными приборами - универсальными газоанализаторами.

Действие приборов основано на принципе свойств индикаторного порошка изменять окраску под действием газов.

Концентрацию газов определяют при помощи шкалы, измеряя длину окрашенной части индикаторного столбца после просасывания через него определенного количества воздуха.

5.6. Определение освещенности в помещениях. Различают освещенность естественную, искусственную и комбинированную. Для оценки освещенности помещений применяют светотехнический, более точный геометрический (косвенный) методы. Светотехническим методом определяют коэффициент естественной освещенности (КЕО).

Коэффициент естественной освещенности - это отношение освещенности точки, находящейся в помещении, к одновременной освещенности горизонтальной плоскости, расположенной вне помещения.

С помощью геометрического метода определяют световой коэффициент (СК) - отношение площади остекления к площади пола в помещении. Для определения естественной и искусственной освещенности помещений и наружного освещения применяют люксметры. Они бывают визуальные и объективные. Наиболее распространены в настоящее время люксметры Ю-16 и Ю-116.

Многократные исследования микроклимата помещений для крупного рогатого скота, проведенные в колхозе им. Горького, совхозах "Наро-Осановский", им. Ленина, "Ногинский", учхозе "Леоновское" в разные сезоны года показали несоответствие многих параметров требованиям зоогигиенических нормативов, в особенности в зимний стойловый период. Концентрация аммиака достигала 30 - 35 мг в кубометре воздуха при норме 15 - 20 мг/куб. м; углекислого газа - 0,35 - 0,40% при норме - 0,25%, относительная влажность - 85 - 90% при норме 7%, скорость движения воздуха была меньше 0,1 м/с при норме 0,3 - 0,5 м/с.

6. ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЭКОНОМИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ ПРИ ПРОВЕДЕНИИ ДИСПАНСЕРИЗАЦИИ ЖИВОТНЫХ

Экономические показатели при диспансеризации животных определяют путем сравнения данных прошлых лет с данными, полученными при последующей диспансеризации, следующими методами.

1. <a id="p100379"></a>У  = М x Ж x Ц - В ;
    1                ф

2. <a id="p100380"></a>У  = М  x (В  - В ) x Т x Ц;
    2    з     з    б

3. <a id="p100381"></a>У  = (К  x Р  x Р ) x С ;
    3     р    в    ф     п

4. <a id="p100382"></a>С   = 3,61 x Ц ;

        т1           1

            М  x (Т  - Т ) x К
             б     б    з     р

5. <a id="p100383"></a>У  = ------------------- x С ;

        4        Т  + Т            п
                  п    з

6. <a id="p100384"></a>У  = А  x (Ц  - Ц );
    5    п     з    б

7. <a id="p100385"></a>У  = М  x (Ц  - Ц );
    6    у     п    у

8. <a id="p100386"></a>ПУ  = М  x К  x К  - У;
     1    о    з    у

9. <a id="p100387"></a>ПУ  = М  x К  x Ж x Ц - У;
     2    л    л

10. <a id="p100388"></a>Э  = ПУ - З ;
     в         в

11. <a id="p100389"></a>Э  = Э  : З ,
     р    в    в

где:

У — ущерб от падежа и вынужденного убоя животных; 1

М — количество павших и вынужденно убитых животных;

Ж — средняя живая масса одного животного;

Ц — реализационная цена единицы продукции;

У — ущерб от снижения продуктивности животных; 2

В — выручка от реализации продуктов убоя; ф

М — количество заболевших животных; з

    В   и   В   -   среднесуточное    количество    продукции,   полученное
     з       б

соответственно от здоровых и больных животных в расчете на одну голову;

Т — средняя продолжительность переболевания;

У — ущерб от недополучения приплода вследствие яловости маток; 3

К — коэффициент рождаемости (для КРС — 1); р

Р — контингент маток для расплода; в

Р — фактическое количество родившихся телят; ф

С — условная стоимость одной головы приплода; п

С — стоимость теленка при рождении, полученного от коров молочных т1 пород;

3,61 — количество молока (ц), которое можно получить за счет кормов, расходуемых на образование одной головы приплода;

Ц — закупочная цена одного центнера молока базисной жирности; 1

У — ущерб от недополучения телят вследствие переболевания коров; 4

    Т   и  Т   - средняя продолжительность сервис-периода соответственно  у
     б      з

переболевших и здоровых коров;

Т — средняя продолжительность стельности; п

У — ущерб от снижения качества продукции или сырья, полученного от 5 переболевших, вынужденно убитых или павших животных;

    Ц  и  Ц  -   цены  реализации  единицы  продукции  (сырья),  полученной
     з     б
соответственно  от  здоровых  и  переболевших,  вынужденно  убитых и павших

животных;

У — количество животных, утративших племенную ценность; 6

    Ц  и Ц  - средняя цена реализации соответственно племенных и утративших
     п    у

племенную ценность животных;

ПУ — предотвращенный ущерб в результате профилактики и ликвидации 1 болезней;

М — среднегодовое поголовье животных в хозяйстве; о

К — коэффициент заболеваемости животных; з

К — коэффициент экономического ущерба на одно заболевшее животное; у

У — фактический экономический ущерб после проведения ветеринарно-санитарных мероприятий;

ПУ — предотвращенный ущерб в результате проведения лечебных 2 мероприятий;

М — количество животных, подвергнутых лечению; л

К — коэффициент летальности; л

Э — экономический эффект; ф

ПУ — предотвращенный ущерб;

З — экономическая эффективность на 1 рубль затрат. в

7. ЗАКЛЮЧЕНИЕ

7.1. Заключение о состоянии здоровья и обмена веществ животных дают на основании результатов клинических и лабораторных исследований, анализа кормления и содержания скота.

7.2. В заключении дают оценку клиническому статусу стада, состоянию обмена веществ, указывают преобладающую патологию и сопутствующие болезни, их основные причины, определяют лечебно-профилактические мероприятия.

7.3. Результаты диспансеризации представляют руководителю хозяйства для принятия необходимых организационно-хозяйственных мер. Их обсуждают в рабочих коллективах ферм, принимают меры для устранения недостатков, недопущения появления заболеваний животных.