Методические указания по диагностике гельминтозов животных
Актуально на 11.11.2026.
Как цитировать: "Методические указания по диагностике гельминтозов животных". https://bukva.ai/docs/metodicheskie-ukazaniya-po-diagnostike-minselhoz-sssr-ministerstvo-2
(рекомендованы Минсельхозом СССР 29.04.1980)
Примечание
Документ включен в Перечень нормативной документации, разрешенной для использования в государственных ветеринарных лабораториях при диагностике болезней животных, рыб, пчел, а также контроля безопасности сырья животного и растительного происхождения (утв. Россельхознадзором 30.07.2009 № 02-03-48/563).
Рекомендованы Минсельхозом СССР 29 апреля 1980 года
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО ДИАГНОСТИКЕ ГЕЛЬМИНТОЗОВ ЖИВОТНЫХ
1. Фасциолез жвачных животных <*>.
<*> При исследовании других трематодозов используют те же посуду и методы исследований.
1.1. Возбудители фасциолеза — трематоды рода Fasciola, локализуются в желчных ходах печени, желчном пузыре.
1.2. Характеристика возбудителей. Фасциола обыкновенная — крупная трематода листовидной формы, длиной 20 — 30 мм, шириной 8 — 12 мм; фасциола гигантская — удлиненной формы, длиной 33 — 76 мм, шириной 5 — 12 мм. Молодые формы фасциол из жидкости брюшной полости длиной 0,12 — 0,24 мм, шириной 0,08 — 0,14 мм, у них выражены ротовая и брюшная присоски, из паренхимы печени имеют разветвленные кишечные стволы, семенники и другие органы. Яйца фасциол овальной формы, золотистого или желто-коричневого цвета, длиной 0,12 — 0,15 мм, шириной 0,07 — 0,09 мм. На одном полюсе яйца находится крышечка, на противоположном — выступ (штифтик). По величине и форме яйца фасциол напоминают яйца парамфистомат, последние — серого цвета.
1.3. Для гельминтокопроскопических исследований необходимы: микроскоп биологический, предметные стекла, чашки Петри, стаканчики стеклянные или синтетические с верхним диаметром 4 — 5 см или мензурки медицинские — 50 мл, ситечки с капроновой сеткой (чулок), стеклянные палочки, металлические петли диаметром 8 — 10 мм, раствор азотнокислого свинца (уд. масса 1,5), гидрофильный целлофан (пленки размером 3x2 см), 50%-ный водный раствор глицерина или молочной кислоты, препаровальные иглы, денсиметр.
1.4. Приготовление флотационного раствора. Раствор азотнокислого свинца готовят из расчета 650 г на 1 л горячей воды. Соль растворяют в эмалированном ведре при постоянном размешивании и подогревании. Наилучшей флотационной способностью раствор обладает при температуре 20 — 22 °C.
1.5. Взятие и доставка проб фекалий. Пробы фекалий (10 г) берут рукой в резиновой перчатке из прямой кишки от 10%-ного поголовья ферм, но не менее 30 проб от возрастной группы или от каждой дойной коровы. Пробы доставляют в лабораторию в целлофановых мешочках или пергаментной бумаге, на краю которых ставят номер пробы, с сопроводительным документом, в котором указывают хозяйство (комплекс), отделение, цех, вид и количество животных в них, на какой гельминтоз исследовать и дату взятия проб. При исследовании коров номера (клички) на упаковке и в описи должны соответствовать.
1.6. Методика флотации. Пробу фекалий (3 г) помещают в стаканчик, заливают небольшим количеством раствора азотнокислого свинца и тщательно размешивают палочкой, добавляя раствор до объема 30 мл. Затем взвесь фильтруют через ситечко и отстаивают. Через 15 — 20 мин проволочной петлей снимают не менее 3 капель с поверхности взвеси, переносят на предметное стекло и микроскопируют. Чтобы не допустить быстрого высыхания и кристаллизации капель на предметных стеклах, к ним добавляют по капле 50%-ного водного раствора глицерина.
Яйца фасциол в растворе азотнокислого свинца деформируются (приобретают форму полумесяца). Их обнаруживают по золотистой или коричневой окраске. При добавлении капли дистиллированной воды к препарату форма яиц восстанавливается.
1.7. Методика седиментации по способу последовательного промывания. Пробу фекалий (3 г) кладут в стакан, заливают большим количеством воды и палочкой размешивают, добавляя воду до объема 30 мл. Смесь фильтруют через ситечко и отстаивают в течение 5 мин. Затем верхний слой сливают или отсасывают грушей до осадка, добавляют такое же количество воды и повторяют процедуру до тех пор, пока надосадочный слой не будет прозрачным. Верхний слой сливают, осадок порциями разливают на предметные стекла и микроскопируют. Яйца фасциол в воде приобретают овальную форму.
Флотационный метод Вишняускаса. Берут фекалии от овец (1 г), от крупного рогатого скота (3 г), помещают в ступку, заливают водой 40 — 50 мл, размешивают пестиком и фильтруют через металлическое сито в стакан емкостью 100 мл. Ступку прополаскивают водой. Фильтрат отстаивают 5 мин. Затем верхний слой отсасывают, оставляя на дне 20 мл осадка. К осадку добавляют 70 мл воды и вновь отстаивают 5 мин. Верхний слой жидкости сливают, оставляя на дне 10 мл, переливают в пробирки и центрифугируют в течение 1 мин при 1500 об/мин. Верхний слой сливают, к осадку добавляют раствор сернокислого цинка (450 г на 1 л воды) до образования мениска жидкости выше краев центрифужной пробирки. Центрифужную пробирку накрывают покровным стеклом так, чтобы стекло соприкасалось с поверхностью жидкости, центрифугируют при 1500 об/мин в течение 0,5 мин.
Яйца гельминтов всплывают и прилипают к покровному стеклу, которое помещают на предметное и микроскопируют под малым увеличением микроскопа.
1.8. Метод седиментации с целлофановыми пленками по Котельникову и Хренову. Пробу фекалий (3 г) помещают в стаканчик, заливают небольшим количеством воды и тщательно размешивают, доливая до объема 30 мл, фильтруют и отстаивают в течение 5 мин. Затем надосадочную жидкость сливают, а к осадку добавляют еще раз воду и отстаивают в течение такого же времени. После слива надосадочной жидкости осадок переносят на предметное стекло и покрывают целлофановой пленкой на 10 мин, выдержанной предварительно в 50%-ном водном растворе глицерина или молочной кислоте в течение 1 сут. Такая пленка просветляет препарат и предохраняет от высыхания. В закрытых чашках Петри пленки сохраняются в 50%-ном водном растворе глицерина или молочной кислоте длительное время.
1.9. Клинико-эпизоотологические особенности. Фасциолез животных протекает остро и хронически. При остром течении у молодых животных отмечают температуру до 41 °C, отек в подчелюстной области, геморрагический понос, иногда запор и тимпанию, атонию, аритмию сердца и увеличение печени. При хроническом течении животные угнетены, худеют, слизистые оболочки бледны и желтушны, печень увеличена.
В средней и северной полосе заражение животных происходит летом и осенью, на пастбищах или водопое (лужи, мочажины, болота, мелкие ручьи), где обитают моллюски (малый прудовик) — промежуточные хозяева фасциолы обыкновенной; в южных районах — в любое время года на водопое (пруды, прибрежная часть озер и заводи рек), где обитает ушковидный прудовик — промежуточный хозяин фасциолы гигантской.
1.10. Патологоанатомические изменения. При остром течении фасциолеза у животных отмечают слипчивый перитонит, перигепатит, поверхность печени покрыта густым слоем фибрина, в брюшной полости наличие большого количества экссудата, в двенадцатиперстной и тощей кишках имеются мелкие кровоизлияния; при хроническом течении — холангит, паренхиматозный интерстициальный гепатит, цирроз печени. Печень плотная, желчные протоки обызвествлены, закупорка желчных протоков известковыми образованиями. На разрезе желчных протоков вытекает буро-зеленоватая жидкость с фасциолами.
1.11. Гельминтологическое исследование. Фасциол обнаруживают в желчном пузыре и желчных протоках. Молодых (мигрирующих) фасциол находят в паренхиме печени или брюшной полости. Измельченную печеночную массу или жидкость брюшной полости по отдельности сливают в двойной марлевый мешочек (20x20 см) и промывают водой. Оставшийся осадок из мешочка сливают в чашку Петри, которую ставят на лист белой бумаги и исследуют под лупой или микроскопом.
Диагноз на фасциолез считают установленным при обнаружении в фекалиях яиц возбудителей и молодых фасциол в паренхиме печени или брюшной полости и взрослых паразитов в желчном пузыре, желчных протоках печени при вскрытии павших или вынужденно убитых животных.
2. Дикроцелиоз жвачных животных.
2.1. Возбудитель дикроцелиоза — трематода рода Dicrocelium, локализируется в желчных ходах печени и желчном пузыре.
2.2. Характеристика возбудителя. Трематода — мелкая, длиной 10 мм, шириной до 2,5 мм. Ротовая и брюшная присоски почти одинаковой величины. Яйца дикроцелии асимметричной формы, темно-коричневого или бурого цвета, длиной 0,038 — 0,45 мм, шириной 0,022 — 0,03 мм. На одном из полюсов яйца имеется крышечка. Яйца дикроцелии необходимо дифференцировать: от яиц эуритремы — темно-коричневого цвета, длиной 0,044 — 0,048 мм, шириной 0,032 — 0,036 мм, на одном полюсе яйца имеется крышечка, на противоположном — придаток в виде пуговки; от яиц скрябинемы — мелких, темно-бурого цвета, слегка асимметричных, длиной 0,02 — 0,035 мм, шириной 0,016 — 0,022 мм, на одном полюсе — крышечка, на противоположном — штифтик.
Необходимые приборы, посуда, флотационный раствор, взятие и и доставка материалов, методика флотации те же, что при исследовании на фасциолез (см. пп. 1.3 - 1.7).
2.3. Клинико-эпизоотологические особенности. При интенсивной инвазии у взрослых животных отмечают исхудание, угнетение, иногда отек в подчелюстной области, увеличение печени, изредка понос, снижение удоя.
Заражение животных происходит весной и осенью на пастбищах (кустарниковые, лесные участки, опушки леса, на склонах гор), где имеются в наличии промежуточные хозяева (сухопутные моллюски) и дополнительные (муравьи).
2.4. Патологоанатомические изменения. У животных обнаруживают катаральный холангит, билиарный цирроз. Желчные ходы плотные, в виде белых тяжей, содержат полужидкую буро-зеленоватую массу с гельминтами.
2.5. Гельминтологическое исследование. Дикроцелиев обнаруживают в желчных протоках и желчном пузыре, молодые формы находят в паренхиме печени. Размельченную руками печеночную массу сливают в двойной марлевый мешочек и промывают в воде. Оставшийся осадок из мешочка сливают в чашку Петри, которую ставят на лист белой бумаги и исследуют макроскопически или под лупой.
Диагноз на дикроцелиоз считают установленным при обнаружении в фекалиях яиц возбудителей и молодых дикроцелиев в паренхиме печени, желчных протоках и взрослых паразитов — в желчном пузыре при вскрытии павших или вынужденно убитых животных.
3. Парамфистоматозы жвачных животных.
3.1. Возбудители парамфистоматозов — трематоды родов Paramphistomum, Liorchis, Calicophorum, Gastrothylax, локализуются в рубце, реже — в сетке.
3.2. Характеристика возбудителей. Половозрелые трематоды розово-вишневого цвета, грушевидной или веретенообразной формы, длиной 6 — 20 мм и шириной до 6 мм. У парамфистомат брюшная присоска расположена близко от заднего конца, крупная, заметна невооруженным глазом. Молодые формы парамфистомат из кишечника и сычуга длиной 2 — 4 мм, подвижные, на заднем конце имеют выраженную присоску (характерный признак). Яйца овальной формы, серой окраски, с крышечкой на одном конце и с едва заметным штифтиком — на другом, внутри — желточные клетки в виде шаров, которые заполняют объем яйца не полностью, длиной 0,1 — 0,13 мм, шириной — 0,06 — 0,1 мм. Яйца возбудителей разных родов парамфистомат сходны, и по ним нельзя поставить диагноз. Их необходимо дифференцировать от яиц фасциолы. Яйца фасциолы золотистой или желто-коричневой окраски, и желточные клетки заполняют весь их объем.
3.3. Необходимые приборы, посуда, флотационный раствор, взятие и доставка материалов, методика флотации те же, что при исследовании на фасциолез (см. пп. 1.3 - 1.7).
3.4. Клинико-эпизоотологические особенности. Болезнь протекает остро и хронически. Острое течение бывает чаще у молодняка крупного рогатого скота 1 — 2-летнего возраста. Через 3 — 4 нед после выпуска на пастбище у телят поднимается температура до 39 °C, наблюдают угнетение, понос, отек подгрудка, межчелюстной области, потерю аппетита, атонию рубца, истощение, слизистые оболочки бледные. При надавливании на область живота позади мечевидного отростка у коров отмечают боль, как при травматическом ретикулоперитоните. При хроническом течении болезни у животных наблюдают понос и исхудание.
Животные заражаются в течение выпасного сезона в местностях с низменными заболоченными пастбищами и мелкими водоемами, в которых обитают моллюски (катушки) — промежуточные хозяева возбудителей.
3.5. Патологоанатомические изменения. У животных при остром течении болезни обнаруживают в брюшной полости красноватую жидкость, стенка сычуга и двенадцатиперстной кишки геморрагически воспалена, слизистая оболочка набухшая, изъязвлена, покрыта беловатыми наложениями и узелками величиной до горошины. При хроническом течении болезни отмечают в рубце, на месте прикрепления парамфистомат, атрофию ворсинок рубца, в сычуге и в тонком отделе кишечника — признаки гастродуоденита.
3.6. Гельминтологическое исследование. Со слизистой оболочки двенадцатиперстной кишки и пилорической части сычуга делают соскобы, помещают на предметное стекло и микроскопируют с целью обнаружения мигрирующих парамфистомат. Половозрелых парамфистомат находят визуально в рубце между ворсинками.
Диагноз на парамфистоматозы считают установленным при обнаружении в фекалиях яиц возбудителей и молодых парамфистомат в слизистой оболочке двенадцатиперстной кишки, сычуга и взрослых паразитов в рубце при вскрытии павших или вынужденно убитых животных.
4. Цестодозы жвачных животных.
4.1. Возбудители цестодозов — гельминты родов Moniezia, Thysaniezia, Avitellina, вызывающие мониезиоз овец, коз, крупного рогатого скота, тизаниезиоз и авителлиноз овец, коз и других жвачных, локализуются в тонком отделе кишечника.
4.2. Характеристика возбудителей. Мониезия — длиной до 5 — 10 м, желто-белого цвета, членики широкие, половые отверстия открываются по обеим сторонам каждого членика. Яйца мониезии вида M. expansa имеют форму почти правильного шестигранника с закругленными углами (во флотационном растворе имеют форму неправильного треугольника). M. benedeni — длиной 2,5 — 4 м, ширина членика до 26 мм. В передней части члеников расположены межпроглоттидные железы так называемого линейного типа. Яйца M. benedeni — 10- или 12-гранной формы (во флотационном растворе имеют форму неправильного четырехугольника, реже — пятиугольника), имеют грушевидный аппарат с округлой онкосферой с 6 крючками. Тизаниезия — широкая и толстая лента, длиной до 5 м, молочно-серого цвета, половые отверстия открываются с разных сторон члеников. Яйца тизаниезии заключены в капсулы; в зрелом членике насчитывают до 2000 капсул (по 3 — 8 в капсуле); яйца без грушевидного аппарата, округлые, внутри — онкосфера с 6 крючками. Авителлина — узкая лента с плохо выраженной членистостью, длиной до 2 м, задняя половина стробилы похожа на шнур, посредине цестоды тянется светлая полоса, половые отверстия открываются с разных сторон члеников. Яйца авителлины располагаются в капсулах (по 4 — 6 в капсуле), овальной формы, внутри — онкосфера с 6 крючочками, грушевидный аппарат отсутствует.
4.3. Для гельминтокопроскопических исследований необходимы: микроскоп биологический, предметные и покровные стекла, чашки Петри, стаканчики стеклянные или синтетические с верхним диаметром 4 — 5 см или мензурки медицинские — 50 мл, ситечки с капроновой сеткой (чулок), стеклянные палочки, металлические петли диаметром 8 — 10 мм, раствор аммиачной селитры (уд. масса 1,3), приготовленный из расчета 1500 г соли на 1 л горячей воды, ручная лупа, влагалищное зеркало для мелких животных, резиновая спринцовка, кюветы, денсиметр, 50%-ный водный раствор глицерина.
4.4. Гельминтоскопия: а) осматривают свежевыделенные фекалии овец (5 — 10% из отары) рано утром или после дневного отдыха на пастбище с целью обнаружения и сбора члеников цестод с последующим их определением; б) у 50 — 100 животных специалист одним или двумя пальцами правой руки (с резиновыми наконечниками) извлекает из прямой кишки порции фекалий и просматривает на наличие члеников; для сбора члеников авителлины используют ручную лупу, держа ее в левой руке. Животное фиксируют, резиновой спринцовкой вливают в прямую кишку 100 — 150 мл охлажденной воды и вводят влагалищное зеркало, через которое шарики свободно выбрасываются наружу. В кювете шарики осматривают на наличие члеников, которые располагаются на их поверхности.
Членики мониезии — желто-белого цвета, в виде удлиненных образований 9 — 26 мм, короткие и широкие, иногда подвижны, толщина членика около 1 мм. Членики тизаниезии — белого цвета, ширина 5 — 7 мм, толщина 2 мм, толстые, не растягиваются, внешне похожи на зерна отварного риса. Для дифференциальной диагностики берут членики на предметное стекло, разрушают в капле воды, накрывают покровным стеклом и микроскопируют: из члеников мониезии обнаруживают яйца, из члеников тизаниезии — капсулы с яйцами. Членики авителлины — мелкие, величиной с маковое зерно, округлые, молочно-белого цвета, вкраплены в фекальные шарики.
4.5. Методика флотации. Пробы фекалий можно исследовать суточной давности на мониезиоз и тизаниезиоз, которые отбирают от 5%-ного поголовья отары, но не менее 25 голов (проб). Пробу фекалий (3 г) кладут в стакан, заливают небольшим количеством раствора и тщательно размешивают палочкой, добавляя раствор до 30 мл. Затем взвесь фильтруют через ситечко и отстаивают в течение 10 — 15 мин. Металлической петлей снимают не менее 3 капель с поверхности взвеси, переносят на предметное стекло и микроскопируют с целью обнаружения яиц мониезии и капсул тизаниезии. Обнаруживают яйца стронгилят пищеварительного тракта, трихоцефалы, стронгилоидеса и других гельминтов. Чтобы не допустить быстрого высыхания и кристаллизации капель на предметных стеклах, к ним добавляют по капле 50%-ного водного раствора глицерина.
4.6. Клинико-эпизоотологические особенности цестодозов. Мониезиозом болеют ягнята и телята текущего года рождения. Ягнята отстают в росте и развитии, теряют аппетит, отмечают жажду, отеки нижних частей тела, анемию слизистых оболочек, понос, в испражнениях находят членики цестод. Мониезиозом, вызываемым M. expansa, ягнята заболевают после выгона на неблагополучные пастбища, членики цестоды в фекалиях обнаруживают через 30 — 40 дней после начала выпаса; болезнь длится в течение лета. Мониезиоз вида M. benedeni в средней полосе у овец проявляется в конце лета и осенью. У телят признаки болезни сходны, но менее выражены. К тизаниезиозу восприимчивы овцы 1 — 2 лет и старше. Отмечают угнетение, слюнотечение, бледность конъюнктивы, судорожное сокращение мускулатуры тела, скрежет зубами, нарушение координации движений. У ягнят текущего года рождения обнаруживают цестод в конце лета и осенью. У овец 1 — 2 лет и старше наибольшую инвазированность в средней полосе отмечают зимой. Максимальная зараженность овец в Восточной Грузии падает на лето, в Узбекистане и Казахстане — на осень и зиму. Авителлинозом болеют ягнята и взрослые овцы. Отмечают усиленную перистальтику, понос, запор, вздутие, колики, скрежет зубами, одышку, учащенное сердцебиение, манежные движения, шаткую походку, аппетит отсутствует. Наблюдают случаи скоротечной гибели овец. Болезнь регистрируют на юге Казахстана, в Средней Азии, в Закавказье. Ягнята заражаются летом, инвазия нарастает осенью и зимой.
4.7. Патологоанатомические изменения. При мониезиозе — трупы ягнят истощены, слизистые оболочки анемичны, селезенка незначительно увеличена, легкие отечны, мышцы сердца дряблые, брыжеечные лимфатические узлы увеличены. В участках прикрепления мониезий слизистая оболочка кишечника утолщена, покрыта слизью, складчатая, с полосчатыми кровоизлияниями. При тизаниезиозе — у овец отмечают явления катарального и геморрагического воспаления слизистой оболочки тонкого отдела кишечника. При авителлинозе — рубец и петли кишечника вздуты газами, выражены признаки геморрагического или катарального энтерита, легкие отечны.
4.8. Гельминтологическое исследование. Цестод обнаруживают при вскрытии тонкого отдела кишечника. В несвежих трупах цестоды лизируются.
Диагноз на цестодозы считают установленным при обнаружении в фекалиях члеников или яиц и капсул возбудителей и цестод в тонком отделе кишечника при вскрытии павших или вынужденно убитых животных.
<*> Аналогично проводят исследования на неоаскаридоз крупного рогатого скота и аскаридиоз кур.
5.1. Возбудитель аскаридоза — нематода рода Ascaris, паразитирует в тонком отделе кишечника, а личинки поражают лимфатические узлы, легкие, печень.
5.2. Характеристика возбудителя. Аскариды — крупные, белого цвета, длиной 10 — 50 см. Яйца аскариды овальной формы, темно-коричневого или бурого цвета, покрыты толстой бугристой оболочкой, длиной 0,05 — 0,087 мм. Личинки аскариды, выделенные из печени, белого цвета, имеют темное содержимое в области кишечника, 0,23 — 0,3 мм. Личинки, выделенные из легких, беловатого цвета, имеют сформированные пищевод и кишечник, длиной 0,65 — 1,12 мм.
5.3. Для гельминтокопроскопических исследований необходимы микроскоп, предметные и покровные стекла, стаканчики или мензурки на 50 мл, палочки, ситечки, металлические петли, раствор аммиачной селитры (уд. масса 1,3), денсиметр, 50%-ный водный раствор глицерина.
5.4. Приготовление флотационного раствора. Раствор аммиачной селитры готовят из расчета 1500 г на 1 л горячей воды. Соль растворяют в эмалированном ведре при постоянном помешивании и подогревании. Наилучшей флотационной способностью раствор обладает при температуре 20 — 22 °C.
5.5. Взятие и доставка проб фекалий. Пробы фекалий берут рукой в резиновой перчатке из прямой кишки у поросят от 10%-ного поголовья, но не менее 30 проб от группы, доставляют в лабораторию в целлофановых мешочках или пергаментной бумаге, на краю которых ставят номер пробы, с сопроводительным документом. В последнем указывают хозяйство (комплекс), отделение, цех, вид, количество животных в них, на какой гельминтоз исследовать и дату взятия проб. В случае отрицательного результата для повторного исследования пробы фекалий берут через месяц.
5.6. Методика флотации. Пробу фекалий (3 г) помещают в стаканчик, заливают небольшим количеством раствора аммиачной селитры и тщательно размешивают палочкой, добавляя раствор до объема 30 мл. Затем взвесь фильтруют через ситечко и отстаивают в течение 15 — 20 мин. Проволочной петлей снимают не менее 3 капель с поверхности взвеси, переносят на предметное стекло и микроскопируют. Чтобы не допустить быстрого высыхания и кристаллизации капель на предметных стеклах, к ним добавляют по капле 50%-ного водного раствора глицерина.
5.7. Клинико-эпизоотологические особенности. Поросята заражаются в первые дни жизни в помещении в течение круглого года, на выгулах, при поедании дождевых червей, инвазированных личинками аскариды.
При интенсивной инвазии у поросят различают две стадии болезни. Во время первой, миграционной, стадии у поросят появляются кашель, хрипы в легких, носовые истечения, повышенная температура тела, рвота, судороги, крапивница, сыпь. Вторая, кишечная, стадия протекает с рвотой, понижением аппетита, отставанием в росте и развитии. У взрослых свиней аскаридоз протекает обычно бессимптомно.
5.8. Патологоанатомические изменения. Печень покрыта множественными беловатыми очагами (1 — 5 мм) и на разрезе полнокровная. В легких и печени находят точечные и пятнистые кровоизлияния, в легких отмечают пневмонию. Слизистая оболочка тонкого отдела кишечника воспалена. При большом скоплении аскарид обнаруживают закупорку или разрывы кишечника, протоков печени и поджелудочной железы.
5.9. Гельминтологическое исследование. Аскарид обнаруживают при разрезе тонкого отдела кишечника, иногда — в протоках печени и поджелудочной железе.
Личинок аскариды выделяют из печени и легких методом Бермана. Измельченные легкие и печень закладывают в воронки по отдельности и заливают водой температурой 40 °C. Через 3 — 6 ч из пробирок надосадочную жидкость сливают, а осадок исследуют под микроскопом с целью обнаружения личинок.
Диагноз на аскаридоз считают установленным при обнаружении в фекалиях яиц возбудителя и личинок в паренхиме печени, легких, поджелудочной железе и взрослых паразитов в тонком отделе кишечника при вскрытии павших или вынужденно убитых животных.
<*> На трихоцефалез других животных проводят исследования аналогично.
6.1. Возбудители трихоцефалеза — нематоды рода Trichocephalus, локализуются в толстом отделе кишечника.
6.2. Характеристика возбудителей. Трихоцефалы белого цвета, длиной 20 — 53 мм, имеют тонкий длинный головной конец, задний конец тела толстый и короткий. Яйца трихоцефалы бочкообразной формы, с пробочкой на каждом полюсе, коричневого цвета, длиной 0,052 — 0,061 мм.
Необходимые приборы, посуда, флотационный раствор, взятие и доставка материалов, методика флотации те же, что при исследовании на аскаридоз (см. пп. 5.3 - 5.6).
6.3. Клинико-эпизоотологические особенности. Поросята заражаются в 2 — 6-месячном возрасте в помещении в течение круглого года и на выгулах.
При интенсивной инвазии у поросят отмечают исхудание, кратковременное повышение температуры тела, понос с кровью, иногда запор, извращенный аппетит, судороги, манежные движения или позу сидячей собаки. У взрослых свиней инвазия протекает бессимптомно.
6.4. Патологоанатомические изменения. У поросят отмечают катаральный гастроэнтерит, катарально-дифтерический колит и проктит, дистрофию паренхиматозных органов, отек легких и катаральный лимфаденит.
6.5. Гельминтологическое исследование. В просвете толстого отдела кишечника, чаще в слепой кишке, обнаруживают трихоцефалов (власоглавов), внедрившихся головным концом в слизистую оболочку кишок.
Диагноз на трихоцефалез считают установленным при обнаружении в фекалиях яиц возбудителей и взрослых паразитов при вскрытии павших или вынужденно убитых животных.
7.1. Возбудитель параскаридоза — нематода рода Parascaris, паразитирует в тонком отделе кишечника лошади, осла, мула.
7.2. Характеристика возбудителя. Нематода белого цвета, веретенообразная, длиной 15 — 37 см. Яйца круглой формы, 0,07 — 0,09 мм в диаметре, с толстой гладкой оболочкой, темно-коричневого цвета, внутри — округлая зародышевая клетка; неоплодотворенные яйца светлые.
Необходимые приборы, посуда, флотационный раствор, методика флотации те же, что при исследовании на аскаридоз (см. пп. 5.3 - 5.4 и 5.6).
7.3. Взятие и доставка проб фекалий. Пробу фекалий (10 г) берут рукой в резиновой перчатке из прямой кишки от 5%-ного поголовья табуна, но не менее 25 проб.
7.4. Клинико-эпизоотологические особенности. Жеребята болеют тяжело в возрасте 5 — 12 мес. Отмечают бронхопневмонию, кашель, истечение из носа, угнетение, учащенное дыхание, повышение температуры, понос, запор, легко проходящие колики, аппетит непостоянный, живот увеличен, жеребята худеют, плохо растут и развиваются, наблюдают судороги, парез зада. У взрослых лошадей параскаридоз протекает бессимптомно.
Животные заражаются в первые дни после рождения. Жеребят начинают обследовать с 1_{2}^{1} - \text{месячного} возраста. У жеребят, родившихся весной, параскаридоз достигает наибольшего подъема в августе — сентябре, а у жеребят, родившихся зимой, в мае — июне. Высокая инвазированность отмечается у лошадей конюшенно-пастбищного содержания. Лошади культурных пород более восприимчивы к инвазии.
7.5. Патологоанатомические изменения. При массовой миграции личинок в печени и легких обнаруживают узелки с очагами некроза в центре, в легких отмечают пневмонию. При кишечной стадии заболевания находят катаральный гастрит, энтерит с диффузными очаговыми кровоизлияниями и изъязвлениями стенки кишечника.
7.6. Гельминтологическое исследование. Параскарисов обнаруживают в тонком отделе кишечника. Мигрирующих личинок параскариса выделяют из печени и легких. Для этого органы в теплом виде измельчают руками или ножницами, по отдельности закладывают в аппарат Бермана, в воронки которого наливают воду температурой 40 °C. Через 3 — 6 ч осадок в пробирках исследуют на наличие личинок. Личинки, выделенные из печени и легких, беловатой окраски, червеобразной формы, длиной от 0,5 до 1 мм, сформированы пищевод и кишечник.
Диагноз на параскаридоз считают установленным при обнаружении в фекалиях яиц и параскарисов в тонком отделе кишечника и личинок в печени и легких при вскрытии павших или вынужденно убитых животных.
8. Стронгилятозы пищеварительного тракта жвачных животных.
8.1. Возбудители стронгилятозов — нематоды родов Trichostrongylus, Haemonchus, Nematodirus, Cooperia, Ostertagia, Oesophagostomum, Chabertia, Bunostomum и другие вызывают заболевания трихостронгилез, гемонхоз, коопериоз, остертагиоз, эзофагостомоз, хабертиоз, буностомоз овец, коз, крупного рогатого скота и других животных.
Трихостронгилы, кооперии, остертагии локализуются в тонком отделе кишечника, сычуге; гемонхи — в сычуге; нематодиры, буностомы — в тонком отделе кишечника; эзофагостомы и хабертии — в толстом отделе кишечника.
8.2. Характеристика возбудителей. Нематоды мелкие, длиной от 3 — 7 до 26 — 34 мм, имеют ротовую капсулу, у самцов на хвостовом конце — спикулы и бурса. Яйца светло-серые, овальной или удлиненной формы, скорлупа гладкая, внутри шары дробления. Яйца стронгилят, кроме нематодиры, сходны, и по ним ставят общий групповой диагноз на стронгилятозы. Яйца нематодиры величиной 0,11 — 0,23x0,07 — 0,13 мм, крупнее яиц других стронгилят в 1,5 — 2,5 раза, у полюсов заострены, в центре — крупные шары дробления.
Необходимые приборы, посуда, флотационный раствор, взятие и доставка материалов, методика флотации те же, что при исследовании на аскаридоз (см. пп. 5.3 - 5.6).
8.3. Методика культивирования личинок стронгилят и ларвоскопии. Для культивирования личинок пробы фекалий (10 г) кладут в чашки Петри, слегка овлажняют, закрывают крышкой и ставят в термостат при температуре 25 — 30 °C. Ежедневно чашки открывают для аэрации и слегка овлажняют. Через 7 — 10 дн. пробы закладывают в аппарат Бермана, заливают водой температурой 40 °C и оставляют на 4 — 6 ч. Затем надосадочную жидкость сливают, а осадок выливают каплями на предметное стекло и микроскопируют. Для обездвиживания личинок к осадку в пробирку или в препарат добавляют 1 — 2 капли 0,1%-ного раствора йода или несколько капель 3%-ного водного раствора формалина.
8.4. Особенности инвазионных личинок стронгилят. Личинок дифференцируют по величине, количеству, форме и расположению кишечных клеток, по форме хвостового конца и другим признакам.
Личинки нематодиры — крупные, длиной 1,2 — 2 мм, конец чехлика длиной 0,3 — 0,37 мм, нитевидный; хвостовой конец, находящийся внутри чехлика личинки, оканчивается тремя шипами. Кишечные клетки трапециевидной формы, расположены в один ряд, в количестве 8.
Личинки трихостронгилы — малой величины, 0,65 — 0,77 мм, хвостовой конец, находящийся в чехлике, оканчивается шипиком, короткий, кишечные клетки в форме треугольников (острыми углами направлены вперед и назад), расположены в два ряда, в количестве 16.
Личинки гемонха — небольшой величины, длиной 0,7 — 0,8 мм, с нитевидно оканчивающимся хвостовым концом чехлика, шипик на хвостовом конце отсутствует, кишечные клетки расположены в два ряда, треугольной формы, в количестве 16, две последние клетки неравной длины округло-веретенообразной формы и оканчиваются на одном уровне.
Личинки остертагии — крупные, длиной 0,83 — 0,95 мм, хвостовой конец чехлика короткий, кишечные клетки треугольной формы, расположены в 2 ряда, в количестве 16, половой зачаток (тельце овальной формы) расположен ближе к пищеводу, чем к анусу.
Личинки кооперии — крупные, длиной 0,83 — 0,99 мм, хвостовой конец чехлика относительно длинный, нитевидно истонченный, кишечные клетки треугольной формы, в количестве 16, расположены в 2 ряда, половой зачаток расположен ближе к анусу, чем к пищеводу.
Личинки эзофагостомы — крупные, длиной 0,75 — 0,90 мм, хвостовой конец чехлика длинный, составляет около 1/3 части длины личинки, нитевидно истонченный, кишечные клетки расположены в 2 ряда, у видов O. radiatum и O. columbianum (от крупного рогатого скота) — треугольной формы, в количестве 20, у вида O. asperum (от овец и коз) — кишечные клетки формы округлых кирпичиков, в количестве 32. Половой зачаток, величиной с половину кишечной клетки, расположен на середине длины кишечника.
Личинки хабертии длиной 0,71 — 0,88 мм, нитевидный хвостовой конец чехлика короткий, составляет 1/4 части длины личинки, хвостовой конец личинки короче, чем таковой у эзофагостомы, кишечные клетки в количестве 32, формы округлых кирпичиков, расположены в 2 ряда.
Личинки буностомы — небольшие, длиной 0,52 — 0,63 мм, с длинным нитевидным хвостовым концом чехлика, кишечник недифференцирован на клетки (характерный признак), представлен сплошной гомогенной массой.
8.5. Клинико-эпизоотологические особенности заболеваний. У молодняка отмечают пониженный аппетит, бледность слизистых оболочек, понос с примесью крови, усиленную жажду, повышение температуры. При интенсивной инвазии отмечают гибель молодняка от анемии и истощения. При буностомозе телята лижут больные ноги (заражение происходит через кожу), при нематодирозе у ягнят отмечают стоны при дефекации, при эзофагостомозе у ягнят при ректальной пальпации находят узелки на стенке прямой кишки, которые не смещаются.
Животные заражаются на пастбище. В степных и лесостепных районах трихостронгилидозы наблюдают весной, летом и осенью. В Средней Азии овцы заражаются круглый год. В Западной Сибири наблюдают клинику и гибель ягнят от нематодироза с июня по сентябрь. Остертагиозом крупный рогатый скот поражается в возрасте от года до 6 лет.
8.6. Патологоанатомические изменения. При хабертиозе у овец стенка ободочной, нередко и прямой кишки студенисто инфильтрированная, слизистая оболочка кишок отечная, усеянная точечными кровоизлияниями, в коричневой слизи ободочной кишки находят паразитов. При трихостронгилезе — выражены воспалительные явления в двенадцатиперстной кишке и сычуге. При гемонхозе — слизистая оболочка сычуга в результате скопления гемонхов красного цвета покрыта как бы войлоком, утолщена, усеяна геморрагиями. В трупах гемонхов находят в содержимом сычуга.
При нематодирозе у овец отмечают стенку тонкого отдела кишечника утолщенной, слизистая оболочка гиперемированная, отечная, с мелкими кровоизлияниями, в просвете кишечника находят много слизи, где имеются паразиты красного цвета. При коопериозе у животных в тонком отделе кишечника и в сычуге имеются воспалительные явления, в стенке кишок встречают узелки, содержащие крупных неполовозрелых кооперий. При остертагиозе находят в сычуге телят признаки гастрита с гиперемией слизистой, зимой обнаруживают на стенке сычуга узелки, в которых находят личинки паразитов.
При эзофагостомозе у овец в стенке толстого отдела кишечника обнаруживают воспаление и узелки (от макового зерна до мелкого ореха), в которых находят личинок, а также язвенные поражения слизистой и подслизистой оболочек толстых кишок; у крупного рогатого скота обнаруживают сходные поражения с узелками величиной до 2 мм в стенке толстого отдела кишечника.
8.7. Гельминтологические исследования сычуга и кишечника. Хабертии, буностомы, эзофагостомы, гемонхи, кооперии, нематодиры обнаруживают невооруженным глазом при вскрытии сычуга и кишечника, извлекают и консервируют жидкостью Барбагалло для последующего определения. Трихостронгилы и остертагии собирают при исследовании сычуга и кишечника. Для этого кишки по отдельности разрезают ножницами по стороне, противоположной прикреплению брыжейки. Содержимое их промывают водой 2 — 3 раза, осадок выливают в мешочки из мельничного газа, завязывают и прополаскивают в воде до полного прекращения отделения мути. Затем в лаборатории осадок просматривают частями с помощью лупы в чашке Петри и выбирают гельминтов кисточкой или препаровальной иглой.
Диагноз на заболевания считают установленном при обнаружении в фекалиях яиц или личинок возбудителей, а также выявлении стронгилят в кишечнике и сычуге павших и вынужденно убитых животных.
9. Диктиокаулез жвачных животных <*>.
<*> Аналогично проводят исследования на другие стронгилятозы легких мелкого рогатого скота.
9.1. Возбудители — нематоды рода Dictyocaulus у овец, коз, крупного рогатого скота, северных оленей, паразитируют в бронхах и трахее.
9.2. Характеристика возбудителей. Нитевидные белого цвета нематоды, длиной от 17 до 150 мм, у самцов на хвостовом конце имеется половая бурса и 2 спикулы желтого или коричневого цвета. Личинки D. filaria крупные, длиной 0,5 — 0,52 мл, на головном конце бугорок (характерный признак), который заметен при большом увеличении микроскопа. Задняя часть личинки зернистая и темная, передняя — светлая. У личинок D. viviparus длиной 0,31 — 0,36 мм головной конец закругленный, хвостовой — короткий и заостренный, оба конца светлые, в средней части — зернистость сероватого цвета. Личинки D. eckerti длиной 0,27 — 0,41 мм имеют бугристую поверхность тела, на головном конце — ротовое отверстие в виде слабо выраженной пуговки, хвостовой конец конически заострен, тело сплошь заполнено мелкой зернистостью.
9.3. Для гельминтокопроскопических исследований необходимы: микроскоп биологический, предметные и покровные стекла, аппарат Бермана, стаканчики стеклянные или синтетические с верхним диаметром 4 — 5 см или мензурки медицинские — 50 мл, стеклянные палочки, металлические петли диаметром 8 — 10 мм, флотационный раствор сульфата цинка (уд. масса 1,24), денсиметр, марлевые салфетки, кюветы.
9.4. Приготовление флотационного раствора. Раствор сульфата цинка готовят из расчета 400 г на 1 л горячей воды. Соль растворяют в эмалированном ведре при постоянном помешивании и подогревании. Наилучшей флотационной способностью раствор обладает при температуре 20 — 22 °C.
9.5. Взятие и доставка проб фекалий те же, как при аскаридозе свиней (см. п. 5.5).
9.6. Методика ларвоскопического исследования. Фекалии исследуют в день их взятия. При невозможности проведения исследований допускают хранение их в холодильнике 1 сут.
Методика Бермана. Пробы фекалий (10 г), завернутые в кусочки марли, помещают в воронки аппарата Бермана, заливают водой температурой 40 °C, оставляют при комнатной температуре на 3 — 6 ч. Затем пробирки разъединяют с резиновыми трубками, сливают или отсасывают грушей надосадочную жидкость и ставят в штатив. После встряхивания осадок разливают на предметные стекла и микроскопируют. Личинки подвижные, легко обнаруживаются.
Упрощенная модификация методики Бермана. В стаканчик кладут пробу фекалий (3 г), завернутую в марлевую салфетку, и заливают водой температурой 40 °C. Через 3 — 6 ч пробы вынимают и жидкость отсасывают после 10 — 15-минутного отстаивания. После осадок наносят пипеткой на предметное стекло и микроскопируют на наличие личинок диктиокаулы. Если осадок получается густой, в стаканчик наливают воду и взмучивают, отстаивают в течение 10 мин, воду сливают до осадка, а осадок микроскопируют.
Методика седиментации с центрифугированием по Котельникову, Корчагину и Хренову (экспресс-методика). Пробы фекалий (3 г) от овец и коз кладут в стаканчики и заливают раствором сульфата цинка. Затем каждую пробу разгоняют по кругу палочкой в течение 1 — 2 мин. После 5 — 10-минутного отстаивания пробы вынимают пинцетом и взвесь снова отстаивают в течение 10 — 15 мин. Металлической петлей снимают 3 капли с поверхности взвеси, переносят на предметное стекло и микроскопируют на наличие личинок диктиокаул. Фекалии (3 г) полужидкой консистенции от телят и овец кладут в стаканчик, заливают раствором сульфата цинка и выдерживают 20 — 30 мин без размешивания. Затем крупные частички фекалий удаляют с поверхности жидкости, отстаивают, снимают 3 капли, переносят на предметное стекло и микроскопируют. Личинки стронгилят пищеварительного тракта и стронгилоидеса деформируются в течение 1 — 2 мин, личинки мюллерии свертываются спиралью и внешне напоминают пузырьки воздуха.
Для установления диагноза личинок обездвиживают слабым нагреванием на пламени спиртовки или путем добавления к осадку 2 — 3 капель 10%-ного раствора йодистого калия.
Для дифференциальной диагностики живых личинок диктиокаулы необходимо к осадку добавить 1 — 2 капли 0,1%-ного водного раствора метиленового синего. Через 20 — 30 с личинки диктиокаулы окрашиваются в сиреневый цвет, личинки других нематод не окрашиваются.
9.7. Клинико-эпизоотологические особенности диктиокаулеза. У животных отмечают кашель ночью, жесткое везикулярное дыхание, хрипы, угнетение, пониженный аппетит, серозные и серозно-гнойные истечения из носа. Ягнята и телята худеют, шерсть теряет блеск, взъерошена, развиваются малокровие и истощение. У телят при перкуссии выявляют очаги притупления, иногда они захватывают целые доли легких, пульс учащен, слизистые оболочки синюшны. Ярко выражены признаки бронхита и бронхопневмонии. При наслоении гнойной микрофлоры повышается температура до 41 °C.
Молодняк заражается на неблагополучных пастбищах или трассах перегона, при совместном выпасе с больными диктиокаулезом животными. Наиболее восприимчивыми к заболеванию являются ягнята, козлята и телята в возрасте до года. Телята второго года, находящиеся на стойловом содержании, при пастьбе на неблагополучных пастбищах заражаются и тяжело болеют.
9.8. Патологоанатомические изменения. У овец и коз в легких при остром течении заболевания находят гиперемию, кровоизлияния, серозно-геморрагический отек, признаки бронхита, очаговой бронхопневмонии, а при осложнении — катарально-гнойной пневмонии. У телят легкие увеличены, выражены характерные катаральной и гнойно-катаральной бронхопневмонии очаги гепатизации, ателектазы, эмфизема в задних участках легких, бронхиальные и средостенные лимфатические узлы увеличены. У ягнят, козлят и телят бронхи и трахея заполнены пенистой жидкостью, в которой обнаруживают скопления диктиокаулов, мелкие и средние бронхи закупорены слизисто-гнойными пробками.
9.9. Гельминтологические исследования. Половозрелых и молодых диктиокаулов обнаруживают и собирают при разрезе бронхов и трахеи. Если при макроскопическом исследовании бронхов гельминты не обнаружены, то вырезают куски легкого, измельчают их руками, массу закладывают в аппарат Бермана, заливают водой температурой 40 °C и выдерживают 3 — 6 ч. Затем осадок наносят на предметное стекло и микроскопируют на наличие личинок диктиокаулы.
Диагноз на диктиокаулез считают установленным при обнаружении в фекалиях личинок или паразитов и личинок в легких павших или вынужденно убитых животных.
10.1. Возбудители метастронгилеза — нематоды рода Metastrongylus, паразитируют в бронхах и трахее домашних и диких свиней.
10.2. Характеристика возбудителей. Тонкие нематоды белого цвета, длиной до 5 см, ротовое отверстие окружено двумя крупными губами. У самцов имеется половая бурса и две спикулы, оканчивающиеся одним или двумя крючками. Яйца овальной или округлой формы, бесцветные, внутри находится свернувшаяся личинка, скорлупа состоит из четырех оболочек, наружная оболочка — бугристая, величиной 0,040 — 0,064x0,032 — 0,082 мм.
10.3. Для гельминтокопроскопических исследований необходимы: микроскоп, предметные стекла, стаканчики или мензурки на 50 мл, ситечки, палочки, металлические петли, центрифуга ручная или электрическая на 1 тыс. об/мин, центрифужные пробирки, растворы солей: аммиачная селитра (уд. масса 1,3) или азотнокислый свинец (уд. масса 1,5), денсиметр и 50%-ный водный раствор глицерина.
10.4. Приготовление флотационных растворов такое же, как при аскаридозе свиней и фасциолезе жвачных животных (см. пп. 1.4 и 5.4).
10.5. Взятие и доставка проб фекалий те же, что при параскаридозе лошадей (см. п. 7.3).
10.6. Методика комбинированная в модификации Котельникова и Хренова. Пробу фекалий (3 г) кладут в стаканчик, заливают небольшим количеством воды и палочкой тщательно размешивают, добавляя воду до объема 30 мл. Затем смесь фильтруют через ситечко и отстаивают в течение 5 мин. Верхний слой сливают до осадка, последний переливают в центрифужную пробирку, наливают раствор аммиачной селитры и центрифугируют 1 — 2 мин. Металлической петлей снимают не менее 3 капель с поверхности взвеси, переносят на предметное стекло и микроскопируют с целью обнаружения яиц метастронгилы. При исследовании обнаруживают также яйца аскариды, трихоцефалы, эзофагостомы, стронгилоидеса.
Методика флотации с раствором азотнокислого свинца по Котельникову и Хренову. Пробу фекалий (3 г) кладут в стаканчик, заливают небольшим количеством раствора азотнокислого свинца и палочкой тщательно размешивают, добавляя раствор до объема 30 мл. Затем взвесь фильтруют через ситечко и отстаивают в течение 5 мин. Металлической петлей снимают не менее 3 капель с поверхности взвеси, переносят на предметное стекло и микроскопируют с целью обнаружения яиц метастронгилы. Чтобы не допустить быстрого высыхания и кристаллизации на предметных стеклах капель, к ним добавляют по капле 50%-ного водного раствора глицерина. Обнаруживают также яйца аскариды, трихоцефалы и эзофагостомы.
10.7. Клинико-эпизоотологические особенности. Свиньи заражаются в теплый сезон года в неблагополучных свинарниках или на выпасах при поедании дождевых червей с личинками метастронгилы. У животных в возрасте 3 — 9 мес отмечают бронхопневмонию, угнетение, повышение температуры, которая удерживается в течение 1,5 мес, кашель и желтоватого цвета истечения из носа, пониженный аппетит, учащенное дыхание. При аускультации прослушиваются хрипы в легких. Смерть животного наступает от асфиксии в результате большого скопления паразитов в бронхах. Инвазия держится у животных на высоком уровне до зимы.
Исследования необходимо проводить в осенне-зимний период.
10.8. Патологоанатомические изменения. Легкие увеличены, развиваются бронхит, альвеолярная эмфизема, ателектазы, фокусы, характерные для пневмонии. В бронхах находят клубки метастронгилов, слизистая оболочка бронхов набухшая и покрасневшая. Отмечают узелковые поражения легких величиной до конопляного зерна сероватого цвета и плотной консистенции.
10.9. Гельминтологическое исследование бронхов. Метастронгилов легко обнаруживают при вскрытии бронхов, чаще — в задних и средних долях легких.
Диагноз на метастронгилез считают установленным при обнаружении в фекалиях яиц или личинок и метастронгилов в бронхах при вскрытии павших или вынужденно убитых животных.
11. Онхоцеркоз — заболевание крупного рогатого скота, буйволов, зебу, вызываемое возбудителями из рода Onchocerca (O. gutturosa, O. lienalis); первый вид паразитирует в выйной связке, второй — в гастролиенальной и под капсулой селезенки; их личинки (микроонхоцерки) — в толще кожи, преимущественно нижней части брюшной стенки, внутренней поверхности бедер, предплечья, в области шеи, основания сосков и присосковой части вымени.
Заметных признаков заболевание не дает, однако наносит экономический ущерб: часть кожи с сильными поражениями бракуется или идет как нестандартная продукция, значительная часть их выпускается с заниженной сортностью, поражение микроонхоцерками кожи сосков и вымени способствует развитию маститов, что приводит к снижению молочной продуктивности коров.
Клинико-эпизоотологические особенности. Заболевание распространено повсеместно. Заражение животных происходит летом при участии промежуточных хозяев — мошек. С возрастом животных пораженность увеличивается. Наиболее высокая инвазированность (80 — 100%) отмечается в хозяйствах, где скот содержат и выпасают в бассейнах быстротекущих рек и небольших речек. Это связано с тем, что мошки выплаживаются в проточных водоемах со скоростью течения воды 1 — 1,5 м/с. Дальность полета мошек от места выплода в степной зоне равна 2 — 3 км, в лесной — до 10 км. Скот, находящийся на стойловом или стойлово-лагерном содержании, менее подвержен заражению. Однако мошки, инвазированные на скоте индивидуального пользования, могут переносить личинки онхоцерков на животных промышленных комплексов.
Летом микроонхоцерки, накапливаясь в сосках, вызывают болезненность их при дойке, причем она усиливается при машинной дойке. В случае интенсивной инвазии появляются небольшие трещины и другие поражения кожи сосков. Болезненность сосков вызывает недодаивание коров, что может способствовать возникновению маститов. Во время дойки коровы, пораженные микроонхоцерками сосков, возбуждаются; применение доильных аппаратов иногда становится невозможным. Зимой, когда личинки мигрируют в глубокие слои кожи, подобные явления отмечают редко. Наибольшее количество скота, инвазированного онхоцерками, регистрируют с мая по сентябрь.
Прижизненная диагностика. Животных обследуют старше
лет. Исследования проводят методом биопсии проб кожи, которые берут с нижней части брюшной стенки (область белой линии) и исследуют в день взятия одним из следующих методов:
по методу Ковоана — пальцами левой руки на месте взятия пробы выстригают волосы, затем оттягивают кожу, ножницами Купера вырезают кусочек кожи толщиной 1,5 — 2 мм, который опускают в пробирку, и заливают 2 — 3 мл физиологического раствора с соблюдением асептики и антисептики. Физиологический раствор взбалтывают, выливают в пробирку и центрифугируют при 2 тыс. об/мин в течение 10 — 15 мин, надосадочный слой сливают, а осадок переносят на предметное стекло и микроскопируют на наличие личинок.
В связи с тем что к концу суток личинки становятся малоподвижными, а осадок мутнеет, перед исследованием в пробирку опускают несколько капель водного раствора азур-эозина (одна капля в 1 мл дистиллированной воды). Через 20 — 30 с личинки окрашиваются и становятся легко заметными;
по Гнединой — с помощью пинцета и ножниц Купера вырезают кусочек кожи величиной с небольшую горошину толщиной 1 5 — 2 мм. Пробу кожи помещают на предметное стекло в каплю физиологического раствора и расщепляют препаровальными иглами. Через 15 мин кожу удаляют, каплю просматривают под малым увеличением микроскопа.
Микроонхоцерки длиной 0,19 — 0,26 мм, светло-серого цвета, головной конец округленный, хвостовой — тонкий и заостренный.
Половозрелые формы — длинные, нитевидные, тонкие нематоды, длиной от 30 мм до 1 см. Кутикула самок поперечно исчерчена.
Посмертные гельминтологические исследования. Выйную связку вырезают из туши на участке от первого шейного до шестого грудного позвонка. Онхоцерки локализуются чаще в соединительной ткани между пластинчатыми частями связки. При интенсивной инвазии величина онхоцеркозных очагов равна 7 — 8 см в диаметре. Гастролиенальную связку осматривают после разъединения селезенки и рубца, при этом гельминты остаются в связке, прилегающей к широкому краю селезенки, и даже под ее капсулой. Связки осматривают с помощью лупы. Целесообразно исследовать связки в лучах проходящего света.
Для повышения эффективности исследования применяют методику переваривания связок в искусственном желудочном соке, который готовят по прописи: кислота соляная концентрированная — 7 мл, пепсин медицинский или свиной — 7 г, теплый физиологический раствор — 1000 мл. Время переваривания для выйной связки составляет в термостате при 37 °C 24 ч, для гастролиенальной — 36 ч. Ткань связки разрыхляется, что позволяет легче выделить самцов и фрагменты самок гельминтов.
Дермолярвоскопию проводят по методике Кивако. Пробы берут от парных кож или хранившихся не более 2 сут при температуре 20 — 25 °C. Пробы величиной в 1 см2 вырезают ножницами по всей толщине кожи с мест максимального заселения микроонхоцерками, разрезают на 5 — 6 кусков, помещают в чашку Петри и заливают тонким слоем теплого физиологического раствора (37 °C). Закрытые чашки Петри ставят в термостат при температуре 37 °C на 30 мин. Затем кусочки кожи удаляют и жидкость микроскопируют. Иногда жидкость выливают в пробирки и центрифугируют в течение 2 — 3 мин, надосадочную жидкость сливают, а осадок микроскопируют.
Диагноз на онхоцеркоз считают установленным при жизни в результате обнаружения микроонхоцерков в коже, посмертно — в результате обнаружения онхоцерков в выйной или гастролиенальной связках или под капсулой селезенки.