Методические указания по бактериологической диагностике брюшного тифа, паратифа А, В и других заболеваний салмонеллезной этиологии
Актуально на 10.11.2026.
Как цитировать: "Методические указания по бактериологической диагностике брюшного тифа, паратифа А, В и других заболеваний салмонеллезной этиологии". https://bukva.ai/docs/metodicheskie-ukazaniya-po-bakteriologicheskoy
Т.НИКОЛАЕВА
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИКЕ БРЮШНОГО ТИФА, ПАРАТИФА А, В И ДРУГИХ ЗАБОЛЕВАНИЙ САЛМОНЕЛЛЕЗНОЙ ЭТИОЛОГИИ
Исследования на обнаружение брюшнотифозных, паратифозных А и В, а также прочих салмонеллезных микробов производят с целью:
-
выявления бактерионосительства у реконвалесцентов перед выпиской из стационара;
-
выявления бактерионосительства среди работников пищевых предприятий, водоснабжения, детских и лечебных учреждений, а также у лиц, приравненных к ним;
-
выявления путей распространения инфекции через объекты внешней среды.
I. Материал для исследования и сбор его
Выбор материала для бактериологического исследования определяется локализацией и путями выделения возбудителя из организма больного в свете патогенеза тифозных, паратифозных и прочих салмонеллезных заболеваний.
Учитывая развитие инфекционного процесса, выделить микроб легче всего: из крови — на 1 — 2 неделе заболевания (бактериэмия); из желчи (дуоденального содержимого) — в течение всего заболевания вплоть до реконвалесценции, а также у бактерионосителей; из розеол — во время их существования; из испражнений у брюшнотифозных и паратифозных больных — с конца второй недели заболевания, при других клинических формах — с первого дня заболевания, а также у бактерионосителей; из мочи — с конца второй недели заболевания, а также у бактериовыделителей; из костного мозга — в особых случаях, по указанию клинициста; из трупа — в материале, добытом из желчного пузыря и селезенки, содержимого тонких кишок, мезентериальных желез, костного мозга.
В связи с периодичностью выделения микробов рекомендуется производить повторные исследования испражнений и мочи с промежутками приблизительно в 5 — 7 дней.
Хотя легче всего выделить культуру из крови в течение 1 — 2 недели заболевания, однако ее можно выделить на протяжении всего лихорадочного периода и во время рецидивов, увеличивая количество засеваемой крови до 15 — 20 мл.
Для бактериологического исследования кровь берут в количестве 5 — 10 мл стерильным шприцем из локтевой вены и засевают на одну из приведенных ниже сред в соотношении 1:10.
Посев крови производят в колбу или флакон емкостью в 100 мл со средами обогащения: 1) желчной средой Рапопорт; 2) бульоном с 10 — 20% желчи (см. Приложение).
Среду Рапопорт разливают по 50 мл в колбы или флаконы с поплавками. При отсутствии желчи кровь можно засевать по способу Клодницкого и Самсонова на 80 — 100 мл стерильной дистиллированной или водопроводной воды.
При получении для исследования уже свернувшейся крови сыворотка отсасывается и используется для реакции Видаля, а сгусток после измельчения может быть засеян на желчные среды.
б) Взятие желчи (дуоденального содержимого)
Зондирование производят в лечебном учреждении или на бациллоносительском пункте. Вопрос о возможности применения этого метода исследования должен каждый раз индивидуально решаться клиницистом.
Взятие проб содержимого двенадцатиперстной кишки производят при помощи дуоденального зонда. Зонд вводят больному или носителю натощак. Через 15 минут после того как из зонда выделится первая порция дуоденального сока, вводят через зонд в двенадцатиперстную кишку 50 мл 30-процентного стерильного раствора сернокислой магнезии. Этот раздражитель вызывает опорожнение желчного пузыря.
Необходимо собрать в отдельные стерильные пробирки порцию А из двенадцатиперстной кишки, порцию В из желчного пузыря и порцию С из желчных притоков.
В лабораторию доставляют пробирки с двумя или тремя порциями (А и В или А, В, С) желчи. Каждую из порций можно посеять отдельно, но можно посеять смесь их.
Дуоденальное содержимое имеет характерное зелено-желтое окрашивание и характеризуется щелочной реакцией, поэтому до посева в пробах проверяют реакцию лакмусовой бумажкой. Если обнаружена кислая реакция и материал исследования представляет собой белую жидкость с хлопьевидным осадком, что характерно для желудочного сока, то материал исследованию не подлежит.
Пробы испражнений от больных можно брать из подкладного судна. Судно следует дезинфицировать осветленным раствором хлорной извести (но не лизолом или карболовой кислотой), а затем перед отбором испражнений для исследований его многократно и тщательно промывают горячей водой до уничтожения следов дезинфицирующих веществ.
Всем здоровым лицам, обследуемым на бактерионосительство, необходимо давать предварительно (за 2 — 3 часа) 25 — 30 г смеси сернокислой магнезии и сернокислого натрия, которая является желчегонной <*>; сбор испражнений для исследования на носительство производят на стерильные эмалированные тарелки, можно тазы, лотки, картонные тарелки или стаканчики (при массовых обследованиях). Тарелки должны быть снабжены индивидуальными номерами. Производить сбор испражнений ректальными трубками не рекомендуется.
<*> Больным слабительное давать не следует.
У больных материал для исследования собирают, по возможности, вне периода применения антибиотиков.
Для обнаружения салмонеллезных микробов надлежит брать 10 — 20 г жидкой части испражнений, происходящих из верхних отделов кишечника (последнюю порцию). Пробы испражнений собирают стерильными стеклянными лопаточками, палочками, трубочками или деревянными шпателями в широкие стерильные пробирки со средой обогащения.
При наличии в испражнениях патологических примесей последние также переносят в среду обогащения. Наиболее употребительными из них являются 20-процентный желчный бульон, среда Мюллера, комбинированная среда Кауфмана (см. Приложение).
Если материал не может быть сразу посеян на среды обогащения, то его можно хранить в наливном виде либо в консервирующей глицериновой смеси (см. Приложение) при +2 — +6 °С в холодильнике, желательно не более 12 — 24 часов. В консервант помещают не менее 1 — 2 г испражнений.
Сбор мочи производят в стерильные флаконы. Для исследования достаточно собрать 20 — 30 мл мочи. Перед сбором мочи наружные половые органы должны быть тщательно обмыты кипяченой водой и обтерты стерильной ватой или стерильной марлевой салфеткой. Перед посевом мочу центрифугируют и осадок засевают на среды обогащения и плотные дифференциальные среды.
В отдельных случаях по особым клиническим показаниям в условиях больницы при наличии соответствующего специалиста можно применить с диагностической целью посев костного мозга путем проведения пункции грудины. Полученный материал засевают на среды обогащения.
е) Взятие посевного материла из розеол
Участок кожи с несколькими хорошо выраженными розеолами протирают спиртом, а затем сухой стерильной марлей или ватой. Делают несколько поверхностных царапин на розеолах так, чтобы на них выступили капли лимфы. Капли лимфы стерильной пипеткой засевают в пробирки с желчным бульоном.
II. Посев исходного материала и ход бактериологического исследования
а) Бактериологическое исследование крови
Кровь, засеянную в среду Рапопорт, в желчную среду или дистиллированную воду, помещают в термостат при 37 °С. При росте салмонеллезных микробов в первоначально желтоватой прозрачной среде появляется помутнение. В среде Рапопорт цвет жидкости при наличии индикатора Андреде постепенно меняется на красный, что особенно заметно в поплавке. При росте газообразующих микробов в поплавке, кроме изменения цвета, появляется пузырек газа.
Через 10 — 20 часов необходимо сделать пересев из желчного бульона или другой среды обогащения на чашки с плотной дифференциальной средой Эндо или Левина.
Со среды Рапопорт можно в конце первых суток сделать нативный препарат для определения подвижности и препарат, окрашенный по Граму. При наличии чистой культуры грамотрицательных палочек можно получить ориентировочные данные о тифозной или паратифозной природе их, учитывая изменения цвета среды и образование пузырька газа в поплавке.
Через 18 — 20 часов просматривают чашки. Если имеется обильный рост чистой культуры, то 2 — 3 колонии отсевают на косой агар, затем готовят взвесь из нескольких типичных колоний в физиологическом растворе. Взвесь вносят в пробирки со средами Гисса (пестрый ряд) и используют для постановки пробирочной агглютинации. Ориентировочная реакция на стекле ставится с видовыми адсорбированными или неадсорбированными сыворотками <*>. Можно рекомендовать вести испытание культур в опыте реакции агглютинации на стекле сначала со смесью салмонеллезных сывороток, а при наличии агглютинации со смесью испытать культуру отдельно с каждой из сывороток, входящих в данную смесь.
<*> Номенклатура агглютинирующих сывороток, принятая Минздравом СССР в 1955 г., дана в Приложении.
Для постановки реакции агглютинации на стекле с видовой неадсорбированной сывороткой последнюю разводят стерильным физиологическим раствором в 25 — 50 раз. Видовые адсорбированные сыворотки уже разведены и дальнейшему разведению не подлежат. В каплю той или другой сыворотки на стекле вносят петлей небольшое количество культуры. Культуру растирают до равномерной взвеси. Наблюдения ведут в течение 5 минут.
В случае обнаружения чистой культуры грамотрицательных подвижных палочек, агглютинирующихся какой-либо из салмонеллезных сывороток, выдают предварительный положительный ответ.
Для постановки пробирочной агглютинации могут быть использованы только видовые неадсорбированные сыворотки, так как они обладают высокими титрами. Видовую неадсорбированную сыворотку разводят в агглютинационных пробирках стерильным физиологическим раствором до титра, указанного на этикетке.
Окончательный положительный ответ дается через 54 — 72 часа после учета результатов посева на углеводные среды Гисса и развернутой агглютинации.
При выделении культуры, по морфологическим и биохимическим свойствам подозрительной на палочку брюшного тифа, но не агглютинирующейся брюшнотифозной видовой неадсорбированной сывороткой, следует испытать культуру в реакции на стекле с брюшнотифозной монорецепторной Ви-антисывороткой. Если выделенная культура содержит Ви-антиген, она может не реагировать с О-антисывороткой и реагирует только с Ви-антисывороткой. В этом случае дается положительный ответ, который должен быть подтвержден реакцией агглютинации с гретой (1 час при 56 °С) культурой.
Культуру брюшнотифозной палочки, содержащую Ви-антиген, отсевают на простой бульон для определения фаготипа (методика типирования фагом дана в Приложении).
Если первый высев из сред обогащения отрицательный, то последующие высевы на плотные питательные среды делают через 48 и 72 часа от начала исследования.
Отрицательный ответ выдают после 3-го высева (на 6 сутки) с указанием, что посевы в течение 6 суток прошли с отрицательным результатом, а исследование продолжается.
Несмотря на выдачу отрицательного ответа, периодические высевы продолжают до 14 дня с интервалом в 3 — 4 дня.
трупного материала
Первый день исследования. Производят посев материала на чашки с плотной дифференциальной питательной средой, за исключением материала из костного мозга и розеол, которые первично засевают только в среду обогащения.
Испражнения для посева размешивают в физиологическом растворе (в отношении 1:10) и оставляют на полчаса на столе до оседания крупных частиц. Каплю посевного материала следует брать с поверхности жидкости.
При исследовании на бактерионосительство рекомендуется производить одновременный высев мочи и испражнений. При этом свежесобранную мочу в стерильную посуду можно использовать как жидкость для эмульгирования испражнений того же лица. При получении положительного результата в дальнейшем исследование кала и мочи производят раздельно.
Кусочки паренхиматозных органов, полученные от трупа, растирают в стерильной фарфоровой ступке с 1 мл физиологического раствора. Из верхнего слоя жидкости делают посев на плотные дифференциальные среды и на среды обогащения.
При посеве любого исследуемого материала на несколько чашек следует на каждую чашку брать новую порцию.
Наибольшее распространение имеют элективные среды с прибавлением желчных солей — бактоагар Ж, среда Плоскирева, а также высоко элективная для тифозных и паратифозных микробов висмут-сульфитная среда (Вильсон и Блер). Применяют также среду с эозином и метиленовой синькой в модификации Левина, среду Эндо.
Элективные среды создают благоприятные условия для роста салмонеллезных микробов, подавляют рост нормальной кишечной флоры, что позволяет значительно увеличить количество посевного материала.
Рекомендуется посев делать на три чашки с различными дифференциальными средами, например: одну с бактоагаром Ж или средой Плоскирева, другую со средой Вильсона и Блера, а третью со средой типа Эндо или Левина.
Если на месте сбора материала не было произведено посева в среду обогащения, то параллельно с высевом на плотные дифференциальные среды нужно немного исследуемого материала поместить в среду обогащения (кроме дуоденального содержимого).
Дуоденальное содержимое помещают в термостат при 37 °С и параллельно засевают во флакон с 50 мл бульона.
В дальнейшем в течение 5 дней производят не менее трех высевов на плотные дифференциальные среды.
В том случае если средой обогащения служит желчный бульон, рекомендуется производить высев на чашки с дифференциальной средой в тот же день после 4 — 6 часов инкубации при 37 °С; имеются наблюдения, что содержание желчного бульона при комнатной температуре даже более благоприятно.
Второй день исследования (первые сутки). Рост прямого посева материала на чашках рассматривают простым глазом или при помощи лупы. Салмонеллезные микробы растут на среде Плоскирева, бактоагаре Ж, среде с эозином и метиленовой синькой в модификации Левина, среде Эндо в виде прозрачных или полупрозрачных бесцветных, иногда слегка голубоватых колоний. На висмут-сульфит агаре (Вильсон и Блер) тифозные и паратифозные А микробы растут в виде мелких серовато-зеленых колоний с черным центром. Колонии паратифозных В микробов и других салмонелл значительно крупнее, коричневого цвета с металлическим блеском. Все салмонеллезные культуры изменяют цвет среды Вильсон и Блер на черный. Если на среде Вильсон и Блер через 24 часа не имеется характерного роста, чашки оставляют в термостате на 48 — 72 часа.
3 — 5 подозрительных колоний отсевают на среду «скошенный столбик с мочевиной» (см. Приложение) или среду Ресселя, или на короткий пестрый ряд (косой агар, среды Гисса с глюкозой и лактозой) <*>. На среду Ресселя и скошенный столбик с мочевиной посев делают сначала штрихом по скошенной поверхности, а затем уколом в глубину столбика. Посевы помещают в термостат при 37 °С до следующего дня.
<*> Подозрительные колонии со среды Вильсон и Блер снимаются на среды, не содержащие мочевину.
Производят высев со сред обогащения на чашки с элективными и дифференциальными средами, как описано выше. Засеянные чашки помещают в термостат при 37 °С на 18 — 24 часа.
Третий день исследования (вторые сутки). Если на дифференциальных средах в «прямом» посеве и высеве со сред обогащения отсутствуют подозрительные колонии, то дается отрицательный ответ.
Изучение выделенных культур начинают с учета их ферментативной характеристики. Культуры, ферментирующие лактозу и глюкозу при наличии газообразования, отбрасывают (кишечная палочка и ее разновидности). Отбрасывают культуры, разложившие в скошенном столбике мочевину, т.е. изменившие цвет среды на коричневато-фиолетовый (при индикаторе тимоловый синий + индикатор Андреде) или до оранжевого (при индикаторе ВР) — протеи, пал. Моргана.
При отсутствии культур, подозрительных на микробов рода салмонелла или дизентерийных, дается отрицательный ответ.
Культуры, ферментирующие только глюкозу с образованием кислоты и газа, т.е. изменяющие цвет среды в красный (при индикаторе Андреде) или синий (при индикаторе ВР) и образующие в среде пузырьки газа, подозрительные как салмонеллезные микробы, испытывают в ориентировочной агглютинации на стекле с набором салмонеллезных сывороток. Культуры, расщепляющие глюкозу с образованием кислоты без газа, подозрительные как микробы брюшного тифа или дизентерии, испытывают с брюшнотифозной сывороткой и набором дизентерийных сывороток.
Дальнейшему изучению подвергают не все выделенные подозрительные культуры, а 2 — 3, остальные сохраняют до конца исследования. В случае если культуры, изученные в первую очередь, приходится отбросить, продолжают исследование сохраненных штаммов. Проверяют морфологию (окраска по Граму) и подвижность в висячей или раздавленной капле. При выявлении грамотрицательных подвижных палочек культуры пересевают на пробирки со скошенным агаром, а также на среды Гисса с маннитом, мальтозой <*>, сахарозой и на простой бульон или на 1-процентную пептонную воду. Можно заменить пробирки с маннитом и сахарозой одной пробиркой со средой по типу среды Ресселя (см. Приложение). Для исследования на наличие сероводорода и индолообразование под пробку пробирки с бульоном или с 1-процентной пептонной водой вкладывают специальные индикаторные бумажки (см. способ приготовления в Приложении). Все посевы помещают в термостат вместе с пробирками с лактозой и глюкозой от предыдущего дня.
<*> При массовых исследованиях применение среды с мальтозой не обязательно.
Агглютинацию на стекле проводят при помощи видовых адсорбированных или неадсорбированных (цельных) сывороток. Применяют сыворотки против представителей наиболее часто встречающихся пяти серологических групп рода салмонелл (А, В, С, Д, Е), либо можно рекомендовать вести испытание культур в опыте реакции агглютинации на стекле сначала со смесью салмонеллезных сывороток, как было указано в исследовании крови. В случае положительной реакции агглютинации с видовыми салмонеллезными сыворотками производят рецепторный анализ выделенной культуры сначала с соответствующими монорецепторными О-сыворотками, а затем с монорецепторными Н-сыворотками (к специфической фазе). При работе с монорецепторными сыворотками испытуемую культуру тщательно смешивают с каждой сывороткой путем растирания платиновой петлей. После каждой сыворотки петлю прожигают на огне. Положительная реакция агглютинации наступает в течение первой минуты. Для агглютинации с О-сыворотками культуру следует брать с верхней части скошенного агара, для агглютинации с Н-сыворотками — из конденсационной воды (наиболее подвижные особи).
Отсутствие или наличие агглютинации на стекле не решает окончательно вопроса о принадлежности культур к тому или иному виду. Свежевыделенные культуры в первых генерациях часто плохо агглютинируются, особенно со среды Плоскирева. С другой стороны, культура, находящаяся в переходной или шероховатой форме, может легко и до высоких титров агглютинироваться гетерологичными сыворотками. Результаты ориентировочной агглютинации дают право только на предварительное заключение. При работе с видовыми неадсорбированными сыворотками соответственно данным агглютинации на стекле ставят линейную реакцию агглютинации со смывом культуры со среды Ресселя или скошенного агара. Видовую неадсорбированную сыворотку для этой цели разводят в агглютинационных пробирках стерильным физиологическим раствором, начиная от разведения 1:100 до титра сыворотки, указанного на этикетке. Агглютинационные пробирки выдерживают два часа в термостате, а затем оставляют при комнатной температуре до следующего дня.
Через 48 часов (на вторые сутки) на основании данных о морфологии выделенного микроба, его ферментативной характеристики на коротком пестром ряду и результатов реакции агглютинации на стекле может быть выдан ориентировочный ответ.
Примечание: 1. Среди салмонелл иногда встречаются неподвижные варианты, поэтому культуры грамотрицательных, неподвижных, газообразующих палочек надо испытывать с набором салмонеллезных сывороток.
2. Необходимо также учесть, что среди салмонелл группы «В» встречаются варианты, не образующие газ при ферментации углеводов.
3. Если подвижная, безгазовая, биохимически сходная с брюшнотифозной палочкой культура не агглютинируется брюшнотифозной сывороткой, следует испытать ее с монорецепторной Ви-антисывороткой (см. исследование крови).
Четвертый день (третьи сутки) исследования. Отмечают изменения углеводных сред Гисса, образование сероводорода и индола (см. Приложение - таблицу ферментативных свойств). Если культура расщепляет сахарозу, образует индол (покраснение индикаторной бумажки), то она отбрасывается как непатогенная и дается отрицательный ответ.
Учитывают линейную реакцию агглютинации при помощи агглютиноскопа или лупы. При работе с видовыми адсорбированными сыворотками по возможности ставят реакцию агглютинации на стекле повторно.
Четвертый день (72 часа) является днем выдачи окончательного ответа.
Основанием для выдачи положительного ответа служат данные морфологии микроба, ферментативной характеристики и отчетливые результаты агглютинации на стекле с адсорбированными сыворотками, позволяющими определить вид культуры.
При работе с видовыми неадсорбированными сыворотками положительный ответ выдается при наличии типичной биохимической характеристики и положительной реакции линейной агглютинации не ниже 1/3 титра сыворотки. При агглютинации ниже 1/3 титра положительный ответ может быть дан лишь при наличии положительной агглютинации с монорецепторными О- и Н-сыворотками.
При фаготипировании культуры брюшного тифа в ответе указывается также фаготип.
Исследование со сред обогащения ведется аналогично вышеописанному, но на один день позже.
Для установления вида салмонеллезных микробов группы «В» иногда бывает недостаточно провести биохимическое изучение и обычный серологический анализ. Для дополнительной дифференциации, например, микробов S. paratyphi B, S. typhimurium, S. Heidelberg хорошими дифференциальными признаками являются феномен валообразования, феномен врастания в агар и поведение на среде Биттера с рамнозой.
Культуры засевают на чашки с простым агаром (pH 7,4 — 7,6) так, чтобы рост был в виде отдельных колоний. Посевы выдерживают в термостате 24 часа, а затем 1 — 2 суток при комнатной температуре. Чашки просматривают с помощью лупы. Вокруг отдельных колоний S. paratyphi B появляются возвышающиеся над поверхностью колоний слизистые валики, сильно преломляющие свет — положительный феномен валообразования. У S. typhimurium и S. Heidelberg образование таких валиков вокруг колоний не наблюдается.
При отсутствии валообразования колонии на чашках смывают физиологическим раствором. Наличие углублений в агаре на месте смытой колонии характерно для микробов S. typhimurium — положительный феномен врастания колоний. Колонии микробов S. paratyphi B и S. Heidelberg не врастают в агар.
Культуру засевают на среду Биттера с рамнозой (см. Приложение). К суточной культуре добавляют несколько капель 1,5-процентного спиртового раствора метилрота. S. typhimurium и S. Heidelberg дают красное окрашивание, S. paratyphi B — желтое.
Идентификация выделенных культур не представляет затруднений, если их биохимические и серологические свойства совпадают с характеристикой одного из видов рода салмонелл. Однако нередко возникают затруднения при определении культур не вполне типичных.
В случаях отклонений от указанных положений культуры подлежат дальнейшему изучению, о чем выдается ответ по следующей форме: «Выделена культура, подозрительная по принадлежности к роду салмонелл. Исследование продолжается».
Наиболее частый случай отклонения от типичной характеристики представляют штаммы, потерявшие агглютинабельность. При соответствии морфологических и биохимических признаков какому-нибудь из видов салмонелл эти штаммы не должны быть отброшены. Агглютинабельность иногда восстанавливается после нескольких (3 — 5) ежедневных пересевов на свежий влажный скошенный агар или при чередовании пересевов на агар с посевом на желчный бульон. Рекомендуется одновременно рассеять неагглютинирующуюся культуру на чашку и выбрать из выросших колоний такие, которые дают на стекле агглютинацию с соответствующей сывороткой. Для выявления соматического антигена следует поставить реакцию агглютинации с культурой, прогретой 30 минут при температуре 100 °С.
При выделении культуры, хорошо агглютинирующейся какой-нибудь из сывороток, но атипичной по другим свойствам, прежде всего убеждаются в чистоте штамма. Для этого рассевают жидкую взвесь изучаемой культуры на дифференциальные среды, что сразу позволяет убедиться в чистоте культуры и выделить типичную колонию. Вновь выделенный штамм проверяют по всей схеме.
Если биохимические свойства культуры остаются атипичными, следует провести ряд пассажей на 10-процентном желчном бульоне, бульоне Хоттингера и скошенном агаре. Можно рекомендовать в качестве дополнительного метода испытание фаголизабельности культуры.
В случае если после всех вышеописанных приемов дополнительного исследования не удается определить природу выделенной культуры, дается отрицательный ответ с требованием трехкратного повторения исследования. Изучаемую же культуру следует направить в научно-исследовательский институт для изучения.
При необходимости ускорения хода бактериологического исследования должны быть использованы комбинированные питательные среды, сокращение интервалов между пересевами и между отдельными этапами исследования, одновременное выполнение различных приемов, выполнявшихся раньше в разные дни.
Так, подозрительные колонии с чашки снимают сразу на три пробирки: одну — скошенный столбик с лактозой, глюкозой и мочевиной и вторую — среду типа Ресселя с маннитом и сахарозой, а также пробирку с бульоном для определения сероводорода и индола. Можно подозрительную колонию эмульгировать в небольшом объеме бульона или физиологического раствора и внести в пробирки развернутого пестрого ряда. Рекомендуется питательные среды предварительно подогреть до 37 °С. С момента появления роста культуры (6 — 8 час.) возможна постановка реакции агглютинации.
Ускорение исследования не должно достигаться путем упрощения или опущения установленных необходимых и важных признаков в характеристике выделенных микробов.
в модификации Московского института им. Мечникова
Сущность этого метода заключается в использовании элективных питательных сред короткого пестрого ряда и адсорбированных сывороток с учетом подвижности и морфологии культуры. Такой метод сокращает продолжительность анализа на одни сутки по сравнению с обычным.
Подозрительные на салмонеллезных микробов колонии со среды Плоскирева, бактоагара Ж или среды висмут-сульфит агар отсевают на короткий пестрый ряд (среда Ресселя или лактоза, глюкоза и скошенный агар) и в столбик с полужидким (0,4%) слабощелочным агаром для определения подвижности.
Типичные для салмонелл по биохимическим и морфологическим свойствам культуры испытывают в ориентировочной агглютинации на стекле со смесью салмонеллезных сывороток. Эта смесь состоит из обычных агглютинирующих сывороток паратифа А, паратифа В, Бреслау, Суипестифер и Гертнер (по 1 мл каждой + 20 мл физиологического раствора). К смеси в качестве консерванта следует добавить 1% дважды перекристаллизованной борной кислоты. Кроме того, для пробной агглютинации можно пользоваться смесью № 3 института им. Пастера (см. Приложение).
Культуры, дающие положительную реакцию агглютинации со смесью паратифозных сывороток, испытывают сначала адсорбированными О-сыворотками для определения серологической группы (А, В, С, Д, Е), а затем с Н-сыворотками для установления вида бактерий.
Если подвижная культура, типичная по биохимическим и морфологическим свойствам, хорошо агглютинируется на стекле адсорбированными О-сыворотками, устанавливающими серологическую группу, и Н-сыворотками определенного вида, то дается положительный ответ.
В случае какой-либо неясности при работе ускоренным методом исследование продолжают обычным способом, как описано выше.
Настоящий метод рекомендуется применять только при исследовании материала от больных и при массовой работе во время вспышек. Не рекомендуется использование его при исследовании материала из внешней среды, так как в этих случаях чаще встречаются атипичные культуры, требующие более углубленного изучения.
I. СРЕДЫ ОБОГАЩЕНИЯ
1. Желчный бульон — к 800 мл бульона добавляют 200 мл нативной желчи pH — 7,6. Стерилизация в автоклаве при 120 °С 30 минут.
2. Среда Рапопорт — к 1 литру 10-процентного желчного бульона добавляют 2% глюкозы и в качестве индикатора либо 1% раствора Андреда или 0,1 спиртового раствора бромкрезолпурпурного. Разливают по 50 мл во флаконы, куда вкладывают поплавок. Стерилизуют текучим паром три дня по 30 минут.
3. Среда Мюллера — в стерильные флаконы отвешивают по 4,5 г мела, стерилизуют сухим жаром. Наливают в каждый флакон по 90 мл бульона. Стерилизуют при 1 атмосфере давления 30 минут. К каждому флакону в асептических условиях добавляют 2 мл раствора Люголя и 10 мл раствора серноватисто-кислого натрия.
Раствор Люголя: 100 мл дистиллированной воды, 20,0 йодистого калия и 26,0 йода.
Раствор серноватисто-кислого натрия: насыпают в измерительный цилиндр 50,0 серноватисто-кислого натрия и добавляют дистиллированной воды до 100 мл. Переливают в бутыль. Стерилизуют текучим паром.
4. Среда Кауфмана — к 500 мл стерильной среды Мюллера добавляют 25 мл стерильной желчи и 5 мл 0,1-процентного водного раствора бриллиантовой зелени. Разливают в пробирки с соблюдением правил асептики.
II. КОНСЕРВИРУЮЩАЯ ГЛИЦЕРИНОВАЯ СМЕСЬ
К 1 литру физиологического раствора добавляют 0,5 л химически чистого нейтрального глицерина и устанавливают pH среды = 8, добавляя 20-процентный
фосфорно-кислый натрий (Na HPO ). Стерилизация при 112 °С в течение 15
2 4
минут. После стерилизации pH = 7,6 — 7,8.
III. ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНЫЕ ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ
Каждая новая серия сухой элективной питательной среды (бактоагар Ж, среда Плоскирева, среда Вильсон и Блер) должна проверяться при помощи посевов инфицированных фекалий или салмонеллезных культур. При полном отсутствии роста кишечной палочки (стерильные чашки) следует снизить количество порошка в растворе; при обильном росте кишечной палочки — наоборот (согласно указанию на этикетке). При задержке роста салмонеллезных микробов следует снижать количество порошка в растворе, заменяя его сухим питательным агаром.
1. Среда Ресселя из сухих питательных сред — на 950 мл дистиллированной воды берут 40 г сухого питательного агара с индикатором BP и лактозой и 5 г сухого питательного агара. Смесь растворяют при нагревании до кипения. Затем в 50 мл дистиллированной воды растворяют 1 г глюкозы и добавляют к вышеуказанной смеси. Разливают в стерильные пробирки по 5 — 6 мл и стерилизуют текучим паром два раза по 30 минут. Среду скашивают так, чтобы остался небольшой столбик.
Среду Ресселя с маннитом и сахарозой готовят по вышеуказанному принципу: на 950 мл дистиллированной воды берут 40,0 сухого питательного агара с индикатором BP и сахарозой и прибавляют 1,0 маннита, растворенного в 50 мл дистиллированной воды.
Цвет среды серовато-розовый, при кислотообразовании цвет среды меняется на синий.
2. Среда «скошенный столбик» из сухих питательных сред — в 100 мл горячей стерильной дистиллированной воды растворяют 4 г сухой среды Гисса с лактозой и индикатором BP, 0,1 г глюкозы и 1 г мочевины; полученный раствор разливают в пробирки и стерилизуют текучим паром 15 минут. Среду скашивают как среду Ресселя. Цвет среды — серовато-розовый. При кислой реакции цвет среды меняется на синий, при щелочной — на оранжевый.
3. Среда Биттера с рамнозой — в 1 литре дистиллированной воды растворяют 0,5 г одноосновного фосфорно-кислого натрия, 1 г серно-кислого аммония, 2 г трехосновного лимонно-кислого натрия, 5 г хлористого натрия, 0,5 г пептона, 5 г рамнозы — кипятят, фильтруют, разливают, стерилизуют три дня текучим паром по 30 минут.
IV. ПРИГОТОВЛЕНИЕ ИНДИКАТОРНЫХ БУМАЖЕК
Парадиметил-амидобензальдегид 3 - 5 г Спирт 96% 50 мл Фосфорная кислота (очищен. концентр.) 10 мл
Смешать, дать раствориться порошку. Полученной тепловатой жидкостью смочить полоски фильтровальной бумаги, высушить и нарезать узкими полосками. Цвет бумажек — желтый. При наличии в бульоне индола цвет бумажки изменяется на сиренево-розовый до интенсивно малинового. Появление других цветов на индикаторной бумажке не учитывается.
б) На сероводород — лист фильтровальной бумаги смачивают в следующем растворе:
Дистиллированной воды 100 мл Уксусно-кислого свинца 20 г Двууглекислой соды 1 г
Бумагу высушивают, нарезают полосками. После обработки бумага бесцветная, при наличии сероводорода чернеет.
V. МЕТОДИКА ОПРЕДЕЛЕНИЯ ФАГОТИПОВ КУЛЬТУР ТИФОЗНЫХ БАКТЕРИЙ
Для определения фаготипов брюшнотифозных культур надо иметь набор типовых брюшнотифозных фагов 2-го серологического типа <*>. В настоящее время имеется свыше 30 фагов и различных типов Ви II бактериофагов и соответствующих им фаготипов культур. Они обозначаются заглавными буквами латинского алфавита — А, В, С, Д, Е и т.д. Кроме того, надо иметь фаг «Ви» первого серологического типа, который используется для контроля состояния культуры. Бактериофаг 1-го серологического типа лизирует тифозные культуры всех типов, если они находятся в «v» форме.
<*> Набор типовых фагов выпускает Тбилисский институт вакцин и сывороток.
Определение фаготипов культур проводят с брюшнотифозными микробами. Тифозные палочки должны быть в «v» форме, т.е. содержать Ви-антиген и агглютинироваться Ви-антисывороткой. Для опыта применяют молодые 3 — 4-часовые бульонные культуры, которые засевают на чашки с агаром. Употребляют 1,1-процентный прозрачный агар pH = 7,2 — 7,4.
Чашки с агаром хорошо подсушивают и на поверхность их наносят каплю культуры платиновой петлей всегда одного диаметра, после чего чашку ставят снова в термостат на 20 — 30 минут для подсушивания.
На высохшие капли испытуемой культуры наносят одинаковые объемы типовых фагов в критическом тест-разведении <*> (обозначено на этикетках ампул с фагом).
<*> Тест-разведение типового фага определяется титрованием каждого фага с соответствующей культурой и является последним разведением, вызывающим полный лизис культуры на плотной среде.
Засеянные чашки помещают в термостат на 2 — 3 часа, а затем на ночь в холодильник при +2 — +6 °С. На следующий день чашки помещают вновь на 4 — 6 часов в термостат, лишь после этого учитывают результаты опыта. Тип культуры определяют по фагу, который полностью лизирует культуру. Если культура полилизабельная, то опыт повторяют с прибавлением двух последующих разведений фага после тест-разведения.
VI. НОМЕНКЛАТУРА САЛМОНЕЛЛЕЗНЫХ ДИАГНОСТИЧЕСКИХ АГГЛЮТИНИРУЮЩИХ СЫВОРОТОК
(Приказ Министерства здравоохранения СССР № 175 от 16.04.1955)
Брюшнотифозная Паратифозная Тифимурим (Бреслау) Паратифозная А Паратифозная Холересуис (Суипестифер)
Паратифозная Энтеритидис (Гертнера)
Брюшнотифозная Н Паратифозная Тифимуриум (Бреслау) Брюшнотифозная О Паратифозная Энтеритидис (Гертнер) Паратифозная А Паратифозная Гайдельберг Паратифозная В Паратифозная Холересуис (Суипестифер)
Паратифозная смесь № 3 <*> (А, В, С, Д — Гертнер)
и адсорбированные — монорецепторные:
I. Монорецепторные антисыворотки к О-антигенам представителей рода Салмонелла, встречающиеся у человека (по общепринятой классификации — I, II, III, IV, V, VI, VII, VIII, IX), и брюшнотифозная Ви-антисыворотка, а также комплексные О-антигены группы В (IV, V) и группы С (VI, VII, VIII) <**>.
<**> Выпускает Московский институт вакцин и сывороток им. Мечникова.
II. Монорецепторные антисыворотки к видо-специфическим Н-антигенам представителей рода Салмонелла, встречающихся у человека, по общепринятой классификации: a, b, c, i, r, f, g, m, d, eh, lv, gm, gt <*>.
<*> Выпускает Ленинградский институт эпидемиологии микробиологии им. Пастера.
III. Монорецепторные антисыворотки к неспецифическим Н-антигенам представителей Салмонелл, встречающихся у человека (по общепринятой классификации — 1,2; 1,5).
Преципитирующие сыворотки <***>:
Брюшнотифозная Паратифозная Энтеритидис (Гертнер) Паратифозная А Паратифозная Тифимуриум (Бреслау) Паратифозная В Паратифозная Холересуис (Суипестифер)
<***> Выпускает Московский институт эпидемиологии, микробиологии и гигиены Министерства здравоохранения РСФСР.
Примечание. 1. Агглютинирующие и преципитирующие сыворотки используют согласно срокам годности, указанным на этикетках. По истечении срока годности они могут быть использованы только после перетитрования.
2. При применении сывороток следует строго придерживаться наставлений, приложенных к сывороткам.
СХЕМА КУЛЬТУРАЛЬНЫХ СВОЙСТВ И АНТИГЕННОЙ СТРУКТУРЫ
ПРЕДСТАВИТЕЛЕЙ РОДА SALMONELLA, НАИБОЛЕЕ ЧАСТО
ВСТРЕЧАЮЩИХСЯ У ЧЕЛОВЕКА
| Группа по | Вид | Расщепление | Лакмусов. сыворотка | Образован. | Антигенная структура | |||||||||
| Кауфману | подвижность | лактоза | глюкоза | маннит | мальтоза | сахароза | мочевина | сероводорода | индола | антигены | ||||
| соматический | жгутиковые | |||||||||||||
| специфическ. | неспецифическ. | |||||||||||||
| А В | S. paratyphi A S. paratyphi B S. reading S. typhimurium S. Heidelberg S. Derby S. Essen S. Saintpaul S. Paratyphi C S. choleraesuis (Suipestifer) | + + + + + + + + + + | - — - - — - - — - - | кг кг кг кг кг кг кг кг кг кг | кг кг кг кг кг кг кг кг кг кг | кг кг кг кг кг кг кг кг кг кг | - — - - — - - — - - | - — - - — - - не известно — - | слабо кислит кислит, позднее щелочит то же то же то же не известно кислит, потом щелочит то же | + + + + + + + + + | - — - - — - - — - | (I), II, XII (I), IV, (V), XII IV, XII (I), IV, (V), XII IV, XII (I), IV, XII IV, XII I, IV, V, XII VI, VII vi VI, VII | a b eh i r fg gm eh c c | - 1,2 1,5 1,2 1,2 — - 1,2 1,5 1,5 |
| С | S. choleraesuis (var, Kunzendorf) S. Newport S. Oraninburg S. Morbificans bovis S. typhi S Enteritidis (Gartner) | + + + + + + | - — - - — - | кг кг кг кг кг кг | кг кг кг кг кг кг | кг кг кг кг кг кг | - — - - — - | - — - - — - | то же кислит, потом щелочит то же то же слабо кислит сл. кислит, потом щелочит | + + + + + + | - — - - — - | VI, VII VI, VII VI, VIII VI, VIII IX, XII vi I, IX, XII | - eh mt r d gm | 1,5 1,2 — 1,5 — - |
| Д Е | S. Enteritidis (var Dublin) S. Enteritidis (var Moscow) S. London S. Senftenberg S. Anatum | + + + + + | - — - - - | кг кг кг кг кг | кг кг кг кг кг | кг кг кг кг кг | - — - - - | - — - - - | то же то же то же | + + + + + | - — - - - | I, IX, XII IX, XII III, X I, III, XIX III, X | gp gq ev g, s, t eh | - — 1,6 — 1,6 |