--- title: "\"Инструкция по применению реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) для обнаружения столбнячного микроба в объектах внешней среды\"" number: "760а-68" issuer: "Министерство здравоохранения СССР" status: утратил силу canonical: "https://bukva.ai/docs/instruktsiya-760a-68" --- ## "Инструкция по применению реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) для обнаружения столбнячного микроба в объектах внешней среды" # "Инструкция по применению реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) для обнаружения столбнячного микроба в объектах внешней среды" (утв. Минздравом СССР 25.10.1968 N 760а-68) > [!WARNING] > Документ утратил силу на территории Российской Федерации в связи с изданием Приказа Роспотребнадзора от 04.12.2020 N 797.
Утверждаю
Начальник Главного
санитарно-эпидемиологического
управления Министерства
здравоохранения СССР
**А.ПАВЛОВ**
25 октября 1968 г. N 760а-68
**ИНСТРУКЦИЯ** **ПО ПРИМЕНЕНИЮ РЕАКЦИИ НЕПРЯМОЙ ГЕМАГГЛЮТИНАЦИИ (РНГА)** **ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ СТОЛБНЯЧНОГО МИКРОБА В ОБЪЕКТАХ** **ВНЕШНЕЙ СРЕДЫ <*>** --- <*> Инструкция подготовлена сотрудниками ордена Трудового Красного Знамени Института эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи АМН СССР Т.И. Сергеевой, К.И. Матвеевым и Т.И. Булатовой. Метод обнаружения столбнячного микроба с помощью реакции непрямой гемагглютинации является высоко специфичным и может быть применен в лабораториях санэпидстанций, больниц, научно-исследовательских институтах как вспомогательный метод исследования с целью установления обсемененности предметов внешней среды при проверке запыленности больничных помещений, проверке на стерильность перевязочного материала и др. ## I. Объекты и цели исследования Исследование на наличие столбнячного микроба производится в следующих случаях: а) при изучении краевой эпидемиологии столбняка с целью установления степени обсемененности Cl. tetani почвы, пыли, растений и других объектов внешней среды; б) при проведении плановых санитарно-гигиенических анализов на запыленность больничных помещений: палат, перевязочных, предоперационных, операционных, родильных и детских отделений, а также при проверке на стерильность перевязочных материалов, кетгута, шелка, лекарственных средств и т.п.; в) при анализе материалов от больных с целью подтверждения диагноза и от трупов - для постмортального заключения. ## II. Взятие проб для исследования 1. Пробы почвы берутся в стерильные бактериологические пробирки с резиновыми пробками. Пробы почвы следует брать на расстоянии трех - пяти метров друг от друга в населенных пунктах (дворы, скотные дворы, огороды, сады, дороги, улицы, детские и спортивные площадки и т.д.), а также в лугах, полях, пастбищах, лесах, на берегах рек. Для взятия почвы пробирка извлекается из стерильного бумажного пакета, нижней частью пробирки сдвигается поверхностный слой почвы в 3 - 5 см, затем открытым концом пробирки путем винтообразного движения вглубь набирается почва, после чего плотно закрывается <*>. На пробирке делают надпись: место взятия почвы, номер пробы, дата. Листья, растения и другие объекты помещаются в стерильную посуду. --- <*> Применение шпаделей для снятия поверхностного слоя почвы затруднено, так как требуется на каждую пробу стерильный шпадель. 2. Для взятия пыли в помещениях необходимо заготовить тампоны из ваты на палочке, смочить тампоны физиологическим раствором, вложить их в пробирки, закрыть пробирки резиновыми пробками и простерилизовать в автоклаве. Взятие пыли производится следующим образом: тампоны извлекают за кончик палочки из пробирки и влажным тампоном собирают пыль с поверхности предметов, после чего опять помещают в пробирку, которая закрывается пробкой и надписывается. Для анализа перевязочные средства, образцы кетгута, шелка, лекарств направляются в заводской упаковке или же из них делается выборочное взятие стерильными инструментами тампонов, марлевых салфеток, ваты и других материалов, которые помещаются в стерильную посуду с надписью, содержащей название материала, место взятия и дату. 3. При подозрении на столбняк от больных берут на исследование содержимое раны, отторгнутые ткани, инородные тела, извлеченные из ран, перевязочные средства (тампоны, дренажные трубки, кетгут, шелк и т.д.). При криминальных абортах следует брать тампоном выделения из шейки матки. В случае подозрения на столбняк у новорожденного необходимо взять на исследование ткани из пупочной ранки, тампоны, повязки, шелк, использованные для перевязки пуповины. От трупов следует брать кусочек мышечной ткани из предполагаемого места внедрения инфекции и содержимое раны. Для взятия материала на исследование применяются стерильные инструменты и посуда. Пробы этикетируются, где указывается название материала, фамилия, имя, отчество больного или трупа, дата взятия. Все пробы до исследования должны храниться при температуре не выше 4°. ## III. Посев исследуемых материалов Исследование всех вышеуказанных материалов производится путем посева их на жидкую среду и дальнейшего исследования культуральной жидкости посевов с помощью реакции непрямой гемагглютинации (РНГА). Для посевов используется бульон Глузмана или бульон Вейнберга с кусочками мяса под вазелиновым маслом при рН 7,2 - 7,4, разлитые по 70 мл во флаконы емкостью 100 мл. Перед посевом флаконы со средой прогревают на водяной бане при 100° в течение 10 минут для регенерации среды, после чего охлаждают до 45°. В каждый флакон перед посевом добавляют по 0,5% стерильного 40% раствора глюкозы (1 мл на флакон). Посев почвы производится следующим образом: в пробирку с пробой почвы добавляют равный объем физиологического раствора, после чего почва тщательно перемешивается пастеровской пипеткой, спустя 40 - 60 минут выдерживания при комнатной температуре по 2 - 3 мл почвенной суспензии вносится во флакон со средой. Тампон с пылью извлекают за палочку из пробирки, осторожно отделяют его пипеткой от палочки и целиком помещают в питательную среду. Листья, растения и другие предметы помещают стерильным пинцетом во флакон со средой. Перевязочные и другие материалы, проверяемые на стерильность, исследуют в специальных стерильных боксах и одежде с соблюдением правил асептики. Приблизительно по 2 - 3 гр. материала (тампоны, бинты, вата, кетгут, шелк и т.д.) извлекают стерильными инструментами и помещают в среду. Кусочки тканей, взятые из трупов, предварительно измельчаются, а затем вносятся в питательную среду; содержимое раны, тампоны и другие материалы от больных засеваются так же, как указано выше. Все посевы помещают в термостат при 37°. При наличии роста исследование посевов следует начинать спустя 48 часов после посева. Посевы материалов, подвергавшихся стерилизации (перевязочные средства, кетгут, шелк), необходимо при отсутствии видимого роста выдерживать в термостате до 2-х недель. Трех - четырехсуточные посевы испытуемых материалов исследуются методом реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) и микроскопированием. ## IV. Материалы и реактивы, необходимые для постановки РНГА Для постановки РНГА необходимы следующие реактивы и материалы: 1) Реактивы для приготовления буферных растворов: 1/15 М NaHPO 2H O 4 2 1/15 М KH PO 2 4 физиологический раствор 2) Танин 3) Противостолбнячная сыворотка, очищенная и концентрированная методом "Диаферм-3" активностью 1000 - 1500 АЕ в 1 мл 4) Бараньи эритроциты (нативные, консервированные в растворе Олсвера или формалинизированные эритроциты) 5) Нормальная кроличья сыворотка 6) Столбнячный очищенный, концентрированный, но не адсорбированный анатоксин, активностью 150 - 200 ЕС в 1 мл 7) Доски для гемагглютинации из плексигласа с 72 лунками. Объем лунки 2 мл 8) Шприц непрерывного действия на 1 мл 9) Пипетки градуированные на 1, 2, 5 мл. ### Приготовление буферных растворов Для приготовления 1 литра 1/15 М Na HPO 2H O раствора берется 11,88 2 4 2 г реактива и добавляется до 1 литра физиологический раствор. Для приготовления 1 литра 1/15 М KH PO раствора берется 9,08 г 2 4 реактива и добавляется до 1 литра теплый (45°) физиологический раствор. Из этих исходных растворов готовятся буферные растворы для постановки РНГА. Буфер с рН 6,4 ```text 1/15 М Na HPO 2H O - 61,1 мл │ 2 4 2 │ 100 мл 1/15 М KH PO - 38,9 мл │ ``` 2 4 ┘ Буфер с рН 7,0 ```text 1/15 М Na HPO 2H O - 53,4 мл │ 2 4 2 │ 240 мл 1/15 М KH PO - 186,6 мл│ ``` 2 4 ┘ Для получения большего количества буферных растворов составные части увеличивают в нужное число раз. Буферные растворы изготовляют заранее, контролируют их рН и сохраняют при 4 - 10°. ### Приготовление раствора танина Для танизирования эритроцитов используется медицинский порошкообразный танин. Рабочим разведением танина является разведение его в физиологическом растворе в соотношении 1:20000. Сначала готовят исходный раствор танина, который можно сохранять в холодильнике при 4 - 10° в течение 2 - 3-х недель и использовать для работы. Для приготовления исходного раствора взвешивают на торсионных или аналитических весах 10 - 12 мг танина и помещают в пробирку, куда добавляют физиологический раствор до концентрации 1 мг/мл, в результате чего получают разведение танина 1:1000. Для получения разведения 1:20000 исходный раствор разводят в 20 раз (1 мл исходного раствора + 19 мл физиологического раствора). Противостолбнячная сыворотка "Диаферм-3" должна быть первоначально апробирована в РНГА со столбнячным анатоксином или токсином, так как не всякая серия сыворотки бывает пригодна для сенсибилизации эритроцитов. Методика проверки сыворотки изложена ниже. ### Бараньи эритроциты Для РНГА лучше использовать эритроциты, консервированные в растворе Олсвера, которые при хранении в холодильнике могут быть применены для РНГА в течение 3 - 4-х недель.
Раствор Олсвера для консервации эритроцитов:
1) Глюкоза - 2,05 г
2) Лимоннокислый Na - 0,8 г
3) Хлористый Na - 0,42 г 4) Дистиллированная вода - до 100 мл. Установить рН - 6,1 - 6,2, стерилизовать 2 раза по 30 минут текучим паром. Кровь из барана берется в стерильную посуду с раствором Олсвера в соотношении 1:1. Для РНГА можно использовать также формалинизированные эритроциты и танизированные по методу М.И. Леви (1962, 1967), которые в течение нескольких месяцев сохраняют свои свойства. ## V. Методика постановки реакции ### Приготовление танизированных эритроцитов По 3 - 5 мл нативных или консервированных эритроцитов барана отмывают 4 - 5 раз физиологическим раствором в центрифуге при 2500 - 3000 об./мин. по 5 - 7 минут. Прозрачную бесцветную надосадочную жидкость сливают, по 0,15 мл осадка отмытых эритроцитов помещают в центрифужные пробирки, куда вносят 4 мл физиологического раствора и 4 мл рабочего разведения танина (1:20000), смесь выдерживают при 37° в течение 10 минут и отмывают: а) смесь центрифугируют 5 - 7 минут при 3000 об./мин., надосадочную жидкость сливают; б) осадок отмывают физиологическим раствором 2 раза. ### Сенсибилизация эритроцитов противостолбнячной сывороткой К осадку отмытых танизированных эритроцитов добавляют 3 мл противостолбнячной сыворотки, разведенной 1:10 буферным физиологическим раствором с рН - 6,4. Смесь выдерживают при 37° в течение 1 часа, после чего отмывают на центрифуге: а) центрифугируют 5 - 7 минут при 3000 об./мин., надосадочную жидкость сливают; б) осадок отмывают 4 мл буферного физиологического раствора с рН 6,4, надосадочную жидкость сливают; в) осадок отмывают буферным физиологическим раствором рН 6,4 с 1% нормальной инактивированной при 56° 30 минут кроличьей сывороткой, надосадочную жидкость сливают; г) осадок суспендируют в 6 мл буферного раствора рН 6,4 с 1% нормальной инактивированной кроличьей сывороткой - получается 2,5% взвесь танизированных сенсибилизированных противостолбнячной сывороткой эритроцитов. Сенсибилизация танизированных формалинизированных эритроцитов производится следующим образом: 5 мл 2,5% взвеси эритроцитов отмывают физиологическим раствором, к осадку добавляют противостолбнячную сыворотку в указанном количестве, смесь выдерживают в термостате 2 часа, после чего отмывают, как указано выше, и взвешивают в 5 мл физиологического раствора с pH 6,4 и 1% нормальной кроличьей сывороткой (инактивированной). ### Разведение исследуемого материала Из посевов исследуемого материала на жидкие питательные среды спустя 48 часов инкубации при 37° берут по 0,5 мл культуральной жидкости, делают мазок на предметном стекле для микроскопирования, а затем разводят в 5 раз буферным физиологическим раствором рН 7,0 и 0,4% нормальной кроличьей инактивированной сывороткой (1:250). Во все лунки доски для гемагглютинации разливают по 0,5 мл буферный раствор рН 7,0 с 0,4% кроличьей сыворотки. В 1-ю лунку вносят 0,5 мл разведенной в 5 раз культуральной жидкости, далее делают последовательные 2-кратные разведения исследуемого материала путем переноса из лунки в лунку по 0,5 мл смеси, из предпоследней лунки 0,5 мл выливают, последняя лунка остается для контроля. Таким образом получают разведения испытуемой культуральной жидкости от 1:10 до 1:10240 <*> (схема 1). --- <*> При апробации противостолбнячных сывороток таким же образом разводят столбнячный анатоксин или столбнячный токсин. Схема 1 | | 1:10 | 1:20 | 1:40 | 1:80 | 1:160 | 1:320 | 1:640 | 1:1280 | 1:2500 и т.д. | Контр. | | --- | --- | --- | --- | --- | --- | --- | --- | --- | --- | --- | | N 1 | 0,5 мл исходного разведения | 0,5 мл | 0,5 мл | и т.д. | | | | | | 0,5 мл | | N 2 | | | | | | | | | | 0,5 мл | | N 3 | | | | | | | | | | 0,5 мл | | N 4 | | | | | | | | | | 0,5 мл | | N 5 | | | | | | | | | | 0,5 мл | | N 6 | 0,5 мл столб. анатоксина или токсина | 0,5 мл | 0,5 мл | и т.д. | | | | | | 0,5 мл | В первую лунку каждого из 5 горизонтальных рядов вносят исходные разведения пяти исследуемых культур (N 1 - 5). В 6-й ряд вносят 0,5 мл столбнячного анатоксина или токсина и разводят так же (контроль активности сенсибилизированных эритроцитов). После приготовления разведений испытуемого материала в каждую лунку, включая и контрольные, вносят по 0,1 мл взвеси танизированных сенсибилизированных сывороткой эритроцитов. Содержимое лунок тщательно перемешивают путем осторожного встряхивания, и доски помещают в термостат на 1 час при 37°, а затем оставляют при комнатной температуре. Предварительный учет результатов реакции производят через 2 - 3 часа, окончательный через 18 часов. ### Учет результатов Учет результатов производится визуально по следующей схеме: (+) - положительная реакция: равномерная агглютинация эритроцитов, лунка заполнена гомогенной розовой взвесью; (+/-) - учитываемая крайняя положительная реакция: зона агглютинированных эритроцитов несколько меньше диаметра лунки и окружена красным тонким ободком эритроцитов;
(-) - отрицательная реакция: зона эритроцитов занимает половину или менее диаметра лунки и окружена плотным красным ободком или представляет собой плотный красный диск ("пуговка"), лежащий на дне лунки.
За положительный результат следует считать (+) или (+/-) реакцию в разведении 1:20 и выше испытуемого материала (т.е. во 2-й и последующих лунках горизонтального ряда доски), при отрицательном контроле в вертикальном 12-м ряду и положительном - в 6-м горизонтальном ряду в разведении не менее 1:1280 - 1:2560 <*>.
---
<*> При контроле противостолбнячных сывороток следует отбирать для работы те серии сывороток, которые дают положительный результат в РНГА с анатоксином или токсином в разведении не менее чем до 1:2560 - 1:5120. Мазки, приготовленные из каждого исследуемого посева, фиксируют над пламенем, окрашивают по Граму и микроскопируют. Наличие в препарате грамположительных палочковидных микробов со спорами в виде барабанной палочки при положительной РНГА с данным посевом указывает на наличие возбудителей столбняка в исследуемом материале.
При наличии в препарате микробов, похожих на Cl. tetani, и сомнительной реакции гемагглютинации необходимо повторить РНГА на 5 - 6-е сутки выращивания посевов, а также поставить биологическую пробу на белых мышах.
Для этого нужно развести испытуемую культуральную жидкость в 5 раз и ввести по 0,5 мл двум белым мышам в мышцу задней лапки. Появление признаков столбняка (напряжение хвоста и конечности на стороне введения, изгибание позвоночника, судороги) у мыши свидетельствует о наличии столбнячного микроба.
При выделении чистой культуры с целью идентификации столбнячного микроба путем посева на высокий столбик высевы отдельных колоний на жидкую среду следует проверять также по указанной методике.
---