---
title: "Без названия"
status: действует
canonical: "https://bukva.ai/docs/bez-nazvaniya-2272"
---

## Без названия

# Документ 23734


<a id="p100001"></a>**МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ**

<a id="p100002"></a>**ФАРМАКОПЕЙНАЯ СТАТЬЯ**


| <a id="p100003"></a>Вакцина оспенная инактивированная | <a id="p100004"></a>ФС.3.3.1.0034.15<br>Вводится впервые |
| --- | --- |


<a id="p100005"></a>Настоящая фармакопейная статья распространяется на вакцину оспенную инактивированную, применяемую в качестве иммунобиологического лекарственного препарата (ИЛП). Вакцина представляет собой вирус осповакцины, выращенный на скарифицированной коже телят, обработанной хлоргексидина биглюконатом и инактивированный гамма-излучением Со60. Одна прививочная доза вакцины содержит активный компонент - инактивированный антиген вируса осповакцины - 50 мкг (величина расчетная определяется по содержанию общего белка); стабилизаторы: желатин - 1% и сахароза - 5% в конечной концентрации; соли буферной системы - натрия гидрофосфат додекагидрат и лимонная кислота моногидрат. Вакцина не содержит антибиотиков и консервантов.
<a id="p100006"></a>Вакцина предназначена для вакцинации детей с двухлетнего возраста, подростков и взрослых на первом этапе при двухэтапном методе вакцинации; на втором этапе применяют вакцину оспенную живую.

<a id="p100007"></a>**ПРОИЗВОДСТВО**

<a id="p100008"></a>Все этапы производства вакцины должны осуществляться с соблюдением установленных требований к правилам организации производства и контролю качества лекарственного препарата, гарантирующих его качество и безопасность для человека.
<a id="p100009"></a>Производство вакцины оспенной инактивированной должно проводиться в отдельных изолированных помещениях, в которых не допускается производство других лекарственных средств. Условия производства должны соответствовать требованиям санитарных правил "Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности (опасности) и возбудителями паразитарных болезней".
<a id="p100010"></a>Этапы производства включают получение оспенного соскоба с кожи телят; очистку оспенного соскоба от белка кожи центрифугированием; приготовление жидкой вакцины; инактивацию гамма-излучением Со60 и внесение стабилизатора; розлив и герметизацию ампул в атмосфере азота.
<a id="p100011"></a>В процессе производства обязательным является испытание качества исходных материалов, ляпиновакцины I, II и III генераций посевного вируса. Определение общего белка проводят в полуфабрикате вакцины после разведения буферным раствором до добавления стабилизатора. Определение проводят колориметрическим методом в соответствие с ОФС "Определение белкового азота с реактивом Несслера с предварительным осаждением белкового материала в иммунобиологических лекарственных препаратах". Регламентированная норма 100-200 мкг/мл.
<a id="p100012"></a>Обязательным условием при производстве препарата является определение посторонних примесей (хлоргексидина биглюконата), использующегося в виде 0,5% раствора для обработки шкур телят с оспенным детритом. Содержание примеси хлоргексидина биглюконата определяют в полуфабрикате на стадии получения оспенного соскоба. Содержание хлоргексидина биглюконата в полуфабрикате не должно превышать 0,05% при определении спектрофотометрическим методом.
<a id="p100013"></a>Требования к животным. В качестве продуцентов для производства вакцины оспенной инактивированной и посевного материала используют телят крупного рогатого скота. Животные должны поступать из хозяйств, благополучных в отношении инфекционных агентов, в том числе и прионовой природы. Каждая партия животных должна сопровождаться ветеринарным свидетельством, подтверждающим отсутствие инфекционных заболеваний. Все поступившие телята должны пройти 30-дневный карантин.
<a id="p100014"></a>Требования к производственному штамму. В качестве вакцинного штамма используют вирус осповакцины, штамм Л-ИВП, полученный путем накожных пассажей на кроликах и телятах вакцины, приготовленной из штамма Lister института Листера (Великобритания). Штамм Л-ИВП хранится в коллекции производственных штаммов на предприятии-изготовителе. Для поддержания стабильных свойств штамма проводят 1 пассаж исходного штамма на коже кролика. Материалом исходного штамма служит ляпиновакцина III генерации. В результате пассирования исходного штамма на кроликах получают ляпину. Посевной вирус I генерации получают в результате пассажа ляпины на коже теленка. Посевной вирус II генерации получают путем пассажа посевного вируса I генерации на коже теленка. Для приготовления вакцины используют только ляпиновакцину III генерации. Взвесь посевного вируса должна отвечать следующим требованиям:
- <a id="p100015"></a>может содержать суммарно не более 50 посторонних микроорганизмов в 1 мл, в том числе аэробных и факультативно-анаэробных бактерий и грибов;
- <a id="p100016"></a>не должна содержать бактерий семейства Enterobacteriaceae и вида Pseudomonas aeruginosa и Staphylococcus aureus, а также патогенных анаэробных бактерий;
- <a id="p100017"></a>быть генетически однородной, допускается образование на хорионаллантоисных оболочках (ХАО) куриных эмбрионов не более 10 поражений поверхностного диффузного типа на 1000 типичных оспин (от 0,5 до 3 мм);
- <a id="p100018"></a>на скарифицированной коже кроликов образовывать типичные вакцинальные поражения (оспины);
- <a id="p100019"></a>не вызывать некрозы при внутрикожном введении кроликам 104 ООЕ/0,1 мл (ООЕ - оспообразующие единицы);
- <a id="p100020"></a>не вызывать гибель кроликов при введении в мозг 104 ООЕ/0,1 мл;
- <a id="p100021"></a>быть безвредной для морских свинок при введении подкожно 1 мл посевного вируса и для белых мышей при введении 0,2 мл посевного вируса подкожно;
- <a id="p100022"></a>иметь специфическую активность не менее 1 · 109 ООЕ/мл. Производственный штамм контролируется при получении каждой генерации посевного вируса.

<a id="p100023"></a>**ИСПЫТАНИЯ**

<a id="p100024"></a>Описание. Пористая масса от белого до серо-белого цвета, гигроскопичная.
<a id="p100025"></a>Подлинность. Вакцина должна вызывать образование вируснейтрализующих антител к вирусу осповакцины в сыворотке крови белых крыс, однократно иммунизированных внутривенно 1 дозой вакцины. Определение проводят в соответствии с разделом "Антигенная активность".
<a id="p100026"></a>При неудовлетворительных результатах контроль повторяют, как при первичном испытании. При повторном испытании при получении неудовлетворительных результатов серию препарата бракуют.
<a id="p100027"></a>Время растворения. Должна полностью растворяться в 0,5 мл 0,9% раствора натрия хлорида при встряхивании в течение 3 мин. Метод определения - визуальный. После растворения вакцина должна представлять собой бесцветную или желтоватого цвета опалесцирующую жидкость.
<a id="p100028"></a>Механические включения. Видимые механические включения должны соответствовать требованиям ОФС "Видимые механические включения в лекарственных формах для парентерального применения и глазных лекарственных формах".
<a id="p100029"></a>pH (восстановленного препарата). От 6,8 до 7,6. Испытания проводят потенциометрическим методом в соответствии с ОФС "Ионометрия".
<a id="p100030"></a>Потеря в массе при высушивании. Не более 3,0%. Определение проводят в соответствии с ОФС "Потеря в массе при высушивании".
<a id="p100031"></a>Стерильность. Вакцина должна быть стерильной. Испытание проводят в соответствии с ОФС "Стерильность", если в нормативной документации нет других указаний.
<a id="p100032"></a>Пирогенность. Должна быть апирогенной. Испытание проводят в соответствии с ОФС "Пирогенность". Тест-доза вводимого препарата должна составлять 0,5 мл на кролика.
<a id="p100033"></a>Аномальная токсичность. Должна быть нетоксичной. Испытание проводят в соответствии с ОФС "Аномальная токсичность". Тест-доза - по 0,5 мл подкожно 2 морским свинкам массой 250-300 г и по 0,5 мл внутрибрюшинно 5 белым мышам массой 17-20 г. Вакцину растворяют прилагаемым растворителем.
<a id="p100034"></a>При получении неудовлетворительных результатов контроль повторяют на удвоенном количестве образцов. При получении неудовлетворительных результатов при повторном испытании серию препарата бракуют.
<a id="p100035"></a>Специфическая безопасность. Не должна содержать живого вируса осповакцины. Полноту инактивации вируса осповакцины испытывают на ХАО 12-дневных куриных эмбрионов (КЭ).
<a id="p100036"></a>*Примечание.* Используют КЭ от кур породы "Леггорн", "Роменбраун", "Родонит-2", "Изобраун" или "Хайсек" или пород кур, эмбрионы которых чувствительны к вирусу осповакцины. КЭ получают из хозяйств, свободных от вирусных и других возбудителей, патогенных для человека.

<a id="p100037"></a>Подготовка КЭ. Проводят овоскопию КЭ в затемненном помещении. Каждый эмбрион просматривают в направленном пучке света. Свет должен падать сверху на тупой конец яйца. Яйцо с погибшим эмбрионом или с кровоизлиянием под оболочкой бракуют. В центре воздушного мешка на тупом конце яйца и на боковой поверхности яйца, на участке между сосудами и их ответвлениями карандашом делают отметку. В местах отметок с соблюдением правил асептики пропиливают бормашиной с абразивным диском отверстия (щели) длиной 3-4 мм и шириной 1,5 мм, не повреждая оболочки. Яйцо укладывают так, чтобы отверстие на боковой стороне было обращено вверх. Подскорлупную оболочку в центре воздушного мешка прорывают плоской полукруглой хирургической иглой. Затем на отверстие, расположенное на боковой поверхности, вносят 0,1 мл 0,004 М стерильного фосфатно-цитратного буферного (ФЦБ) раствора Мак-Ильвейна, подогретого до температуры () °С, и той же иглой осторожно продавливают подскорлупную оболочку. После этого практически вся капля раствора проходит под подскорлупную оболочку и частично отслаивает ХАО.
<a id="p100038"></a>Из отверстия в центре воздушного мешка резиновой грушей осторожно отсасывают воздух до полного опускания ХАО и создания искусственного воздушного мешка под боковой щелью. Для контроля наличия и величины искусственного воздушного мешка вновь проводят овоскопию и бракуют эмбрионы, имеющие кровоизлияния, воздушные мешки под ХАО или без искусственных воздушных мешков. Яйца с опущенной ХАО помещают на лотки отверстием вверх и выдерживают 2 ч в термостате при температуре () °С. Затем проводят овоскопию повторно и бракуют эмбрионы с воздушными мешками под ХАО, без искусственных воздушных мешков и с кровоизлияниями.
<a id="p100039"></a>Постановка основного опыта. При испытании специфической безопасности вакцины используют 20 подготовленных КЭ и 10 ампул вакцины. Содержимое ампулы с вакциной растворяют в 0,5 мл ФЦБ. Содержимое каждой ампулы контролируют на 2 эмбрионах. По 0,1 мл растворенной вакцины наносят на ХАО одного эмбриона и равномерно распределяют по оболочке осторожным круговым вращением яйца. Инокулированные эмбрионы укладывают отверстием на боковой поверхности вверх и помещают в термостат на 48 ч при температуре () °С, затем проводят учет результатов. Параллельно определяют чувствительность КЭ к вирусу осповакцины. Для этого используют не менее 12 подготовленных КЭ и стандартный образец активности, специфичности и некротической активности оспенной вакцины в соответствии с инструкцией по применению. Инкубируют параллельно с основным опытом. Через 48 ч КЭ вскрывают, разрезая скорлупу по длинной оси яйца. Отслаивают пинцетом участок ХАО, выстилающий полость искусственного мешка, и отмывают его от крови и белка водой или ФЦБ. Каждую оболочку просматривают на черном фоне на наличие поражений. Препарат не должен вызывать специфических поражений на ХАО куриных эмбрионов. В тесте должно быть подтверждено установленное значение показателя "Специфическая активность" стандартного образца активности, специфичности и некротической активности оспенной вакцины. При соблюдении данных условий делают заключение об отсутствии живого вируса в испытуемом образце вакцины.
<a id="p100040"></a>В случае обнаружения типичных оспин в основном опыте проводят контроль удвоенного количества испытуемых образцов вакцины. При повторном обнаружении типичных оспин на ХАО КЭ испытуемую вакцину бракуют. В случае обнаружения неспецифических поражений, участок ХАО измельчают и готовят суспензию в 2 мл ФЦБ. Взвесь центрифугируют в течение 15 мин при 2000 об/мин. Надосадочную жидкость наносят по 0,1 мл на ХАО куриных эмбрионов. Отсутствие типичных поражений считают доказательством инактивации вируса. При обнаружении на ХАО КЭ специфических оспин вакцину бракуют.
<a id="p100041"></a>Примечания.
1. <a id="p100042"></a>Приготовление ФЦБ раствора Мак-Ильвейна 0,004 М, pH (7,2-7,4). Готовят растворы 1 и 2.
<a id="p100043"></a>Раствор 1: Лимонная кислота - 2,1 г; Вода очищенная - 100 мл.
<a id="p100044"></a>Раствор 2: В мерной колбе вместимостью 1000 мл в воде очищенной растворяют 28,4 г натрия гидрофосфата безводного или 35,6 г натрия гидрофосфата дигидрата, или 71, 6 г натрия гидрофосфата додекагидрата, доводят объем раствора тем же растворителем до метки и перемешивают.
<a id="p100045"></a>Смешивают 2 мл раствора 1 и 18 мл раствора 2 в мерной колбе вместимостью 1000 мл, доводят объем раствора водой очищенной до метки и перемешивают. Полученный раствор должен иметь pH 7,2-7,4. Если pH полученного раствора более 7,4, его доводят до нормы раствором 1. В случае, если pH полученного раствора меньше 7,2, приготовление раствора повторяют. Буферный раствор стерилизуют при температуре () °С и давлении () МПа в течение 8-30 мин (в зависимости от объема) или фильтруют через мембраны с диаметром пор 0,22 мкм и хранят при температуре от 2 до 8 °С. Срок хранения от 10 до 30 сут. в зависимости от способа укупорки флаконов (способ укупорки флаконов должен быть указан в нормативной документации).

<a id="p100046"></a>Антигенная активность. Среднегеометрический титр (СГТ) вируснейтрализующих антител (ВНА) к вирусу осповакцины в сыворотках крови белых крыс, иммунизированных внутривенно 1 дозой вакцины, должен быть не менее 1:80. Контроль проводят на 6 белых крысах массой 80-100 г линии Wistar или нелинейных белых крысах без различия пола. Крысам вводят внутривенно в хвостовую вену растворенный препарат испытуемой вакцины в объеме 0,5 мл. Через 28 сут. производят взятие крови от каждой крысы и получают сыворотки. Для контроля опыта получают нормальную сыворотку крови от неиммунной крысы. Все полученные сыворотки прогревают при температуре () °С в течение 30 мин и исследуют в реакции нейтрализации. Постановку реакции нейтрализации проводят на ХАО 12-дневных КЭ. Для постановки реакции используют подготовленные КЭ (раздел "Специфическая безопасность") и в качестве вируса стандартный образец активности специфичности и некротической активности оспенной вакцины. Определяют рабочее разведение вируса титрованием на ХАО 12-дневных КЭ. Для этого готовят ряд последовательных десятикратных разведений вируса на ФЦБ (в соответствии с инструкцией по применению стандартного образца активности, специфичности и некротической активности оспенной вакцины). Каждое разведение вируса в объеме 0,1 мл вводят на ХАО 6 КЭ. Инкубируют в термостате 48 ч при температуре () °С. КЭ вскрывают, подсчитывают количество развившихся на ХАО оспин, рассчитывают среднее арифметическое значение оспин для каждого разведения. При постановке реакции нейтрализации используют то разведение стандартного образца, которое дает на ХАО куриных эмбрионов 40-60 оспин (рабочее разведение). Готовят двукратные разведения исследуемых сывороток на ФЦБ растворе Мак-Ильвейна от 1:10 до 1:640 и разведения нормальной сыворотки 1:10 и 1:20 в объеме по 0,5-1 мл. К каждому разведению сыворотки добавляют равный объем вируса в рабочем разведении. При этом разведение сывороток увеличивается вдвое. Соответственно в смесях получают разведения исследуемых сывороток от 1:20 до 1:1280 и нормальной сыворотки 1:20-1:40. Смеси выдерживают при температуре () °С в течение 2 ч. На ХАО КЭ наносят по 0,1 мл смеси, используя для каждой смеси по 5-6 эмбрионов. Инкубацию и вскрытие эмбрионов проводят так же, как при определении специфической безопасности.
<a id="p100047"></a>Учет результатов. Подсчитывают количество развившихся на ХАО оспин и определяют их среднеарифметическое значение для каждого разведения сыворотки. Находят среднеарифметическое значение числа оспин, развившихся при исследовании 2 разведений нормальной сыворотки. Титром ВНА считают конечное разведение иммунной сыворотки, дающее нейтрализацию 50% и более оспин от среднеарифметического числа, определенного в контроле с нормальной сывороткой. Допускается разброс вируснейтрализующих титров сывороток от 1:20 до 1:1280.
<a id="p100048"></a>*Пример* расчета СГТ ВНА. При выявлении в реакции нейтрализации следующих титров ВНА в сыворотках 1:20, 1:80, 1:640, 1:640, 1:160, 1:160 для удобства расчета СГТ необходимо все значения привести к единому знаменателю (1:160 = 4:640, 1:80 = 8:640, 1:20 = 32:640), тогда:

<a id="p100049"></a>,

<a id="p100050"></a>Растворитель, выпускаемый в комплекте с препаратом.
<a id="p100051"></a>Растворитель - 0,9% раствор натрия хлорида.
<a id="p100052"></a>Описание. Прозрачная бесцветная жидкость.
<a id="p100053"></a>Подлинность. Растворитель дает характерную реакцию на хлориды (образуется белый творожистый осадок). Определение проводят одновременно с количественным определением в соответствии с ОФС "Определение хлоридов методом обратного осадительного титрования в иммунобиологических лекарственных препаратах".
<a id="p100054"></a>Растворитель дает характерную реакцию на ионы натрия: 5 мл растворителя, упаренные до 1 мл, дают характерную реакцию на ионы натрия (окрашивание пламени в желтый цвет).
<a id="p100055"></a>Прозрачность. Должен быть прозрачным. Определение проводят в соответствии с ОФС "Прозрачность и степень мутности жидкостей".
<a id="p100056"></a>Цветность. Должен быть бесцветным. Определение проводят в соответствии с ОФС "Степень окраски жидкостей".
<a id="p100057"></a>pH. От 5,5 до 7,5. Испытания проводят потенциометрическим методом в соответствии с ОФС "Ионометрия".
<a id="p100058"></a>Механические включения. Видимые механические включения должны соответствовать требованиям ОФС "Видимые механические включения в лекарственных формах для парентерального применения и в глазных лекарственных формах".
<a id="p100059"></a>Извлекаемый объем. Не менее номинального. Испытание проводят в соответствии с ОФС "Извлекаемый объем лекарственных форм для парентерального применения".
<a id="p100060"></a>Бактериальные эндотоксины. Предельное содержание бактериальных эндотоксинов в растворителе должно быть не более 0,25 ЕЭ/мл. Определение проводят в соответствии с ОФС "Бактериальные эндотоксины".
<a id="p100061"></a>Стерильность. Должен быть стерильным. Испытание проводят в соответствии с ОФС "Стерильность", если в нормативной документации нет иных указаний.
<a id="p100062"></a>Количественное определение. В 1 мл растворителя должно быть от 0,0087 до 0,0093 г натрия хлорида. Определение проводят в соответствии с ОФС "Определение хлоридов методом обратного осадительного титрования в иммунобиологических лекарственных препаратах".
<a id="p100063"></a>Упаковка и маркировка. В соответствии с ОФС "Иммунобиологические лекарственные препараты".
<a id="p100064"></a>Транспортирование и хранение. При температуре от 2 до 8 °С. Допускается однократное кратковременное (не более 24 ч) транспортирование при температуре от 9 до 20 °С.



<a id="p100065"></a>

---



## Иллюстрации

$50 \pm 5$

$37 \pm 1$

$37 \pm 1$

$120 \pm 1$

$0,1 \pm 0,01$

$56 \pm 1$

$37 \pm 1$

$37 \pm 1$

$\text{СГТ ВНА } = \sqrt[6]{\frac{32}{640} \cdot \frac{8}{640} \cdot \frac{1}{640} \cdot \frac{1}{640} \cdot \frac{4}{640} \cdot \frac{4}{640}} = \frac{\sqrt[6]{4096}}{\sqrt[6]{640^{6}}} = \frac{4}{640} = \frac{1}{160}$
