---
title: "Без названия"
status: действует
canonical: "https://bukva.ai/docs/bez-nazvaniya-2253"
---

## Без названия

# Документ 23714


<a id="p100001"></a>**МИНИСТЕРСТВО ЗДРАВООХРАНЕНИЯ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ**

<a id="p100002"></a>**ФАРМАКОПЕЙНАЯ СТАТЬЯ**


| <a id="p100003"></a>Вакцина менингококковая серогруппы А полисахаридная сухая | <a id="p100004"></a>ФС.3.3.1.0015.15<br>Взамен ФС 42-3720-99 |
| --- | --- |


<a id="p100005"></a>Настоящая фармакопейная статья распространяется на вакцину менингококковую серогруппы А полисахаридную сухую, представляющую собой лиофилизат очищенного капсульного полисахарида Neisseria meningitidis серогруппы А.
<a id="p100006"></a>Полисахарид Neisseria meningitidis серогруппы А состоит из частично О-ацетилированных повторяющихся фрагментов N-ацетилманнозамина, связанных  фосфодиэфирными связями.

<a id="p100007"></a>**ПРОИЗВОДСТВО**

<a id="p100008"></a>Технология получения вакцины менингококковой полисахаридной серогруппы А предусматривает культивирование штамма-продуцента в жидкой питательной среде Франца с последующим выделением из полученной биомассы полисахарида менингококка серогруппы А и его очисткой.
<a id="p100009"></a>Процесс культивирования производственного штамма N. meningitidis должен осуществляться на плотных питательных средах, не содержащих элементов крови и других субстратов животного происхождения. Весь производственный процесс, основанный на использовании системы посевного материала и обеспечивающий стабильное получение вакцины для профилактики менингококковой инфекции серогруппы А с требуемой иммуногенностью и безопасностью для человека, должен быть валидирован.
<a id="p100010"></a>Посевной материал. Штамм-продуцент N. meningitidis должен быть охарактеризован по источнику его выделения и способности продуцировать полисахарид серогруппы А. Производственный штамм N. meningitidis серогруппы А должен обладать следующими свойствами:
- <a id="p100011"></a>на питательном агаре с добавлением 20% сыворотки крови крупного рогатого скота должен образовывать круглые, гладкие, прозрачные, бесцветные блестящие колонии с ровными краями, слегка выпуклые, мягкие по консистенции, которые легко снимаются с поверхности среды. Диаметр колоний должен быть от 0,5 до 2 мм. В косопроходящем свете колонии должны иметь ярко-оранжевую окраску с радужным свечением;
- <a id="p100012"></a>в мазках, окрашенных по Граму, должны присутствовать грамотрицательные диплококки, расположенные парами в виде "кофейных зерен", а также тетрадами или скоплениями;
- <a id="p100013"></a>культура тест-штамма должна быть оксидазоположительна;
- <a id="p100014"></a>культура тест-штамма должна разлагать глюкозу и мальтозу с образованием уксусной кислоты и не должна разлагать лактозу, сахарозу и фруктозу;
- <a id="p100015"></a>суспензия культуры тест-штамма должна вступать в реакцию агглютинации только со специфической сывороткой серогруппы А и не агглютинироваться сыворотками против других серогрупп менингококков, а также не давать спонтанную реакцию агглютинации в 0,9% растворе натрия хлорида.
<a id="p100016"></a>Бактериологическая чистота штамма-продуцента должна быть подтверждена посевом на чувствительные питательные среды, исследованием морфологии колоний, микроскопией мазков, окрашенных по Граму, а также постановкой реакции агглютинации со специфической и неспецифическими сыворотками.
<a id="p100017"></a>На этапе культивирования производственного штамма с целью получения конечного объема биомассы используют жидкую полусинтетическую среду, не содержащую субстанций, которые могут осаждаться цетилтриметиламмония бромидом, а также не содержащую элементов крови или высокомолекулярных полисахаридов.
<a id="p100018"></a>Бактериологическая чистота полученной биомассы должна оцениваться и подтверждаться методами, применяемыми для оценки чистоты штамма-продуцента. Бактериальный сбор центрифугируют и осаждают полисахарид из надосадочной жидкости добавлением цетилтриметиламмония бромида до его конечной концентрации 0,01%, после чего следует экстракция полисахарида из цетавлон-полисахаридного комплекса раствором кальция хлорида. Полученный полисахарид хранят при температуре минус 20 °С.
<a id="p100019"></a>Субстанцией полисахаридной менингококковой вакцины серогруппы А является полисахарид, очищенный от нуклеиновых кислот, белка и липополисахарида путем ступенчатого фракционирования этанолом и экстракцией фенолом. Очищенную субстанцию сушат в эксикаторе до постоянной массы над прокаленным кальция хлоридом и хранят при температуре минус 20 °С.
<a id="p100020"></a>На стадии производства субстанцию испытывают по следующим показателям:
<a id="p100021"></a>Подлинность. Субстанция должна тормозить реакцию пассивной гемагглютинации (положительная РТПГА) в гомологичной "А" системе в концентрации, не превышающей 0,4 мкг полисахарида в 1 мл, при отсутствии тормозящего эффекта в гетерологичной "С" системе с содержанием полисахарида 50 мкг/мл (см. подраздел "Подлинность" раздела "Испытания").
<a id="p100022"></a>Белок. Не более 1%. Определение проводят по методу Лоури без предварительного осаждения белка в соответствии с ОФС "Определение белка колориметрическим методом (метод Лоури) в иммунобиологических лекарственных препаратах". Субстанцию предварительно растворяют в воде очищенной до концентрации 5 мг/мл.
<a id="p100023"></a>Нуклеиновые кислоты. Не более 1%. Определение проводят в соответствии с ОФС "Определение нуклеиновых кислот по методу Спирина в иммунобиологических лекарственных препаратах". Субстанцию предварительно растворяют в воде очищенной до концентрации 5,0 мг/мл.
<a id="p100024"></a>О-ацетильные группы. Не менее 2 мкмоль/мг. Испытания проводят в соответствии с ОФС "Определение О-ацетильных групп". Субстанцию предварительно растворяют в воде очищенной до концентрации 1 мг/мл.
<a id="p100025"></a>Фосфор. Не менее 8%. Определение проводят в соответствии с ОФС "Спектрофотометрическое определение фосфора в иммунобиологических лекарственных препаратах".
<a id="p100026"></a>Молекулярные параметры. Не менее 65% полисахарида, элюируемого до достижения значения коэффициента распределения Kd, равного 0,50 (подраздел "Молекулярные параметры" раздела "Испытания").
<a id="p100027"></a>Пирогенность. Субстанция должна быть апирогенной. Испытания проводят в соответствии с ОФС "Пирогенность". Тест-дозу 0,025 мкг/мл вводят по 1 мл на 1 кг массы животного.

<a id="p100028"></a>**ИСПЫТАНИЯ**

<a id="p100029"></a>Описание. Аморфная масса в форме таблетки или рыхлого порошка от белого до беловато-серого цвета. Восстановленный препарат - бесцветный или желтоватого цвета раствор. Определение проводят визуально.
<a id="p100030"></a>Подлинность. Вакцина должна вызывать торможение реакции пассивной гемагглютинации (положительная РТПГА) в гомологичной "А" системе, не превышающей 0,4 мкг полисахарида в 1 мл, при отсутствии тормозящего эффекта в гетерологичной "С" системе с содержанием полисахарида 50 мкг в 1 мл.
<a id="p100031"></a>Ингредиенты для проведения реакции торможения пассивной гемагглютинации (РТПГА):
- <a id="p100032"></a>исследуемый раствор вакцины, содержащий 50 мкг полисахарида серогруппы А в 1 мл;
- <a id="p100033"></a>менингококковые сыворотки серогрупп А и С, и диагностикумы менингококковые эритроцитарные серогрупп А и С;
- <a id="p100034"></a>0,9% раствор натрия хлорида.
<a id="p100035"></a>Определение рабочего разведения менингококковых диагностических сывороток. Для приготовления рабочего разведения менингококковых диагностических сывороток определяют их специфический титр в РТПГА с диагностикумами эритроцитарными менингококковыми серогрупп А и С. Для постановки РТПГА используют круглодонный планшет для иммунологических реакций однократного применения. В 2 ряда лунок, начиная со второй, вносят по 50 мкл 0,9% раствора натрия хлорида. В первые лунки вносят по 100 мкл менингококковых сывороток серогрупп А и С, разведенных 1:10 с помощью 0,9% раствора натрия хлорида. Далее готовят двукратные последовательные разведения каждой сыворотки, перенося из лунки в лунку по 50 мкл сыворотки. Из последней лунки 50 мкл разведения сыворотки удаляют. Затем в каждую лунку прибавляют по 25 мкл эритроцитарного диагностикума, гомологичного сыворотке. В 4 лунки (контроль отсутствия спонтанной агглютинации диагностикума) вносят по 50 мкл 0,9% раствора натрия хлорида. В 2 лунки добавляют по 25 мкл диагностикума серогруппы А, а в 2 другие - по 25 мкл диагностикума серогруппы С. После перемешивания ингредиентов путем покачивания планшет помещают в термостат при температуре от 36 до 38 °С на 2-2,5 ч, после чего проводят учет результатов. Последнее разведение сывороток, в котором наблюдается агглютинация почти всех эритроцитов с малозаметным кольцом из осевших неагглютинированных эритроцитов, является титром сыворотки и содержит 1 гемагглютинирующую единицу (ГАЕ). Предыдущее разведение содержит 2 ГАЕ и используется в качестве рабочего разведения сыворотки.
<a id="p100036"></a>В контрольных лунках агглютинация должна полностью отсутствовать, а эритроциты выпадать на дно лунки в виде полусфер.
<a id="p100037"></a>Проведение РТПГА. В первые лунки 2 рядов планшета для иммунологических реакций вносят по 50 мкл испытуемого раствора вакцины менингококковой серогруппы А в исходной концентрации 50 мкг в 1 мл. В остальные лунки вносят по 25 мкл 0,9% раствора натрия хлорида. Затем исходные растворы вакцины титруют путем двукратных разведений в объеме 25 мкл до 12-й лунки включительно; из последней лунки 25 мкл удаляют. В каждую лунку первого ряда добавляют по 25 мкл рабочего разведения гомологичной сыворотки. В каждую лунку второго ряда добавляют по 25 мкл гетерологичной сыворотки. После 15-20 мин экспозиции при температуре от 18 до 22 °С в каждую лунку добавляют по 25 мкл эритроцитарного диагностикума, гомологичного добавленной сыворотке. Таким образом, в 1 ряду реагирующая смесь будет состоять из гомологичных вакцине сыворотки и эритроцитов, во втором ряду - из вакцины и гетерологичных ей сыворотки и эритроцитов. Реакцию учитывают после 1,5-2 ч инкубирования в термостате при температуре от 36 до 38 °С. После окончания инкубации отмечают минимальную концентрацию вакцины, которая подавляет агглютинацию эритроцитов. Специфичность вакцины подтверждается, если задержка гемагглютинации наблюдается только в гомологичной системе.
<a id="p100038"></a>Контролем являются отсутствие спонтанной агглютинации и проверка правильности выбранного рабочего разведения сыворотки.
<a id="p100039"></a>Время растворения. Содержимое ампулы должно полностью раствориться в 2,5 мл 0,9% раствора натрия хлорида в течение 1 мин при встряхивании.
<a id="p100040"></a>Прозрачность восстановленного раствора. Восстановленная вакцина должна выдерживать сравнение с эталоном I. Определение проводят в соответствии с ОФС "Прозрачность и степень мутности жидкостей". Содержимое 4 ампул растворяют в 10 мл 0,9% раствора натрия хлорида.
<a id="p100041"></a>Цветность восстановленного раствора. Восстановленная вакцина должна выдерживать сравнение с эталоном Y4. Определение проводят в соответствии с ОФС "Степень окраски жидкостей". Содержимое 4 ампул растворяют в 10 мл 0,9% раствора натрия хлорида.
<a id="p100042"></a>Механические включения. Восстановленная вакцина должна соответствовать требованиям ОФС "Видимые механические включения в лекарственных формах для парентерального применения и глазных лекарственных формах".
<a id="p100043"></a>Потеря в массе при высушивании. Не более 2,5%. Определение проводят в соответствии с ОФС "Потеря в массе при высушивании".
<a id="p100044"></a>Точность розлива. Не более 10%. Определение проводят весовым методом. 20 ампул без этикеток обрабатывают смесью спирта с эфиром и помещают в эксикатор на 3 ч. Затем верхнюю часть каждой ампулы надпиливают и удаляют. Вскрытые ампулы с веществом взвешивают на аналитических весах, после чего содержимое удаляют, ампулы промывают водой, ополаскивают водой очищенной. После этого ампулы выдерживают в сушильном шкафу при температуре 100-105 °С до постоянной массы. По разности масс ампулы с содержимым и без него рассчитывают коэффициент вариации (V) в процентах по формулам:

<a id="p100045"></a>,

<a id="p100046"></a>,

<a id="p100047"></a>где: S - стандартное отклонение;
 - <a id="p100048"></a>среднее арифметическое значение массы вещества в ампуле;
<a id="p100049"></a>X - масса вещества в каждой ампуле;
<a id="p100050"></a>n - число ампул.

<a id="p100051"></a>Фосфор. Содержание фосфора в вакцине должно быть не менее 7,5%. Определение проводят в соответствии с ОФС "Спектрофотометрическое определение фосфора в иммунобиологических лекарственных препаратах".
<a id="p100052"></a>Молекулярные параметры. Не менее 65% полисахарида, элюируемого до достижения значения коэффициента распределения Kd = 0,50. Определение молекулярных параметров проводят методом эксклюзионной хроматографии в соответствии с методикой, изложенной в нормативной документации, где должны быть указаны: размер хроматографической колонки, характеристика носителя и способ его приготовления, методика приготовления элюирующего раствора, количество и способ введения испытуемого и стандартных образцов, скорость элюирования подвижной фазы, условия калибрования колонки, объем элюируемых фракций, процедура сбора фракций.
<a id="p100053"></a>Содержание полисахарида. Вакцина должна содержать не менее 70% и не более 130% полисахарида, входящего в состав препарата. Содержание полисахарида рассчитывают путем пересчета содержания фосфора на полисахарид или иммунохимическим методом, описанным в нормативной документации.
<a id="p100054"></a>Стерильность. Вакцина должна быть стерильна. Определение проводят методом прямого посева в соответствии с ОФС "Стерильность".
<a id="p100055"></a>Аномальная токсичность. Вакцина должна быть нетоксичной. Определение проводят в соответствии с ОФС "Аномальная токсичность". Тест-доза для 5 белых мышей - по 100 мкг полисахарида внутрибрюшинно, тест-доза для 2 морских свинок - по 500 мкг полисахарида внутрибрюшинно. Период наблюдения за животными составляет 7 сут.
<a id="p100056"></a>Пирогенность. Вакцина должна быть апирогенной. Определение проводят в соответствии с ОФС "Пирогенность". Тест-доза 0,025 мкг/мл полисахарида вводится по 1 мл на 1 кг массы животного.
<a id="p100057"></a>Содержание лактозы. Должно быть в пределах () мг в пересчете на ампулу. Определение проводят в соответствии с ОФС "Рефрактометрия". В 3 ампулы с вакциной добавляют по 1 мл воды очищенной. Содержимое ампул объединяют. На призму рефрактометра наносят 1 каплю раствора испытуемого образца и определяют показатель преломления. По калибровочному графику находят концентрацию лактозы. Содержание лактозы в 1 ампуле вычисляют как среднее арифметическое 3 измерений.
<a id="p100058"></a>Построение калибровочного графика. В 10 стеклянных пробирок вносят пипеткой по 0,1; 0,2; 0,3; 0,4; 0,5; 0,6; 0,7; 0,8; 0,9 и 1 мл основного раствора лактозы, доводят объем водой очищенной до 1 мл и перемешивают (содержание лактозы соответственно: 2,5; 5; 7,5; 10; 12,5; 15; 17,5; 20; 22,5 и 25 мг/мл). Измеряют показатель преломления каждого раствора и строят калибровочный график, откладывая по оси абсцисс количество лактозы в мг/мл, а по оси ординат - показатель преломления. Калибровочный график воспроизводят при каждом анализе.
<a id="p100059"></a>Примечание.
<a id="p100060"></a>Приготовление 2.5% основного раствора лактозы. В мерной колбе вместимостью 100 мл растворяют в воде очищенной 2,5 г лактозы моногидрата при нагревании на водяной бане при температуре не выше 60 °С. Объем раствора доводят водой до метки и перемешивают. Перед использованием охлаждают до комнатной температуры. Основной раствор используют свежеприготовленным.

<a id="p100061"></a>Упаковка и маркировка. В соответствии с ОФС "Иммунобиологические лекарственные препараты".
<a id="p100062"></a>Транспортирование и хранение. При температуре от 2 до 8 °С в соответствии с ОФС "Иммунобиологические лекарственные препараты".



<a id="p100063"></a>

---



## Иллюстрации

$1\alpha - 6$

$V = \frac{S \cdot 100}{\overline{x}}$

$S = \sqrt{\frac{\sum (X - \overline{x})^{2}}{n - 1}}$

$\overline{x}$

$10 \pm 1$
