Методические указания по лабораторной диагностике эймериозов животных
Актуально на 05.11.2026.
Как цитировать: "Методические указания по лабораторной диагностике эймериозов животных". 13-7-2/2045. https://bukva.ai/docs/13-7-22045
(утв. Минсельхозпродом России 05.06.2000 № 13-7-2/2045)
Утверждаю Заместитель руководителя Департамента ветеринарии Минсельхозпрода России В. В. Селиверстов 5 июня 2000 г. № 13-7-2/2045
МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ
ПО ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКЕ ЭЙМЕРИОЗОВ ЖИВОТНЫХ
Методические указания по лабораторной диагностике эймериозов животных подготовлены Московской государственной академией ветеринарной медицины и биотехнологии, Центральной научно-методической ветеринарной лабораторией, Всероссийским институтом экспериментальной ветеринарии.
1. Общие положения
1.1. Эймериозы (кокцидиозы) — протозойные болезни животных, вызываемые простейшими рода Eimeria отряда Coccidiida, встречаются повсеместно, чаще в весенне-летний периоды, в теплых помещениях возможны зимой и протекают остро, подостро, хронически.
Сельскохозяйственные животные, пушные звери, кролики чаще болеют в возрасте — 15 — 120 дн., птицы — с 10-дневного возраста и старше.
1.2. Диагноз на эймериозы устанавливают с учетом эпизоотологических, клинических, патологоанатомических данных и результатов лабораторных исследований (микроскопического, копрологического).
1.3 В лабораторию для исследования на эймериозы направляют:
от 20 — 30 подозреваемых в заболевании животных из прямой кишки пробы фекалий до 5 г;
от павших или вынужденно убитых — отрезки пораженных тонких и толстых кишок, перевязанные с обоих концов;
от пушных зверей, кроликов и птиц — групповые пробы фекалий или трупы целиком.
Отобранный патологический материал и пробы фекалий упаковывают во влагонепроницаемую тару и доставляют в лабораторию в день отбора, а трупы — не позднее 4 — 6 ч. после гибели.
1.4 Лабораторные исследования на эймериозы включают:
микроскопию препаратов из соскобов пораженных участков органов и кишечника;
копроскопию мазков из фекалий;
определение видов и интенсивности инвазии.
2. Микроскопическое исследование
2.1. Трупы животных вскрывают и делают соскобы с пораженных мест слизистых оболочек тонких, толстых кишок, дополнительно у кроликов — из печени, птиц — со слизистой слепых отростков и гусей — из почек. Соскобы исследуют сразу.
2.2. Из каждого соскоба готовят по одному препарату. Небольшую часть соскоба наносят на предметное стекло, добавляют 2 — 3 капли жидкости, состоящей из равных частей глицерина и воды, тщательно размельчают иглой, накрывают покровным стеклом и исследуют в раздавленной капле в затемненном поле зрения микроскопа при увеличении в 140 — 280 раз.
2.3. При микроскопии учитывают, что меронты (шизонты) — тельца овальной или круглой формы, внутри которых сформировано множество мерозоитов; мерозоиты — клетки продолговатой формы с ядром; незрелые ооцисты — клетки с зернистой цитоплазмой шарообразной формы.
3. Копрологическое исследование
3.1. Фекалии исследуют для определения видового состава и количества ооцист эймерий.
3.2. Определение видов. Берут 3 г фекалий, переносят в ступку, добавляют 20 см3 воды, тщательно размешивают, фильтруют через капроновое или металлическое сито с размером ячеек 0,5 — 1,0 мм2, перемешанный фильтрат переливают в пробирку и центрифугируют при 2000 — 3000 об./мин. в течение 2 — 3 мин. Затем надосадочную жидкость сливают, к осадку добавляют жидкость, состоящую из равных частей насыщенного раствора хлорида натрия (380 — 400 г хлорида натрия растворяют в 1 дм3 горячей воды) и глицерина, размешивают и вновь центрифугируют при 1500 об./мин. — 2 - 3 мин. При отсутствии глицерина можно использовать один насыщенный раствор хлорида натрия.
Наибольшей флотационной способностью растворы обладают при температуре 20 — 22 °C. Металлической петлей (диаметр 5 — 7 мм) снимают с поверхностной пленки 3 капли, переносят на предметное стекло, накрывают покровным и исследуют в затемненном поле зрения микроскопа при увеличении в 140 — 280 раз.
При микроскопии обнаруживают незрелые и спорулированные ооцисты эймерий. Виды эймерий дифференцируют по локализации, спорулированным ооцистам, их размеру, форме, цвету, характеру оболочек, наличию микропиле и остаточных тел в ооцисте (приложение).
3.3. Определение интенсивности инвазии. Берут 3 г фекалий, переносят в ступку, добавляют 45 см3 воды, хорошо размешивают и фильтруют через металлическое или капроновое сито с размером ячеек 0,5 — 1,0 мм2. Затем берут 10 см3 фильтрата, переливают в пробирку, центрифугируют при 2000 — 2500 об./мин. в течение 2 — 3 мин. и жидкость сливают полностью. К осадку добавляют 10 см3 насыщенного раствора хлорида натрия, размешивают, пипеткой набирают 0,15 см3 суспензии, переносят на предметное стекло, накрывают покровным стеклом и исследуют в затемненном поле зрения микроскопа при увеличении 140 — 280 раз.
Подсчитывают количество ооцист эймерий в препарате. Подсчет ооцист проводят во всех 225 квадратах камеры Горяева и полученную сумму умножают на коэффициент 1111. Полученное количество показывает число ооцист в 1 г фекалий.
3.4. В зависимости от количества ооцист в 1 г фекалий определяют относительную степень пораженности по следующей таблице:
4. Результаты исследования считают положительными при обнаружении в препаратах исследованных материалов шизонтов, мерозоитов, незрелых и спорулированных ооцист эймерий.
5. Срок микроскопического (копрологического) исследования до 3 дн.
Приложение к Методическим указаниям по лабораторной диагностике эймериозов животных
ХАРАКТЕРИСТИКА СПОРУЛИРОВАННЫХ ООЦИСТ РАСПРОСТРАНЕННЫХ ВИДОВ ЭЙМЕРИЙ